Protocolo del ensayo de concentración mínima inhibitoria (MIC)
El ensayo de concentración mínima inhibitoria (MIC) basado en biopelículas es un método esencial para evaluar la eficacia de los agentes antimicrobianos frente a los microorganismos asociados a biopelículas, que presentan una mayor resistencia debido a su matriz extracelular protectora. Un paso crucial de este ensayo es el desprendimiento de las estructuras de la biopelícula para liberar las células inmersas en ella y evaluar su viabilidad con precisión. El sonicador de placas multipocillo UIP400MTP facilita este proceso mediante ultrasonidos focalizados que generan cavitación controlada, desprendiendo eficazmente las células de la biopelícula y dispersándolas en una suspensión uniforme. Esta disgregación precisa y reproducible de la biopelícula mejora la fiabilidad y la capacidad de procesamiento de los ensayos MIC, lo que convierte al UIP400MTP en una herramienta esencial para el avance de la investigación sobre biopelículas.
¿Por qué utilizar la sonicación durante los ensayos MIC?
- Datos precisos y reproducibles: Obtenga suspensiones celulares uniformes que eliminen la protección de la matriz, garantizando que los recuentos de colonias y las lecturas de densidad óptica reflejen fielmente la eficacia antimicrobiana.
- Eficiencia con alta capacidad de procesamiento: Procese simultáneamente una placa completa de 96 pocillos en solo 1–3 minutos, sustituyendo el raspado manual lento e irregular por un flujo de trabajo optimizado.
- Conservación de la viabilidad celular: Desprenda suavemente las células inmersas en la biopelícula sin los daños físicos causados por el raspado, manteniendo tasas de supervivencia más altas para obtener cálculos fiables de MIC/MBEC.
- Riesgo nulo de contaminación cruzada: Benefíciese de un diseño de sonotrodo de copa sin contacto que trata todos los pocillos de manera uniforme, sin que las sondas toquen las muestras ni los pocillos individuales.
- Cumplimiento de normas: Ajuste su metodología a protocolos validados del sector, como ASTM E2799-22, para aportar mayor credibilidad a sus datos con fines regulatorios o de publicación.
- Cribado fiable de fármacos y tratamientos: Confíe en sus resultados de sensibilidad para tomar decisiones mejor fundamentadas sobre la eficacia antimicrobiana, la caracterización de la resistencia o el desarrollo terapéutico.
Aumente la productividad de su laboratorio conservando la viabilidad celular. Indíquenos qué tipo de microplaca utiliza y reciba recomendaciones para desprender eficazmente las biopelículas y dispersar las células mediante sonicación de alta capacidad de procesamiento.
Sonicador de microplacas UIP400MTP para el desprendimiento de biopelículas con un control preciso en ensayos MIC y MBEC.
Sonicación para el desprendimiento de biopelículas
El ensayo MIC basado en biopelículas suele medir la viabilidad bacteriana o la inhibición del crecimiento mediante métodos como la siembra en placa, el recuento de colonias o las mediciones de densidad óptica. La sonicación es un paso crucial de los ensayos MIC basados en biopelículas cuando se evalúa la sensibilidad a los antimicrobianos de los microorganismos asociados a biopelículas. Su función principal es desprender y dispersar las células inmersas en la matriz de la biopelícula en una suspensión uniforme para realizar un análisis preciso.
Las biopelículas son considerablemente más resistentes a los agentes antimicrobianos que las células planctónicas, por lo que un desprendimiento adecuado resulta crucial para un análisis preciso. Durante este proceso, las ondas ultrasónicas generan cavitación controlada, disgregando la matriz de la biopelícula y liberando las células inmersas en ella en una suspensión uniforme dentro del medio de recuperación. Este paso permite evaluar con precisión la viabilidad de las células dispersadas de la biopelícula mediante métodos como la siembra en placa, la dilución y el recuento de colonias. La disgregación adecuada de la biopelícula mediante sonicación evita que los componentes residuales de la matriz protejan las células, lo que, de otro modo, podría llevar a subestimar la actividad antimicrobiana. El sonicador de placas multipocillo UIP400MTP es especialmente adecuado para este fin, ya que ofrece condiciones de sonicación precisas y reproducibles que garantizan una preparación fiable de las placas de ensayo con alta capacidad de procesamiento.
Por qué es necesaria la sonicación en los ensayos de concentración mínima inhibitoria basados en biopelículas
Para medir la viabilidad y realizar recuentos celulares, se requiere un desprendimiento y una dispersión completos y fiables de células individuales. El UIP400MTP favorece el desprendimiento uniforme de las biopelículas y la dispersión celular sin causar daños, para obtener resultados sólidos en los ensayos.
- Complejidad de las biopelículas: Las biopelículas son comunidades microbianas estructuradas rodeadas por una matriz de sustancias poliméricas extracelulares (EPS), que protege a los microorganismos y los hace más resistentes a los agentes antimicrobianos.
- Dispersión uniforme: Para medir con precisión la viabilidad de las células inmersas en la biopelícula o su sensibilidad a los antimicrobianos, primero debe desprenderse y disgregarse la biopelícula hasta obtener una suspensión homogénea.
Mientras que la MIC estándar mide la resistencia de las células planctónicas, la sonicación es esencial en los ensayos MIC de biopelículas y MBEC para garantizar la recuperación de la cantidad basal correcta de células.
Protocolo del ensayo de concentración mínima inhibitoria basado en biopelículas
El ensayo de concentración mínima inhibitoria (MIC) determina la concentración más baja de un agente antimicrobiano necesaria para inhibir el crecimiento visible de los microorganismos. Este protocolo está diseñado para microorganismos asociados a biopelículas y utiliza el sonicador de placas multipocillo UIP400MTP para disgregar las biopelículas.
Paso 1: Preparación del inóculo bacteriano
- Prepare la suspensión bacteriana:
Cultive las bacterias en medios adecuados hasta la fase logarítmica media.
Diluya el cultivo para obtener una densidad celular estandarizada (p. ej., estándar 0,5 de McFarland u OD600 ~0,1). - Prepare las soluciones antimicrobianas:
Diluya el agente antimicrobiano en un medio adecuado para obtener un intervalo de concentraciones (p. ej., diluciones seriadas al doble). - Dispense en la placa de 96 pocillos:
Añada las soluciones antimicrobianas a los pocillos de una placa estándar de 96 pocillos, con un volumen final por pocillo de ~150–200 µL.
Incluya controles de crecimiento (sin antimicrobiano) y controles de esterilidad (sin inóculo bacteriano).
Paso 2: Formación de biopelículas en la tapa con clavijas
- Coloque la tapa con clavijas:
Coloque la tapa especializada con clavijas sobre los pocillos inoculados, asegurándose de que las clavijas queden completamente sumergidas en la suspensión bacteriana. - Incube la placa:
Incube a la temperatura adecuada (p. ej., 37 °C) durante un tiempo especificado (p. ej., 24 horas) en condiciones estáticas para permitir la formación de biopelículas en las clavijas. - Enjuague las clavijas:
Retire la tapa con clavijas de la suspensión bacteriana y enjuáguela suavemente con solución salina estéril o PBS para eliminar las células planctónicas débilmente adheridas. - Exponga las biopelículas a los antimicrobianos:
Transfiera la tapa con clavijas a una nueva placa de 96 pocillos que contenga las diluciones antimicrobianas preparadas previamente.
Incube durante un periodo definido (p. ej., 24 horas) en condiciones estáticas para permitir que el agente antimicrobiano actúe sobre las biopelículas.
Paso 3: Exposición a los antimicrobianos
Sonicador de placas multipocillo UIP400MTP para la preparación de muestras con alta capacidad de procesamiento
Paso 4: Sonicación con el sonicador de microplacas UIP400MTP
La etapa de sonicación es crucial para desprender las biopelículas de las tapas con clavijas y evaluar su viabilidad. Siga estos pasos para utilizar el sonicador UIP400MTP:
- Prepare el montaje:
Llene cada pocillo de una nueva placa de 96 pocillos con medio de recuperación (p. ej., caldo neutralizante o medio de crecimiento estéril). - Transfiera la tapa con clavijas:
Retire la tapa con clavijas de la placa de tratamiento antimicrobiano.
Enjuague la tapa con clavijas con solución salina estéril o PBS para eliminar los agentes antimicrobianos residuales. - Coloque la placa en el sonicador:
Coloque la tapa con clavijas sobre la placa con medio de recuperación.
Introduzca la placa con medio de recuperación en el sonicador UIP400MTP, asegurándose de que quede centrada y estable, tal como se describe en el manual. - Ajuste los parámetros de sonicación:
Configure los parámetros de sonicación en el UIP400MTP (los ajustes pueden adaptarse a la biopelícula):
Amplitud: 70–100%.
Tiempo de sonicación: 1–3 minutos (ajústelo según la estructura de la biopelícula) en modo cíclico. - Sonique:
Inicie el proceso de sonicación. Las ondas ultrasónicas disgregarán la matriz de la biopelícula y desprenderán las células, liberándolas en el medio de recuperación. - Supervise el proceso:
Utilice el sensor de temperatura conectable para supervisar la temperatura de las muestras en los pocillos. El UIP400MTP puede conectarse a un refrigerador de laboratorio para la refrigeración. - Manipulación posterior a la sonicación:
Transfiera inmediatamente el medio de recuperación que contiene las biopelículas desprendidas a una nueva placa estéril para su posterior análisis.
(A) Placa que contiene TSB con 2% de glucosa, utilizada para la formación de biopelículas, la recuperación celular y la determinación de MIC y MBEC; (B) Tapa con clavijas para la formación de biopelículas estafilocócicas.
Las células de la biopelícula formada en las clavijas se desprendieron mediante sonicación (Hielscher Ultrasound Technology) durante 5 min en placas de 96 pocillos que contenían medio de cultivo fresco para la recuperación de las células.
(Imagen y estudio: ©de Oliveira et al., 2016)
Paso 4: Evaluación de la viabilidad
Siembre en placa y cultive las biopelículas desprendidas:
- Realice diluciones seriadas del medio de recuperación y siémbrelas en agar para determinar el número de unidades formadoras de colonias (CFU).
- Evalúe la MIC:
Determine la MIC como la concentración antimicrobiana más baja que inhibe por completo el crecimiento microbiano visible en el medio de recuperación.
¡Adopte la sonicación precisa sin contacto para garantizar una suspensión celular uniforme y resultados MIC fiables!
¿Quién se beneficia de la sonicación durante los ensayos MIC?
- Fabricantes de productos sanitarios: Para comprobar la eficacia de los recubrimientos superficiales y validar los protocolos de limpieza de dispositivos propensos a la formación de biopelículas.
- Microbiólogos clínicos: Para diagnosticar con precisión las infecciones asociadas a implantes (como la PJI) mediante la recuperación de bacterias de los componentes de los dispositivos médicos.
- Desarrolladores de productos farmacéuticos: Para evaluar la eficacia de nuevos agentes antimicrobianos frente a patógenos resistentes inmersos en biopelículas.
- Investigadores académicos: Para realizar estudios reproducibles con alta capacidad de procesamiento sobre la biología de las biopelículas y los mecanismos de resistencia a los antimicrobianos.
- Equipos de control de calidad industrial: Para evaluar la bioincrustación y la eficacia de los desinfectantes en entornos industriales (p. ej., mediante las normas ASTM E2799-22).
Diseño, fabricación y asesoramiento – Calidad fabricada en Alemania
Los ultrasonicadores de Hielscher son conocidos por sus altísimos estándares de calidad y diseño. Su robustez y facilidad de uso permiten integrar nuestros ultrasonicadores sin dificultades en las instalaciones industriales. Los sonicadores de Hielscher funcionan sin problemas en condiciones adversas y entornos exigentes.
Hielscher Ultrasonics es una empresa con certificación ISO y pone especial énfasis en los ultrasonicadores de alto rendimiento que incorporan tecnología de última generación y ofrecen facilidad de uso. Por supuesto, los ultrasonicadores de Hielscher cumplen la normativa CE y los requisitos de UL, CSA y RoHs.
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Bibliografía / Referencias
- FactSheet UIP400MTP Multi-well Plate Sonicator – Non-Contact Sonicator – Hielscher Ultrasonics
- Dreyer J., Ricci G., van den Berg J., Bhardwaj V., Funk J., Armstrong C., van Batenburg V., Sine C., VanInsberghe M.A., Marsman R., Mandemaker I.K., di Sanzo S., Costantini J., Manzo S.G., Biran A., Burny C., Völker-Albert M., Groth A., Spencer S.L., van Oudenaarden A., Mattiroli F. (2024): Acute multi-level response to defective de novo chromatin assembly in S-phase. Molecular Cell 2024.
- Mochizuki, Chika; Taketomi, Yoshitaka; Irie, Atsushi; Kano, Kuniyuki; Nagasaki, Yuki; Miki, Yoshimi; Ono, Takashi; Nishito, Yasumasa; Nakajima, Takahiro; Tomabechi, Yuri; Hanada, Kazuharu; Shirouzu, Mikako; Watanabe, Takashi; Hata, Kousuke; Izumi, Yoshihiro; Bamba, Takeshi; Chun, Jerold; Kudo, Kai; Kotani, Ai; Murakami, Makoto (2024): Secreted phospholipase PLA2G12A-driven lysophospholipid signaling via lipolytic modification of extracellular vesicles facilitates pathogenic Th17 differentiation. BioRxiv 2024.
- Cosenza-Contreras M, Seredynska A, Vogele D, Pinter N, Brombacher E, Cueto RF, Dinh TJ, Bernhard P, Rogg M, Liu J, Willems P, Stael S, Huesgen PF, Kuehn EW, Kreutz C, Schell C, Schilling O. (2024): TermineR: Extracting information on endogenous proteolytic processing from shotgun proteomics data. Proteomics. 2024.
- De Oliveira A, Cataneli Pereira V, Pinheiro L, Moraes Riboli DF, Benini Martins K, Ribeiro de Souza da Cunha MDL (2016): Antimicrobial Resistance Profile of Planktonic and Biofilm Cells of Staphylococcus aureus and Coagulase-Negative Staphylococci. International Journal of Molecular Sciences 17(9):1423; 2016.
- Martins KB, Ferreira AM, Pereira VC, Pinheiro L, Oliveira A, Cunha MLRS (2019): In vitro Effects of Antimicrobial Agents on Planktonic and Biofilm Forms of Staphylococcus saprophyticus Isolated From Patients With Urinary Tract Infections. Frontiers in Microbiology 2019.
Preguntas frecuentes
¿Qué es el ensayo MIC?
El ensayo de concentración mínima inhibitoria (MIC) es una prueba estandarizada que se utiliza para determinar la concentración más baja de un agente antimicrobiano necesaria para inhibir el crecimiento visible de un microorganismo. Suele realizarse mediante métodos de microdilución en caldo o dilución en agar, en los que los microorganismos se exponen a diluciones seriadas del agente antimicrobiano. Los ensayos MIC son fundamentales para evaluar la eficacia antimicrobiana, orientar el tratamiento clínico y valorar los niveles de resistencia tanto de los microorganismos planctónicos como de los asociados a biopelículas.
¿Cuál es la diferencia entre el ensayo de concentración mínima inhibitoria basado en biopelículas y el ensayo MBIC?
El ensayo de concentración mínima inhibitoria (MIC) basado en biopelículas y el ensayo de concentración mínima inhibitoria de biopelículas (MBIC) están relacionados, pero difieren en su finalidad y metodología.
El ensayo MIC basado en biopelículas evalúa la concentración más baja de un agente antimicrobiano necesaria para inhibir el crecimiento visible o la viabilidad de la biopelícula, centrándose en las células asociadas a biopelículas en lugar de las bacterias planctónicas. En cambio, el ensayo MBIC mide específicamente la capacidad de un agente antimicrobiano para prevenir la formación de biopelículas, en lugar de tratar biopelículas ya formadas. Aunque ambos ensayos estudian bacterias asociadas a biopelículas, el ensayo MIC basado en biopelículas aborda el tratamiento, mientras que el ensayo MBIC se centra en la prevención, lo que los convierte en herramientas complementarias para estudiar la eficacia antimicrobiana frente a las biopelículas.
¿Qué biopelículas se utilizan en los ensayos MIC?
Tanto las biopelículas microbianas como las células planctónicas se utilizan en los ensayos de concentración mínima inhibitoria (MIC) para estudiar la eficacia antimicrobiana en distintas condiciones.
- Células planctónicas:
Las células planctónicas son células microbianas individuales que flotan libremente y sirven como modelo estándar para los ensayos MIC tradicionales. Entre los microorganismos habituales se encuentran Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus y Candida albicans. Estos ensayos determinan la MIC necesaria para inhibir el crecimiento de las células de vida libre y son fundamentales para el cribado inicial de antimicrobianos. - Células asociadas a biopelículas:
Las células de las biopelículas son microorganismos inmersos en una matriz extracelular, que aumenta considerablemente su resistencia a los antimicrobianos. Los ensayos MIC de biopelículas suelen incluir:- Bacterias gramnegativas: Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa y Klebsiella pneumoniae, conocidas por la formación de biopelículas en infecciones y entornos industriales.
- Bacterias grampositivas: Staphylococcus aureus (incluido MRSA), Staphylococcus epidermidis y Enterococcus faecalis, habitualmente implicadas en infecciones relacionadas con dispositivos.
- Hongos: Candida albicans y especies relacionadas, importantes en las infecciones fúngicas asociadas a biopelículas.
- Biopelículas de especies mixtas: en ocasiones se utilizan para reproducir biopelículas polimicrobianas naturales, como las que se encuentran en heridas crónicas o en la bioincrustación industrial.
Al comparar los valores de MIC de las células planctónicas y las células asociadas a biopelículas, los investigadores pueden evaluar la mayor resistencia de las biopelículas e identificar agentes eficaces frente a estas comunidades microbianas más resistentes.
¿Cuál es la diferencia entre MIC y MBEC?
La concentración mínima inhibitoria (MIC) es la concentración más baja de un agente antimicrobiano necesaria para prevenir la formación de biopelículas, mientras que la concentración mínima de erradicación de biopelículas (MBEC) es la concentración más baja necesaria para erradicar una biopelícula establecida. La MIC se centra en la prevención de biopelículas, mientras que la MBEC evalúa la eficacia del tratamiento frente a biopelículas maduras.
¿Qué placas se utilizan habitualmente para los ensayos MBEC?
Las placas de microtitulación utilizadas habitualmente para los ensayos MBEC suelen ser placas de 96 pocillos fabricadas en poliestireno o polipropileno. Estos materiales proporcionan una superficie adecuada para la formación de biopelículas y son químicamente resistentes a los agentes antimicrobianos evaluados durante el ensayo. Las placas de poliestireno gozan de amplia preferencia por su transparencia óptica, que resulta ventajosa para los análisis posteriores, como las mediciones espectrofotométricas o basadas en fluorescencia. El diseño de estas placas incluye tapas desmontables con clavijas, esenciales para el ensayo, ya que las biopelículas se forman en las clavijas sumergidas en los pocillos que contienen los medios de crecimiento. Las placas estandarizadas, como las que cumplen el protocolo del ensayo MBEC, están diseñadas específicamente para garantizar la reproducibilidad y la compatibilidad con el sonicador UIP400MTP u otros equipos de procesamiento.
¿Qué son las placas con tapa PEG?
Las placas con tapa PEG son sistemas especializados de placas multipocillo cuya tapa está equipada con pequeñas clavijas o pines de polietilenglicol (PEG) que se introducen en cada pocillo. Estas clavijas proporcionan una superficie para la formación de biopelículas microbianas en condiciones controladas, imitando el crecimiento de las biopelículas en condiciones reales. El diseño permite que las biopelículas se desarrollen en las clavijas mientras los pocillos contienen medios de crecimiento o agentes antimicrobianos, lo que posibilita evaluar la sensibilidad de las biopelículas a los tratamientos con alta capacidad de procesamiento, como en los ensayos MBEC, MBIC y MIC.
¿Qué ventaja ofrece el desprendimiento ultrasónico de biopelículas frente al raspado celular?
El desprendimiento ultrasónico de biopelículas ofrece una ventaja significativa frente al raspado celular, ya que proporciona un método no invasivo, uniforme y muy eficiente para retirar biopelículas de las superficies. A diferencia del raspado, que puede ser irregular y dañar la superficie subyacente o las células, las ondas ultrasónicas penetran en la matriz de la biopelícula y la disgregan sin comprometer la integridad de las estructuras adyacentes. Este método garantiza la reproducibilidad, minimiza el riesgo de contaminación y es especialmente eficaz en aplicaciones que requieren una eliminación precisa de las biopelículas, como los estudios microbiológicos o los ensayos de productos sanitarios. ¡Lea más sobre cómo el sonicador UIP400MTP supera al raspado celular!
Hielscher Ultrasonics fabrica homogeneizadores ultrasónicos de alto rendimiento, desde equipos de laboratorio hasta equipos de escala industrial.
