Fragmentation de l’alpha-synucléine avec le sonicateur VialTweeter
Dans la recherche scientifique, les fibrilles et les rubans d’α-synucléine sont fragmentés afin d’obtenir des fragments de fibrilles plus petits, voire des molécules protéiques individuelles, qui peuvent être analysés plus facilement à l’aide de diverses techniques expérimentales. Le sonicateur VialTweeter est l’un des ultrasonicateurs les plus couramment utilisés pour une fragmentation efficace et fiable de l’alpha-synucléine.
L’α-synucléine dans la recherche
Les fibrilles d’alpha-synucléine sont des agrégats protéiques fortement associés à des maladies neurodégénératives telles que la maladie de Parkinson et certaines formes de démence, dont la démence à corps de Lewy. La recherche consacrée aux fibrilles d’alpha-synucléine vise à comprendre leur rôle dans la progression de la maladie et à développer des interventions thérapeutiques potentielles. En décomposant les fibrilles d’alpha-synucléine en fragments plus petits, les chercheurs peuvent étudier leurs caractéristiques structurelles spécifiques. Par exemple, la fragmentation des fibrilles d’alpha-synucléine permet aux chercheurs d’étudier leurs interactions avec d’autres molécules, telles que des protéines, des lipides ou de petites molécules. En produisant des fragments plus petits, il est possible de sonder plus efficacement les sites de liaison et l’affinité pour ces partenaires d’interaction. Des fibrilles et rubans d’α-Syn plus petits peuvent également présenter une toxicité et des effets biochimiques modifiés. Une technique de fragmentation fiable et efficace, qui produit des résultats reproductibles grâce à un traitement des échantillons rapide et simple, est donc essentielle.
Fragmentation ultrasonore de l’alpha-Syn : Le sonicateur VialTweeter est le système éprouvé de préparation d’échantillons par ultrasons qui traite jusqu’à 10 flacons simultanément dans des conditions strictement identiques. Les réglages programmables permettent de répéter simplement et rapidement les mêmes expériences, ce qui fournit des résultats hautement fiables et reproductibles pour la fragmentation des fibrilles d’alpha-synucléine.
Sonicateur VialTweeter pour la fragmentation ultrasonore simultanée de plusieurs échantillons d’alpha-synucléine.
Préparation d’échantillons d’α-synucléine avec un sonicateur
L’une des approches pour étudier les fibrilles d’alpha-synucléine consiste à les extraire et à les fragmenter à l’aide de techniques telles que la sonication. La sonication est un procédé qui utilise des ondes ultrasonores de haute intensité et de basse fréquence pour désagréger et décomposer les agrégats protéiques, ce qui conduit à la libération de fibrilles plus petites ou de molécules protéiques individuelles. Le sonicateur VialTweeter est un appareil couramment utilisé à cette fin dans les études de recherche portant sur l’α-synucléine.
De nombreuses études de recherche décrivent des protocoles précis de préparation d’échantillons pour la sonication de fibrilles d’alpha-synucléine, qui utilisent le VialTweeter de Hielscher pour une fragmentation efficace et fiable des fibrilles d’α-synucléine. En fragmentant les fibrilles par ultrasons, les chercheurs peuvent analyser les produits obtenus et examiner leur structure, leur toxicité et leurs interactions avec d’autres molécules. Ces recherches apportent des éclairages importants sur les mécanismes sous-jacents à la neurodégénérescence et permettent potentiellement d’identifier de nouvelles cibles thérapeutiques. Les protocoles bien établis de sonication de l’α-synucléine utilisant le sonicateur VialTweeter permettent d’obtenir des résultats fiables et reproductibles.
Images du haut : fibrilles d’alpha-synucléine non fragmentées
Images du bas : fibrilles d’alpha-synucléine fragmentées par ultrasons avec le sonicateur VialTweeter
(étude et images : ©Dieriks et al., 2022)
Fragmentation ultrasonore des fibrilles d’α-synucléine – protocoles
Comme de nombreux chercheurs utilisent le sonicateur VialTweeter comme technique de fragmentation privilégiée pour produire des fragments uniformes de fibrilles d’α-synucléine, des protocoles éprouvés sont facilement disponibles. Vous trouverez ci-dessous quelques exemples de protocoles de fragmentation.
Préparation des germes ClearTau : Les fibrilles ClearTau ont été diluées à 10 μM dans de l’eau dH2O et soniquées à 70 % d’amplitude pendant 50 s avec un cycle 1 s ON 1 s OFF, en tube, à l’aide du sonicateur UP200St avec VialTweeter. Les germes ont été caractérisés par microscopie électronique.
Mesure de la fluorescence ThS : Les fibrilles ClearTau ont été diluées à 2,5 μM dans de l’eau dH2O et soniquées à 70 % d’amplitude pendant 50 s avec un cycle 1 s ON 1 s OFF, en tube, à l’aide de l’UP200St avec VialTweeter. Du monomère Tau 4R2N pleine longueur à 2,5 μM a été utilisé comme témoin. À la réaction de 100 μl, 100 μl de ThS (10 μM) ont été ajoutés, ce qui a donné des concentrations finales en protéines de 1,25 μM. La fluorescence ThS en un seul point temporel a été mesurée à l’aide de plaques 96 puits à fond transparent placées dans un lecteur de microplaques FLUOstar Omega, avec une excitation à 445 nm et un enregistrement de l’émission à 485 nm.
(cf. Limorenko et al., 2023)
Longueur uniforme de l’α-synucléine grâce à la sonication : L’hétérogénéité de longueur des fibrilles et rubans d’α-syn a été réduite par sonication pendant 20 min sur glace dans des tubes Eppendorf 2-ml placés dans un VialTweeter réglé à 75% d’amplitude, avec des impulsions de 0,5 s.
(cf. Bousset et al., 2013)
Le contrôle qualité de l’a-Syn monomérique recombinante humaine WT ou S129A et des polymorphes fibrillaires qu’elles génèrent, ainsi que celui de l’a-Syn 1–110, a été effectué. Les polymorphes fibrillaires ont ensuite été fragmentés par sonication pendant 20 min dans des tubes Eppendorf 2-mL placés dans l’ultrasonicateur VialTweeter, afin de générer des particules fibrillaires d’une taille moyenne de 42–52 nm adaptées à l’endocytose.
(cf. Shrivastava et al., 2020)
Caractérisation de cinq polymorphes fibrillaires d’α-Syn. (A) Micrographies électroniques en transmission, après coloration négative, des polymorphes fibrillaires d’α-Syn fibrils, ribbons, fibrils-91, fibrils-65 et fibrils-110, avant (rangée du haut) et après fragmentation avec le VialTweeter (rangée du bas). (B) Distribution des longueurs des polymorphes fibrillaires fragmentés. Le nombre (n) d’assemblages fibrillaires à partir desquels les histogrammes ont été établis est indiqué.
(étude et images : Shrivastava et al., 2020)
Les fibrilles d’α-Syn ont été fragmentées par sonication pendant 20 min dans des tubes Eppendorf de 2 ml placés dans un VialTweeter, afin de générer des particules fibrillaires d’une taille moyenne de 42–52 nm, telle qu’évaluée par analyse MET (TEM).
(cf. Negrini et al., 2022)
Les fibrils91 remises en suspension (dans du PBS) ont été fragmentées avant leur ajout aux cultures cellulaires par sonication pendant 20 min dans des tubes Eppendorf de 2 mL à l’aide du sonicateur Vial Tweeter, puis aliquotées, congelées instantanément dans l’azote liquide et conservées à -80 ̊C jusqu’à leur utilisation.
(cf. Vajhøj et al., 2021)
VialTweeter et sonicateurs de laboratoire pour la fragmentation de l’α-Syn
Hielscher Ultrasonics est reconnu dans le monde entier comme un fabricant de premier plan d’ultrasonicateurs de pointe. Utilisés en toute confiance et bien implantés dans les grands laboratoires de recherche du monde entier, nos ultrasonicateurs offrent une qualité et des performances inégalées pour vos expériences critiques.
Avec le VialTweeter de Hielscher, comme avec tout autre sonicateur Hielscher, vous bénéficiez d’un confort d’utilisation inégalé, car ils sont soigneusement conçus pour garantir des résultats reproductibles, une grande facilité d’utilisation et un fonctionnement sans accroc. Grâce aux fonctions d’enregistrement automatique des données, vous pouvez vous concentrer sur vos recherches pendant que nos ultrasonicateurs enregistrent méticuleusement les données essentielles pour la reproductibilité et la précision.
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Nos ultrasonicateurs sont conçus et fabriqués en Allemagne. Précision allemande et ingénierie de la plus haute qualité pour garantir à chaque fois une préparation d’échantillons fiable et précise, comme la fragmentation de fibrilles d’alpha-synucléine. Fini les soucis liés aux résultats incohérents – notre technologie ultrasonore permet à vos recherches de rester à l’avant-garde du progrès scientifique.
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Hielscher Ultrasonics est une entreprise certifiée ISO qui accorde une importance particulière aux ultrasonicateurs haute performance alliant technologie de pointe et convivialité. Bien entendu, les sonicateurs Hielscher sont conformes CE et satisfont aux exigences UL, CSA et RoHs.
Le tableau ci-dessous vous donne une indication de la capacité de traitement approximative de nos ultrasonicateurs de laboratoire :
| Appareils recommandés | Volume du lot | Débit |
|---|---|---|
| UIP400MTP | plaques multipuits / de microtitration | n.a. |
| CupHorn ultrasonore | CupHorn pour flacons ou béchers | n.a. |
| GDmini2 | micro-réacteur ultrasonore à circulation | n.a. |
| VialTweeter | 0,5 à 1,5mL | n.a. |
| UP100H | 1 à 500mL | 10 à 200mL/min |
| UP200Ht, UP400St | 10 à 2000mL | 20 à 400mL/min |
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Le VialTweeter est couramment utilisé pour fragmenter les fibrilles d’alpha-synucléine dans le cadre de la préparation pré-analytique des échantillons
Bibliographie / Références
- Emil Dandanell Agerschou, Marie P. Schützmann, Nikolas Reppert, Michael M. Wördehoff, Hamed Shaykhalishahi, Alexander K. Buell, Wolfgang Hoyer (2021): β-Turn exchanges in the α-synuclein segment 44-TKEG-47 reveal high sequence fidelity requirements of amyloid fibril elongation. Biophysical Chemistry, Volume 269, 2021.
- Bousset, L., Pieri, L., Ruiz-Arlandis, G. et al. (2013): Structural and functional characterization of two alpha-synuclein strains. Nature Communications 4, 2575 (2013).
- Vajhøj, Charlott; Schmid, Benjamin; Alik, Ania; Melki, Ronald; Fog, Karina; Holst, Bjørn; Stummann, Tina (2021): Establishment of a human induced pluripotent stem cell neuronal model for identification of modulators of A53T α-synuclein levels and aggregation. PLOS ONE 16, 2021.
- Dieriks B.V.; Highet B.; Alik A.; Bellande T.; Stevenson T.J.; Low V.; Park T.I.; Correia J.; Schweder P.; Faull R.L.M.; Melki R.; Curtis M.A.; Dragunow M. (2022): Human pericytes degrade diverse α-synuclein aggregates. PLoS One, Nov 18;17(11), 2022.
- Amulya Nidhi Shrivastava, Luc Bousset, Marianne Renner, Virginie Redeker, Jimmy Savistchenko, Antoine Triller, Ronald Melki (2020): Differential Membrane Binding and Seeding of Distinct α-Synuclein Fibrillar Polymorphs. Biophysical Journal, Volume 118, Issue 6, 2020. 1301-1320.
- Negrini M, Tomasello G, Davidsson M, Fenyi A, Adant C, Hauser S, Espa E, Gubinelli F, Manfredsson FP, Melki R, Heuer A. (2022): Sequential or Simultaneous Injection of Preformed Fibrils and AAV Overexpression of Alpha-Synuclein Are Equipotent in Producing Relevant Pathology and Behavioral Deficits. Journal of Parkinsons Disease 12(4), 2022. 1133-1153.
- Limorenko G, Tatli M, Kolla R, Nazarov S, Weil MT, Schöndorf DC, Geist D, Reinhardt P, Ehrnhoefer DE, Stahlberg H, Gasparini L, Lashuel HA (2023): Fully co-factor-free ClearTau platform produces seeding-competent Tau fibrils for reconstructing pathological Tau aggregates. Nature Communications 4;14(1), July 2023.
Questions fréquentes
L’alpha-synucléine est-elle un amyloïde ?
Oui, l’alpha-synucléine peut former des fibrilles de type amyloïde. Elle est un composant clé des corps de Lewy, la marque pathologique de la maladie de Parkinson et d’autres synucléinopathies. Son agrégation suit un processus de polymérisation dépendant de la nucléation, semblable à celui des amyloïdes classiques.
Quelle est la différence entre l’amyloïde bêta et l’alpha-synucléine ?
L’amyloïde bêta (Aβ) et l’alpha-synucléine (α-syn) sont des protéines distinctes qui forment des agrégats pathologiques dans les maladies neurodégénératives. L’Aβ, issue de la protéine précurseur de l’amyloïde (APP), est principalement associée à la maladie d’Alzheimer et forme des plaques extracellulaires. À l’inverse, l’α-syn est une protéine neuronale présynaptique qui s’agrège de manière intracellulaire dans la maladie de Parkinson et les troubles apparentés. Bien que toutes deux présentent des structures amyloïdes riches en feuillets β, elles diffèrent par leurs séquences, leurs voies d’agrégation et leur pathologie spécifique à chaque maladie.
Quel type de protéine est l’amyloïde ?
L’amyloïde est une protéine fibrillaire mal repliée qui adopte une structure en feuillets β croisés et s’agrège en fibrilles insolubles. Ces protéines sont généralement issues de précurseurs normalement solubles qui subissent des changements conformationnels, conduisant à leur auto-assemblage et à leur dépôt. Les amyloïdes sont associés à diverses maladies neurodégénératives et systémiques, dans lesquelles leur agrégation contribue à la toxicité cellulaire et aux lésions tissulaires. Découvrez comment le sonicateur pour plaques 96 puits UIP400MTP permet de former rapidement des fibrilles amyloïdes standardisées à des fins de recherche !
Quelles maladies sont causées par les amyloïdes ?
Les amyloïdes sont impliqués dans de nombreuses maladies, regroupées sous le nom d’amyloïdoses. Parmi celles-ci :
- Maladies neurodégénératives : maladie d’Alzheimer (Aβ), maladie de Parkinson (α-syn), maladie de Huntington (huntingtine mutante) et maladies à prions (PrPSc). (En savoir plus sur la PMCA assistée par sonication pour la détection de prions à haute cadence de traitement des échantillons !)
- Amyloïdoses systémiques : amylose à chaînes légères (AL), amylose à transthyrétine (ATTR) et amylose secondaire (AA).
- Amyloïdoses localisées : polypeptide amyloïde des îlots (IAPP) dans le diabète de type 2.
Chaque maladie associée aux amyloïdes se caractérise par un mauvais repliement, une agrégation et un dépôt de protéines, entraînant un dysfonctionnement et une toxicité cellulaires.
Hielscher Ultrasonics fabrique des homogénéisateurs à ultrasons haute performance, du laboratoire à l’échelle industrielle.

