Fragmentation de l'alpha-synucléine à l'aide du sonicateur VialTweeter
Les fibrilles et les rubans d'α-synucléine sont fragmentés dans le cadre de la recherche scientifique afin de générer des fragments de fibrilles plus petits ou même des molécules de protéines individuelles, qui peuvent être plus facilement analysés à l'aide de diverses techniques expérimentales. Le sonicateur VialTweeter est l'un des ultrasons les plus couramment utilisés pour une fragmentation efficace et fiable de l'alpha-synucléine.
L'α-synucléine dans la recherche
Les fibrilles d'alpha-synucléine sont des agrégats de protéines fortement associés à des troubles neurodégénératifs tels que la maladie de Parkinson et certaines formes de démence, notamment la démence à corps de Lewy. La recherche sur les fibrilles d'alpha-synucléine vise à comprendre leur rôle dans la progression de la maladie et à mettre au point des interventions thérapeutiques potentielles. En divisant les fibrilles d'alpha-synucléine en fragments plus petits, les chercheurs peuvent étudier leurs caractéristiques structurelles spécifiques. Par exemple, la fragmentation des fibrilles d'alpha-synucléine permet aux chercheurs d'étudier leurs interactions avec d'autres molécules, telles que les protéines, les lipides ou les petites molécules. En produisant des fragments plus petits, les sites de liaison et l'affinité pour ces partenaires d'interaction peuvent être sondés plus efficacement. Les fribrilles et rubans α-Syn plus petits peuvent également présenter une toxicité et des effets biochimiques modifiés. Il est donc essentiel de disposer d'une technique de fragmentation fiable et efficace, qui produise des résultats reproductibles en traitant rapidement et simplement les échantillons.
Fragmentation ultrasonique de l'alpha-syn : Le sonicateur VialTweeter est le système de préparation d'échantillons par ultrasons qui sonifie jusqu'à 10 flacons simultanément dans les mêmes conditions. Les réglages programmables permettent de répéter simplement et rapidement les mêmes expériences, ce qui donne des résultats très fiables et reproductibles en matière de fragmentation des fibrilles d'alpha-synucléine.

Sonicateur VialTweeter pour la fragmentation ultrasonique simultanée de plusieurs échantillons d'alpha-synucléine.
Préparation d'échantillons d'α-synucléine à l'aide d'un sonicateur
L'une des méthodes d'étude des fibrilles d'alpha-synucléine consiste à les extraire et à les fragmenter à l'aide de techniques telles que la sonication. La sonication est un processus qui utilise des ondes ultrasonores de haute intensité et de basse fréquence pour perturber et briser les agrégats de protéines, ce qui conduit à la libération de fibrilles plus petites ou de molécules de protéines individuelles. Le sonicateur VialTweeter est un appareil couramment utilisé à cette fin dans les études de recherche sur l'α-synucléine.
De nombreuses études de recherche décrivent des protocoles précis de préparation d'échantillons pour la sonication des fibrilles d'alpha-synucléine, qui utilisent le Hielscher VialTweeter pour une fragmentation efficace et fiable des fibrilles d'α-synucléine. En fragmentant les fibrilles par ultrasons, les chercheurs peuvent analyser les produits obtenus et examiner leur structure, leur toxicité et leurs interactions avec d'autres molécules. Cette recherche permet de mieux comprendre les mécanismes sous-jacents à la neurodégénérescence et d'identifier potentiellement de nouvelles cibles thérapeutiques. Les protocoles de sonication de l'α-synucléine bien établis utilisant le sonicateur VialTweeter permettent d'obtenir des résultats fiables et reproductibles.

Images du haut : fibrilles d'alpha-synucléine non fragmentées
Images du bas : Fibrilles d'alpha-synucléine fragmentées par ultrasons avec le sonicateur VialTweeter
(étude et images : ©Dieriks et al., 2022)
Fragmentation ultrasonique des fibrilles d'α-synucléine – Protocoles
Comme de nombreux chercheurs utilisent le sonicateur VialTweeter comme technique de fragmentation préférée pour produire des fragments uniformes de fibrilles d'α-synucléine, des protocoles établis sont facilement disponibles. Vous trouverez ci-dessous quelques protocoles de fragmentation exemplaires.
Préparation des semences ClearTau : Les fibrilles ClearTau ont été diluées à 10 μM dans du dH2O et soniquées à 70 % d'amplitude pendant 50 s avec un cycle de 1 s ON 1 s OFF in-tube à l'aide du sonicateur UP200St avec VialTweeter. Les graines ont été caractérisées par microscopie électronique.
Mesure de la fluorescence du ThS : Les fibrilles ClearTau ont été diluées à 2,5 μM dans du dH2O et soniquées à 70 % d'amplitude pendant 50 s avec un cycle de 1 s ON 1 s OFF dans le tube en utilisant l'UP200St avec VialTweeter. 2,5 μM de monomère Tau 4R2N de pleine longueur ont été utilisés comme contrôle. À la réaction de 100 μl, 100 μl de ThS (10 μM) ont été ajoutés, ce qui donne des concentrations finales de protéines de 1,25 μM. La fluorescence du ThS a été mesurée à l'aide de plaques de 96 puits à fond transparent installées dans le lecteur de microplaques FLUOstar Omega avec une excitation à 445 nm et une émission à 485 nm a été enregistrée.
(cf. Limorenko et al., 2023)
Longueur uniforme de l'α-synucléine par sonication : L'hétérogénéité de la longueur des fibrilles et des rubans d'α-syn a été réduite par sonication pendant 20 minutes sur la glace dans des tubes Eppendorf de 2 ml dans un VialTweeter réglé à 75 % d'amplitude, impulsions de 0,5 s.
(cf. Bousset et al., 2013)
Le contrôle de qualité de l'a-Syn recombinante humaine monomérique WT ou S129A et des polymorphes fibrillaires qu'ils génèrent ainsi que celui de l'a-Syn 1-110 a été effectué. Ensuite, les polymorphes fibrillaires ont été fragmentés par sonication pendant 20 minutes dans des tubes Eppendorf de 2 ml dans l'ultrasonateur VialTweeter pour générer des particules fibrillaires d'une taille moyenne de 42-52 nm qui conviennent à l'endocytose.
(cf. Shrivastava et al., 2020)

Caractérisation de cinq polymorphes α-Syn fibrillaires. (A) Des micrographies électroniques en transmission de polymorphes α-Syn fibrillaires colorés négativement, de rubans, de fibrilles-91, de fibrilles-65 et de fibrilles-110 avant (voie supérieure) et après fragmentation avec le VialTweeter (voie inférieure) sont montrées. (B) La distribution des longueurs des polymorphes fibrillaires fragmentés est représentée. Le nombre (n) d'assemblages fibrillaires à partir desquels les histogrammes ont été obtenus est indiqué.
(étude et images : Shrivastava et al., 2020)
Les fibrilles α-Syn ont été fragmentées par sonication pendant 20 min dans des tubes Eppendorf de 2 ml dans un VialTweeter pour générer des particules fibrillaires d'une taille moyenne de 42-52 nm comme évalué par l'analyse TEM.
(cf. Negrini et al., 2022)
Les fibrilles remises en suspension91 (dans du PBS) ont été fragmentées avant d'être ajoutées aux cultures cellulaires par sonication pendant 20 minutes dans des tubes Eppendorf de 2 mL à l'aide du sonicateur Vial Tweeter, puis aliquotées, congelées rapidement dans de l'azote liquide et conservées jusqu'à utilisation à -80 ̊C.
(cf. Vajhøj et al., 2021)
VialTweeter et sonicateurs de laboratoire pour la fragmentation de l'α-Syn
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Le tableau ci-dessous vous donne une indication de la capacité de traitement approximative de nos ultrasons de laboratoire :
Dispositifs recommandés | Volume du lot | Débit |
---|---|---|
UIP400MTP | plaques multi-puits / microtitres | n.d. |
Cornet à ultrasons | CupHorn pour flacons ou béchers | n.d. |
GDmini2 | réacteur ultrasonique à micro-flux | n.d. |
VialTweeter | 00,5 à 1,5 ml | n.d. |
UP100H | 1 à 500mL | 10 à 200mL/min |
UP200Ht, UP400St | 10 à 2000mL | 20 à 400mL/min |
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Le VialTweeter est couramment utilisé pour fragmenter les fibrilles d'alpha-synucléine lors de la préparation de l'échantillon avant analyse.
Littérature / Références
- Emil Dandanell Agerschou, Marie P. Schützmann, Nikolas Reppert, Michael M. Wördehoff, Hamed Shaykhalishahi, Alexander K. Buell, Wolfgang Hoyer (2021): β-Turn exchanges in the α-synuclein segment 44-TKEG-47 reveal high sequence fidelity requirements of amyloid fibril elongation. Biophysical Chemistry, Volume 269, 2021.
- Bousset, L., Pieri, L., Ruiz-Arlandis, G. et al. (2013): Structural and functional characterization of two alpha-synuclein strains. Nature Communications 4, 2575 (2013).
- Vajhøj, Charlott; Schmid, Benjamin; Alik, Ania; Melki, Ronald; Fog, Karina; Holst, Bjørn; Stummann, Tina (2021): Establishment of a human induced pluripotent stem cell neuronal model for identification of modulators of A53T α-synuclein levels and aggregation. PLOS ONE 16, 2021.
- Dieriks B.V.; Highet B.; Alik A.; Bellande T.; Stevenson T.J.; Low V.; Park T.I.; Correia J.; Schweder P.; Faull R.L.M.; Melki R.; Curtis M.A.; Dragunow M. (2022): Human pericytes degrade diverse α-synuclein aggregates. PLoS One, Nov 18;17(11), 2022.
- Amulya Nidhi Shrivastava, Luc Bousset, Marianne Renner, Virginie Redeker, Jimmy Savistchenko, Antoine Triller, Ronald Melki (2020): Differential Membrane Binding and Seeding of Distinct α-Synuclein Fibrillar Polymorphs. Biophysical Journal, Volume 118, Issue 6, 2020. 1301-1320.
- Negrini M, Tomasello G, Davidsson M, Fenyi A, Adant C, Hauser S, Espa E, Gubinelli F, Manfredsson FP, Melki R, Heuer A. (2022): Sequential or Simultaneous Injection of Preformed Fibrils and AAV Overexpression of Alpha-Synuclein Are Equipotent in Producing Relevant Pathology and Behavioral Deficits. Journal of Parkinsons Disease 12(4), 2022. 1133-1153.
- Limorenko G, Tatli M, Kolla R, Nazarov S, Weil MT, Schöndorf DC, Geist D, Reinhardt P, Ehrnhoefer DE, Stahlberg H, Gasparini L, Lashuel HA (2023): Fully co-factor-free ClearTau platform produces seeding-competent Tau fibrils for reconstructing pathological Tau aggregates. Nature Communications 4;14(1), July 2023.
Questions fréquemment posées
L'alpha-synucléine est-elle une amyloïde ?
Oui, l'alpha-synucléine peut former des fibrilles de type amyloïde. C'est un composant clé des corps de Lewy, la marque pathologique de la maladie de Parkinson et d'autres synucléinopathies. Son agrégation suit un processus de polymérisation dépendant de la nucléation, similaire à celui des amyloïdes classiques.
Quelle est la différence entre la bêta-amyloïde et l'alpha-synucléine ?
La bêta-amyloïde (Aβ) et l'alpha-synucléine (α-syn) sont des protéines distinctes qui forment des agrégats pathologiques dans les maladies neurodégénératives. L'Aβ, dérivée de la protéine précurseur de l'amyloïde (APP), est principalement associée à la maladie d'Alzheimer et forme des plaques extracellulaires. En revanche, l'α-syn est une protéine neuronale présynaptique qui s'agrège au niveau intracellulaire dans la maladie de Parkinson et les maladies apparentées. Bien qu'elles présentent toutes deux des structures amyloïdes riches en feuillets β, elles diffèrent par leurs séquences, leurs voies d'agrégation et leur pathologie spécifique.
Quel type de protéine est l'amyloïde ?
L'amyloïde est une protéine fibrillaire mal repliée qui adopte une structure en feuillets croisés et s'agrège en fibrilles insolubles. Ces protéines sont généralement dérivées de précurseurs normalement solubles qui subissent des changements de conformation, conduisant à l'auto-assemblage et au dépôt. Les amyloïdes sont associés à diverses maladies neurodégénératives et systémiques, où leur agrégation contribue à la toxicité cellulaire et aux lésions tissulaires. Découvrez comment le sonicateur pour plaques à 96 puits UIP400MTP permet de former rapidement des fibrilles amyloïdes standardisées à des fins de recherche !
Quelles sont les maladies causées par les amyloïdes ?
Les amyloïdes sont impliqués dans de nombreuses maladies, collectivement appelées amyloïdoses. Il s'agit notamment de
- Maladies neurodégénératives : La maladie d'Alzheimer (Aβ), la maladie de Parkinson (α-syn), la maladie de Huntington (huntingtine mutante) et les maladies à prions (PrPSc). (En savoir plus sur l'ACPM assistée par sonication pour la détection à haut débit des prions !)
- Amyloïdoses systémiques : L'amylose à chaîne légère (AL), l'amylose à transthyrétine (ATTR) et l'amylose secondaire (AA).
- Amyloïdoses localisées : Polypeptide amyloïde des îlots (IAPP) dans le diabète de type 2.
Chaque maladie associée à l'amyloïde se caractérise par un mauvais pliage, une agrégation et un dépôt de protéines, entraînant un dysfonctionnement et une toxicité cellulaires.

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