تجزیه سلولهای مخمر در میکروپلیتها با استفاده از سونیکاسیون با شدت بالا
میکروبیولوژیستها و پژوهشگران علوم زیستی که با ساکارومایسس سرویزیه، Pichia pastoris / Komagataella phaffiiو سایر سیستمهای مخمری این چالش را میدانند: سلولهای مخمر مقاوم هستند، تجزیه تکرارپذیر میتواند سخت باشد و اختلال دستی در نمونهها به سرعت به یک گلوگاه تبدیل میشود وقتی که تعداد زیادی از سویهها، کلونها، شرایط کشت یا ساختارهای بیان باید غربالگری شوند.
انهدام مخمر با بازده بالا برای میکروبیولوژی، زیستشناسی مولکولی و آنالیز پروتئینها
سونیکاتورهای میکروپلیت هیلشر مانند UIP400MTP (400 وات) و UIP550MTP (550 وات) یک راهحل با بازده بالا برای انهدام مکانیکی سلولهای مخمر بهصورت مستقیم در میکروپلیتها ارائه میدهند. به جای پردازش نمونهها یکی یکی با یک پروب، میتوان کل میکروپلیتها را تحت شرایط یکنواخت سونیکه کرد. این کار باعث میشود انهدام صوتی مخمر سریعتر، پایدارتر و آسانتر برای ادغام در جریانهای کاری مدرن میکروبیولوژی، بیان پروتئین، غربالگری آنزیم و اُمیکس باشد.
چه نیاز داشته باشید که پروتئینهای نوترکیب را از P. pastoris آزاد کنید، لیزاتهای مخمری برای آزمونهای آنزیمی تهیه کنید، S. cerevisiae را برای تجزیه و تحلیل پروتئین متلاشی کنید، یا دهها کلون مخمر را بهطور موازی غربالگری کنید، سونیکاتورهای میکروپلیت هایلشر تخریب سلولی قدرتمند بر پایه کاویشن با کنترل دقیق فرآیند را ارائه میدهند.
به لیز تکرارپذیر نیاز دارید برای S. cerevisiae، P. pastoris, یا سایر گونههای مخمر در میکروپلیتها؟ به ما فرمت پلیت، حجم نمونه، تراکم سلولی و آنالیت هدف را بگویید. ما به شما کمک میکنیم پارامترهای مناسب سونیکیشن برای گردش کار UIP400MTP یا UIP550MTP خود تعیین کنید.
چرا سلولهای مخمر به لیز مکانیکی مؤثر نیاز دارند
Yeast cells are more difficult to lyse than many bacterial or mammalian cells because they are protected by a rigid cell wall composed mainly of polysaccharides, glucans, mannoproteins, and chitin. This cell wall provides mechanical stability, but it also limits the release of intracellular proteins, nucleic acids, metabolites, and enzymes.
Conventional yeast lysis methods include bead beating, enzymatic digestion, freeze-thaw cycles, chemical lysis, and probe-type sonication. These methods can be effective, but they also have limitations. Bead beating can introduce debris and heating, enzymatic digestion can add cost and variability, and single-sample probe sonication is time-consuming when large sample numbers must be processed.
High-intensity, focused ultrasonic cavitation overcomes these limitations by applying intense mechanical shear forces, pressure fluctuations, and microstreaming to the yeast suspension. The result is rapid disruption of cell walls and membranes, improved intracellular release, and highly reproducible sample preparation in plate format.
سونیکاسیون میکروافزاری برای تهیه نمونههای موازی مخمر
The Hielscher UIP400MTP and UIP550MTP are designed for uniform sonication of microplates, multiwell plates, PCR plates, and suitable sample racks. Unlike probe sonication, the samples do not need to be treated individually. The complete plate is exposed to controlled ultrasonic energy, making the workflow highly suitable for parallel sample processing.
این به ویژه برای موارد زیر مفید است:
- غربالگری S. cerevisiae موتانتها یا سویههای بیان
- Lysis of P. pastoris / K. phaffii clones after recombinant protein expression
- تهیه لیزات مخمر برای آزمایشهای آنزیمی
- استخراج پروتئین برای SDS-PAGE، وسترن بلات، ELISA، LC-MS/MS یا آزمون فعالیت
- آزادسازی متابولیتهای داخل سلولی برای متابولومیک
- تهیه نمونههای DNA و RNA پس از تصفیه مناسب مراحل بعدی
- بهینهسازی با توان بالا برای بافرهای لیز، افزودنیها و شرایط استخراج
چگونه کاویتاسیون اولتراسونیک سلولهای مخمر را تخریب میکند
During sonication, focused high-power ultrasound generates alternating compression and rarefaction cycles in the liquid sample. At sufficient intensity, these pressure fluctuations create acoustic cavitation. Cavitation bubbles form, oscillate, and collapse, producing localized shear forces, microjets, turbulence, and strong pressure gradients.
In yeast suspensions, these mechanical effects weaken and rupture the cell wall and cell membrane. Intracellular proteins, enzymes, nucleic acids, and metabolites are released into the lysis buffer. Since the process is mechanical, it can be used with many different buffer systems and can be combined with protease inhibitors, reducing agents, detergents, salts, or mild enzymatic pre-treatment.
General Protocol: Yeast Cell Lysis in Microplates
The following protocol provides a practical starting point for yeast lysis using the Hielscher UIP400MTP or UIP550MTP microplate sonicator. Parameters should be optimized according to yeast strain, cell density, target molecule, buffer composition, plate type, and downstream assay.
1. Harvest and Wash Yeast Cells
Grow Saccharomyces, Pichia, Hansenula, Debaryomyces, or another yeast strain under the desired culture conditions. Harvest the cells by centrifugation and remove the culture medium. Wash the pellet with cold distilled water, PBS, or the selected lysis buffer to remove residual medium components that may interfere with downstream analysis.
For protein extraction, keep samples cold and work quickly. If proteases are a concern, pre-cool all buffers and consumables.
2. Resuspend the Cell Pellet
Resuspend the yeast pellet in a suitable cold lysis buffer. For efficient protein release, high cell density is often advantageous. As a starting point, use approximately 10–20% w/v wet cell pellet or a dense suspension corresponding to OD600 > 10, depending on the assay.
A typical yeast protein lysis buffer may contain:
- buffer system such as Tris-HCl, phosphate buffer, or HEPES
- salt such as NaCl or KCl
- کوکتل مهارکننده پروتئاز
- optional reducing agent such as DTT or β-mercaptoethanol
- optional detergent such as Triton X-100, NP-40, SDS, or CHAPS, depending on downstream compatibility
- optional phosphatase inhibitors for phosphorylation studies
For difficult yeast strains or very gentle protein extraction, a short pre-treatment with Zymolyase, Lyticase, or another cell-wall-digesting enzyme can be used before sonication. This enzymatic pre-treatment is optional but may improve lysis efficiency or reduce the required ultrasonic intensity.
3. Transfer Samples into a Suitable Microplate
Dispense the yeast suspension into a sonication-compatible microplate. Round-bottom plates are often preferred because they improve sample collection and reduce dead zones. Use equal sample volumes across wells to improve reproducibility.
Seal the plate with a suitable sealing mat or film to prevent evaporation, aerosol formation, and cross-contamination. Ensure that the seal is compatible with the selected temperature and sonication conditions.
Typical working volumes depend on the plate format and application. Common formats include 96-well plates, deep-well plates, PCR plates, or suitable tube racks.
4. Set Up Cooling
Yeast lysis requires high ultrasonic intensity, and mechanical disruption generates heat. Temperature control is therefore critical, especially for protein, enzyme, RNA, or phosphorylation analysis.
Use an appropriate cooling strategy, such as:
- pre-chilled lysis buffer
- pre-cooled microplates
- cooling pauses between sonication intervals
- external cooling of the sonication platform, where applicable
هدف این است که نمونه به اندازه کافی سرد نگه داشته شود تا از دناتوره شدن پروتئین، غیرفعال شدن آنزیم، تجزیه RNA و نوسانات ناشی از گرما در نمونه جلوگیری شود.
5. سونیکات کردن سوسپانسیون مخمر
پلیت مهر و مومشده را در سونیکاتور میکروپلیت Hielscher UIP400MTP یا UIP550MTP قرار دهید و یک برنامه سونیکیشن پالسدار انتخاب کنید. پالسدار کردن توصیه میشود زیرا اجازه میدهد تخریب مکانیکی در فازهای روشن و پراکندگی حرارت در فازهای خاموش انجام شود.
بهعنوان نقطه شروع برای لیز سلولهای مخمر:
| پارامتر | محدوده شروع توصیهشده | هدف |
|---|---|---|
| دامنه | 60–100% | شدت کاویشن بالا برای سلولهای مخمر مقاوم |
| حالت پالس | 10–30 ثانیه روشن / 30–60 ثانیه خاموش | لیز کارآمد با تجمع حرارتی کنترلشده |
| زمان تجمعی روشن | 5–15 دقیقه | با توجه به گونه، چگالی و مولکول هدف تنظیم کنید |
| دما | نمونهها را سرد نگه دارید | محافظت از پروتئینها، آنزیمها، RNA و متابولیتها |
| آببندی پلیت | توصیهشده | از تبخیر، تشکیل آئروسل و آلودگی متقابل جلوگیری میکند |
برای سوسپانسیونهای بسیار مقاوم مخمر، توده متراکم P. pastoris یا استخراج پروتئین نوترکیب دشوار، زمان کل ON را به صورت مرحلهای افزایش دهید. برای پروتئینهای حساس به حرارت یا آزمونهای آنزیمی، از پالسهای کوتاهتر، توقفهای طولانیتر برای خنکسازی و دامنه شروع پایینتر استفاده کنید.
6. شفافسازی لیزات
After sonication, centrifuge the microplate or transfer samples to tubes for centrifugation. Remove cell debris by centrifugation at a suitable speed and temperature. Collect the supernatant for downstream analysis.
Depending on the application, the lysate can be used for:
- کمی سازی پروتئین
- enzyme activity assays
- SDS-PAGE and Western blotting
- ELISA and immunoassays
- LC-MS/MS proteomics
- metabolite analysis
- DNA or RNA purification
7. Optimize and Document the Method
For reproducible yeast lysis, document all relevant parameters, including strain, culture condition, OD600, wet cell mass, buffer composition, plate type, sample volume, amplitude, pulse cycle, cumulative ON-time, cooling method, and final sample temperature.
اگر سونیکاتور هایلشر به ضبط خودکار دادهها مجهز باشد، میتوان از دادههای فرآیند برای مستندسازی، توسعه روش، مقیاسبندی و کنترل کیفیت استفاده کرد.
نکات بهینهسازی برای شکست دیواره مخمر
برای آزادسازی حداکثری پروتئین، از سوسپانسیونهای متراکم مخمر، شدت اولتراسونیک بالا و زمان تجمعی کافی استفاده کنید. برای پروتئینهای حساس، دامنه را کاهش دهید، فاصلههای خنکسازی را طولانی کنید و در طول اجرای آزمایش صفحه را سرد نگه دارید.
اگر شکست ناقص است، زمان سونیکیشن را مرحله به مرحله افزایش دهید، پیشدرمان آنزیمی را آزمایش کنید، ویسکوزیته نمونه را کاهش دهید یا بافر را بهینه کنید. اگر پروتئینها تجزیه میشوند یا فعالیت خود را از دست میدهند، خنکسازی را بهبود دهید، فاصلههای روشن را کوتاه کنید، مهارکنندهها اضافه کنید و مطمئن شوید که سیستم شوینده با پروتئین هدف سازگار است.
Because yeast strains differ substantially in cell wall structure, growth phase, expression system, and biomass density, a short optimization matrix is recommended. For example, test three amplitudes, two pulse cycles, and two total ON-times, then evaluate lysis efficiency and protein integrity.
چه چند صفحه آزمایش را پردازش کنید و چه غربالگری مخمر با توان بالا انجام دهید، هیلشر می تواند به شما کمک کند میکرو سونیکتور مناسب را انتخاب کرده و پروتکل لیز قوی توسعه دهید. با ما تماس بگیرید و نیازهای گونه مخمر، روند کاری و توان عملیاتی خود را اعلام کنید!
مزایای سونیکاتورهای میکروپلیت هیلشر برای لیز مخمر
سونیکاتورهای میکروپلیت هیلشر برای آزمایشگاههایی ایدهآل هستند که به لیز تکرارپذیر در نمونههای متعدد نیاز دارند. آنها روند کند پردازش یک نمونه در هر بار پروب سونیکیشن را از بین میبرند و نوسانات ناشی از موقعیتیابی دستی پروب، عمق فرو بردن و تفاوتهای پردازش نمونه به نمونه را کاهش میدهند.
مزایای کلیدی شامل موارد زیر است:
- پردازش با توان عملیاتی بالا: سونیکه کردن چند نمونه مخمر بهصورت موازی در میکروپلیتها یا رَکهای نمونه سازگار.
- شرایط تکرارپذیر: همان شرایط سونیکه کردن در تمام چاهکها برای نتایج لیز یکنواخت و قابل مقایسه.
- بدون آلودگی متقاطع پروب: نمونهها در طول سونیکیشن بسته باقی میمانند و باعث کاهش انتقال و مراحل تمیزکاری میشوند.
- مناسب برای سلولهای مقاوم: اولتراسوند با شدت بالا از تخریب دیواره سلولی مخمر پشتیبانی میکند.
- گردش کار کارآمد: ایدهآل برای بررسی سویهها، کلونها، شرایط بیان و بافرهای لیز.
- گردش کار کارآمد: تنظیمات قابل برنامهریزی، ثبت دادههای خودکار و مناسب برای اتوماسیون آزمایشگاه.
کاربردها در بیوتکنولوژی مخمر و تحقیقات علوم زیستی
لیز مخمر اولتراسونیک در میکروپلیت ها از بسیاری از جریان های کاری تحقیق و غربالگری پشتیبانی می کند. در بیان پروتئین های نوترکیب، کلون های P. pastoris و S. cerevisiae می توانند به صورت موازی لیز شوند تا سطح بیان یا فعالیت آنزیم ها مقایسه شود. در زیست شناسی سامانه ها و اومیکس، لیز استاندارد شده قابلیت مقایسه را در شرایط مختلف بهبود می بخشد. در میکروبیولوژی، سونیکاسیون از آماده سازی سریع لیزات ها از چندین سویه مختلف، شرایط محیطی یا درمان های استرس پشتیبانی می کند.
نمونههای معمول استفاده شامل:
- استخراج پروتئین مخمر
- غربالگری پروتئین نوترکیب
- غربالگری فعالیت آنزیم
- انتخاب کلون بعد از تغییر ژنتیکی
- بهینهسازی تخمیر
- آمادهسازی نمونههای پروتئومیکس
- آمادهسازی نمونههای متابولومیکس
- مطالعات تخریب دیواره سلولی
- آزمایشهای میکروبیولوژی با توان بالا
لیز مطمئن مخمر با سونیکاسیون کنترل شده آغاز میشود
لیز مخمر میتواند با افزایش تعداد نمونهها دشوار شود، اما سونیکاتورهای میکروپلیت هایلشر این فرایند را سریعتر، تمیزتر و قابل تکرارتر میکنند. UIP400MTP و UIP550MTP به پژوهشگران امکان میدهند تا صفحات کامل را تحت شرایط اولتراسونیک تعریفشده پردازش کنند، توان عملیاتی را افزایش داده و در عین حال دستکاری دستی را کاهش دهند.
برای میکروبیولوژیست ها، زیست شناسان مولکولی، دانشمندان پروتئین و آزمایشگاه های بیوتکنولوژی، سونیک میکروپلیت ابزاری قدرتمند برای آزادسازی اجزای مخمر درون سلولی به صورت کارآمد و قابل تکثیر است.
سؤالات متداول درباره لیز سلولهای مخمر با سونیکیشن میکروپلیت
آیا سلولهای مخمر میتوانند توسط سونیکیشن لیز شوند؟
بله. سلولهای مخمر مانند Saccharomyces cerevisiae و Pichia pastoris میتوانند توسط سونیکیشن با شدت بالا لیز شوند. کاویتاسیون التراسونیک نیروهای برشی مکانیکی قوی ایجاد میکند که دیواره و غشای سلول مخمر را مختل میکند و پروتئینها، آنزیمها، اسیدهای نوکلئیک و متابولیتها را آزاد میکند.
چرا سلولهای مخمر سختتر از سلولهای باکتریایی لیز میشوند؟
سلولهای مخمر دیواره سلولی ضخیم و مقاوم مکانیکی دارند که عمدتاً از گلوکانها، ماننوپروتئینها و کیتین تشکیل شده است. این ساختار سخت باعث میشود که مخمر نسبت به بسیاری از سلولهای باکتریایی یا سلولهای پستانداران سختتر مختل شود. بنابراین، لیز مخمر معمولاً نیاز به شدت بالاتر، پردازش طولانیتر یا پیشدرمان آنزیمی اختیاری دارد.
کدام سونیکاتورهای هیلشر برای لیز مخمر در میکروپلیتها مناسب هستند؟
سونیکاتورهای Hielscher UIP400MTP و UIP550MTP برای لیز مخمر با توان بالا در میکروپلیتها مناسب هستند. UIP400MTP برای تهیه نمونههای موازی روزمره ایدهآل است، در حالی که UIP550MTP قدرت اولتراسونیک بیشتری برای کارهای لیز پرتقاضا، سوسپانسیونهای متراکم و گونههای مقاوم مخمر فراهم میکند.
آیا میتوان Pichia pastoris را در سونیکاتور میکروپلیت لیز کرد؟
بله. Pichia pastoris که همچنین به نام Komagataella phaffii شناخته میشود، میتواند با استفاده از سونیکاسیون میکروپلیت با شدت بالا لیز شود. از آنجا که P. pastoris میتواند بیوماس متراکم تشکیل دهد و دارای دیواره سلولی مقاوم است، بهینهسازی دامنه، چرخه پالس، خنکسازی و زمان کل سونیکاسیون توصیه میشود.
پارامترهای معمول سونیکاسیون برای لیز مخمر چیستند؟
یک بازه شروع مفید شامل ۵۰–۸۰٪ دامنه، عملیات پالسی مانند ۱۰–۳۰ ثانیه روشن و ۳۰–۶۰ ثانیه خاموش، و ۵–۱۵ دقیقه زمان روشن شدن تجمعی است. پارامترهای دقیق بستگی به کرنش مخمر، چگالی سلول، حجم نمونه، نوع صفحه، بافر و مولکول هدف دارد.
چرا باید تجزیه مخمر با حالت پالسی انجام شود؟
حالت پالسی باعث کاهش تجمع حرارت در حین سونیکاسیون میشود. در فاز روشن، کاویتاسیون التراسونیک سلولها را تخریب میکند. در فاز خاموش، نمونه میتواند خنک شود. این مهم است زیرا حرارت بیش از حد میتواند پروتئینها را دناتوره کند، فعالیت آنزیم را کاهش دهد، RNA را تجزیه کند و قابلیت تکرارپذیری را تحت تأثیر قرار دهد.
آیا پیشدرمان آنزیمی قبل از سونیکاسیون سلولهای مخمر لازم است؟
پیشدرمان آنزیمی همیشه لازم نیست، اما میتواند کارایی تجزیه را بهبود بخشد. آنزیمهایی مانند زایمولایز یا لایتیکاز دیواره سلولی مخمر را بهطور جزئی هضم میکنند و میتوانند شدت یا زمان سونیکاسیون لازم برای تجزیه کامل را کاهش دهند. این میتواند برای پروتئینهای حساس یا گونههای دشوار مفید باشد.
چگونه میتوان از داغ شدن بیش از حد در حین سونیکاسیون مخمر جلوگیری کرد؟
از بافرهای پیش سرد شده، حالت پالس، توقف های خنک کننده و تنظیمات صفحه خنک شده استفاده کنید. میکروپلیت را مهر و موم نگه دارید و تا حد امکان دما را کنترل کنید. برای پروتئین های حساس، از بازه های ON کوتاه تر، بازه های OFF طولانی تر و پردازش نمونه ها در شرایط سرد استفاده کنید.
آیا سونیک میکروپلیت می تواند جایگزین ضربه زدن مهره ای برای لیز مخمر شود؟
در بسیاری از جریانهای کاری، بله. سونیکاسیون در میکروپلیت میتواند جایگزین ضربه زدن با مهرهها شود زمانی که لیز تمیز، تکرارپذیر و موازی مورد نیاز است. این روش از دستکاری مهرهها جلوگیری میکند، پیچیدگی مصرفیها را کاهش میدهد و اتوماسیون را ساده میکند. با این حال، هر برنامه باید با مقایسه بازده لیز، انسجام پروتئین و عملکرد آزمایش اعتبارسنجی شود.
آیا سونیکاسیون میکروپلیت برای استخراج پروتئین از مخمر مناسب است؟
بله. سونیکاسیون میکروپلیت برای استخراج پروتئین از مخمر بسیار مناسب است، بهویژه زمانی که باید کلونها یا شرایط کشت زیادی مقایسه شوند. مهارکنندههای پروتئاز، بافرهای سرد و تنظیمات پالس کنترل شده به حفظ کیفیت پروتئین کمک میکنند.
آیا میتوان از همان روش برای استخراج DNA، RNA و پروتئین استفاده کرد؟
اصل پایهای سونیکاسیون مشابه میتواند استفاده شود، اما بافر و شرایط فرآیند باید با مولکول هدف تطبیق داده شوند. جریانهای کاری پروتئین نیاز به مهار پروتئاز و کنترل دما دارند. جریانهای کاری RNA نیاز به دستکاری بدون RNase و خنککنندگی شدید دارند. جریانهای کاری DNA ممکن است بسته به اینکه DNA ژنومی سالم یا DNA تکهتکه شده مورد نظر است، شرایط مختلفی برای لیز و خالصسازی نیاز داشته باشند.
چه نوع پلیت باید برای لیز مخمر استفاده شود؟
از یک میکروپلیت یا پلیت عمیق سازگار با سونیکاسیون همراه با مهر و موم مناسب استفاده کنید. پلیتهای ته گرد اغلب برای دستکاری معلق مفید هستند. پلیت باید شرایط انتخاب شده سونیکاسیون، دمای نمونه و مراحل سانتریفیوژ را تحمل کند.
چگونه میتوانم بفهمم که لیز مخمر کامل شده است؟
بازده لیز میتواند با میکروسکوپ، بازده پروتئین، فعالیت آنزیم، کاهش ویسکوزیته، تحلیل SDS-PAGE، بازده DNA/RNA، یا مقایسه با یک روش لیز شناختهشده بررسی شود. برای توسعه روش، هم بازده و هم کیفیت مولکول هدف آزاد شده ارزیابی شود.
UIP400MTP یا UIP550MTP: کدام سونیکاتور میکروپلیت را باید انتخاب کنید؟
UIP400MTP یک سونیکاتور میکروپلیت قدرتمند برای آمادهسازی نمونههای با حجم بالا بهطور روتین است، از جمله لیز مخمر، استخراج پروتئین، برش DNA، جدا کردن بیوفیلم و آمادهسازی آزمونها. این دستگاه برای آزمایشگاههایی که نیاز به سونیکیشن تکرارپذیر در قالبهای استاندارد پلیت دارند، مناسب است.
دستگاه UIP550MTP قدرت اولتراسوند بالاتری ارائه میدهد و زمانی که برنامههای کاربردی پرتقاضا نیاز به شدت صوتی قویتر، زمان پردازش کوتاهتر، بارگذاری نمونه بالاتر یا شرایط تخریب مقاومتر دارند، توصیه میشود. برای لیز مخمر، UIP550MTP بهویژه برای بیوماس متراکم، سویههای دشوار، حجمهای کاری بزرگتر و غربالگری بیان با کارایی بالا مفید است.
آیا لیزیس مخمر با سونوگرافی میکروپلیت قابل خودکارسازی است؟
بله. سونیکاسیون مبتنی بر میکروپلیت برای جریانهای کاری خودکار آزمایشگاهی بسیار مناسب است زیرا نمونهها در قالب پلیت باقی میمانند. این امر از یکپارچهسازی با سیستمهای پیپتینگ، مدیریت پلیت، سانتریفیوژ، آمادهسازی آزمایش و جریانهای کاری غربالگری با توان بالا پشتیبانی میکند.
ادبیات / منابع
- FactSheet UIP400MTP Multi-well Plate Sonicator – Non-Contact Sonicator – Hielscher Ultrasonics
- FactSheet UIP550MTP Multi-well Plate Sonicator – Non-Contact Sonicator – Hielscher Ultrasonics
- Lauren E. Cruchley-Fuge, Martin R. Jones, Ossama Edbali, Gavin R. Lloyd, Ralf J. M. Weber, Andrew D. Southam, Mark R. Viant (2024): Automated extraction of adherent cell lines from 24-well and 96-well plates for multi-omics analysis using the Hielscher UIP400MTP sonicator and Beckman Coulter i7 liquid handling workstation. Metabomeeting 2024, University of Liverpool, 26-28th November 2024.
- Cosenza-Contreras M, Seredynska A, Vogele D, Pinter N, Brombacher E, Cueto RF, Dinh TJ, Bernhard P, Rogg M, Liu J, Willems P, Stael S, Huesgen PF, Kuehn EW, Kreutz C, Schell C, Schilling O. (2024): TermineR: Extracting information on endogenous proteolytic processing from shotgun proteomics data. Proteomics 2024.



