Protokol kultivace a oddělování stafylokokového biofilmu
Standardizované metody jsou nezbytné pro spolehlivé výsledky výzkumu. Zde naleznete protokol kultivace a oddělování stafylokokových biofilmů. Tento protokol se zaměřuje na zefektivněnou vysokokapacitní přípravu vzorků pomocí sonikátoru pro vícejamkové destičky UIP400MTP pro efektivní vysokokapacitní oddělování biofilmu v 96jamkových destičkách. Protokol rovněž obsahuje klíčové kroky kultivace, promývání a vizualizace biofilmu se zaměřením na minimalizaci variability a zajištění reprodukovatelnosti.
Stafylokokový biofilm a výzkum antibiotik
Stafylokokové biofilmy hrají zásadní roli u perzistentních infekcí díky své odolnosti vůči antibiotikům a imunitním reakcím. Tvorba biofilmu poskytuje bakteriím ochranné prostředí, a proto se infekce obtížně léčí. Výzkum biofilmů se často zaměřuje na pochopení jejich tvorby, chování a citlivosti k antimikrobiálním látkám, s důrazem na vysokokapacitní metody, které zefektivňují experimentální postupy.
Sonikátor pro vícejamkové destičky UIP400MTP nabízí ve výzkumu biofilmů významnou výhodu, protože umožňuje rychlé a efektivní oddělení biofilmů z 96jamkových destiček. Toto zařízení dodává rovnoměrnou ultrazvukovou energii do všech jamek, čímž zajišťuje konzistentní výsledky a zároveň minimalizuje variabilitu.
Protokol kultivace a oddělování stafylokokového biofilmu
Níže vás krok za krokem provedeme procesem kultivace a oddělení stafylokokového biofilmu. Jako příkladný analytický krok vám ukážeme, jak spektrofotometricky kvantifikovat kultivovanou biomasu barvením krystalovou violetí.
Kultivace stafylokokového biofilmu
Potřebný materiál:
- Sterilní 96jamkové polystyrenové mikrotitrační destičky s plochým dnem, upravené pro tkáňové kultury, s víčky
- Tryptický sójový bujón (TSB) s 0,25% glukózy
- Biologický bezpečnostní box
Postup:
- Připravte sterilní pracovní prostředí v biologickém bezpečnostním boxu, abyste minimalizovali kontaminaci.
- Do jamek mikrotitrační destičky přidejte TSB obsahující 0,25% glukózy. TSB bez glukózy obecně nepodporuje tvorbu biofilmu a měl by se používat pouze jako kontrola, je-li to nutné.
- Jamky inokulujte bakteriálními kmeny připravenými podle níže uvedeného popisu:
- Připravte bakteriální suspenze a zajistěte, aby neobsahovaly předem existující shluky buněk, a to homogenizací suspenzí pomocí sonikace nebo rozbitím shluků jehlou o velikosti 23 G a krátkým vortexováním.
- Uzavřete destičku víčkem a inkubujte za podmínek optimálních pro tvorbu biofilmu (např. 37°C po dobu 24 hodin).
- Pro zajištění spolehlivosti proveďte experiment pro každý bakteriální kmen v triplikátu (tři jamky na kmen).
- Na každé destičce vyhraďte šest jamek pro negativní kontroly. Na jedné 96jamkové destičce lze testovat až 30 kmenů.
Vizualizace a promývání biofilmu
- Po inkubaci opatrně odstraňte médium, abyste biofilm nenarušili.
- Každou jamku čtyřikrát promyjte fyziologickým roztokem, abyste odstranili planktonní bakterie.
- Zkontrolujte dno jamek, zda se na něm nenacházejí bílé skvrny ukazující na přítomnost biofilmu.
Oddělení biofilmu pomocí sonikátoru pro vícejamkové destičky UIP400MTP
Nastavení zařízení a parametry:
- Sonikátor pro vícejamkové destičky UIP400MTP
- Provozní nastavení: amplituda 60%, cyklický režim 60 sekund ZAP / 30 sekund VYP
Postup:
- Umístěte promytou mikrotitrační destičku na platformu UIP400MTP.
- Sonikujte vzorky při doporučeném nastavení (amplituda 60%, 60 sekund ZAP, 30 sekund VYP). Nastavení přizpůsobte bakteriálnímu kmeni.
- Spusťte proces sonikace k oddělení biofilmu. Ultrazvukové vlny narušují matrici biofilmu a uvolňují adherentní bakterie.
- UIP400MTP zajišťuje rovnoměrné působení ve všech jamkách pro konzistentní výsledky oddělení.
Analytický krok: Kvantifikace biomasy odděleného stafylokokového biofilmu pomocí krystalové violeti (CV)
Potřebný materiál:
- 0,1% roztok krystalové violeti (CV)
- 95% ethanol nebo 30% kyselina octová (pro solubilizaci)
- Čtečka mikrodestiček schopná měření při 570 nm
- Sterilní mikrotitrační destičky pro barvení
Postup:
- Příprava barvicí destičky: Přeneste 100 µL suspenze odděleného biofilmu z každé jamky sonikované destičky do odpovídajících jamek čisté sterilní 96jamkové mikrotitrační destičky. Tím se zajistí čisté a jednotné prostředí pro barvení.
- Barvení odděleného biofilmu: Do každé jamky obsahující suspenzi odděleného biofilmu přidejte 150 µL 0,1% roztoku krystalové violeti. Jemně pipetujte, aby se suspenze biofilmu a krystalová violeť rovnoměrně promíchaly.
- Inkubace: Nechte destičku inkubovat při pokojové teplotě 15 minut, aby krystalová violeť účinně obarvila biomasu.
- Promývání: Po inkubaci opatrně odstraňte roztok krystalové violeti z jamek, aniž byste narušili biomasu. Každou jamku třikrát promyjte sterilním fyziologickým roztokem, abyste odstranili nenavázané barvivo.
- Sušení: Nechte destičku uschnout na vzduchu při pokojové teplotě nebo pod sterilním laminárním boxem. Vyhněte se zahřívání, protože by mohlo změnit výsledky.
- Solubilizace: Do každé jamky přidejte 200 µL 95% ethanolu (nebo 30% kyseliny octové, v závislosti na standardní laboratorní praxi), aby se navázaná krystalová violeť rozpustila. Jemně promíchejte pipetováním nebo třepáním destičky po dobu 10 minut při pokojové teplotě.
- Měření: Změřte optickou hustotu (OD) solubilizovaného roztoku krystalové violeti při 570 nm pomocí čtečky mikrodestiček.
- Analýza dat: Od hodnot experimentálních jamek odečtěte průměrnou hodnotu OD570 negativních kontrol (jamky s TSB, ale bez bakteriálního inokula), abyste zohlednili barvení pozadí. Data zaznamenejte a analyzujte.
Poznámka: Pro zajištění reprodukovatelnosti proveďte experiment pro každou podmínku v triplikátu. Zajistěte správné zacházení s krystalovou violetí a ethanolem a dodržujte bezpečnostní předpisy a postupy pro likvidaci.
Hlavní výhody UIP400MTP v kostce:
- Vysokokapacitní zpracování: Navrženo speciálně pro vícejamkové destičky, což vám umožňuje zpracovávat více vzorků současně.
- Rovnoměrná distribuce ultrazvuku: Zajišťuje stejnou intenzitu ultrazvuku ve všech jamkách a poskytuje tak konzistentní výsledky u všech vzorků.
- Použijte jakoukoli standardní destičku: UIP400MTP pojme jakékoli standardní vícejamkové destičky, Petriho misky a stojánky na zkumavky. Nejsou potřeba žádné drahé proprietární destičky!
- Uživatelsky přívětivé rozhraní: Snadné nastavení a ovládání z něj činí vynikající nástroj pro zvýšení produktivity laboratoře. Programovatelná nastavení a automatizace usnadňují standardizaci procesů!
Vysokokapacitní oddělování biofilmu pomocí sonikátoru pro 96jamkové destičky UIP400MTP
Literatura / Reference
- FactSheet UIP400MTP Multi-well Plate Sonicator – Non-Contact Sonicator – Hielscher Ultrasonics
- Lauren E. Cruchley-Fuge, Martin R. Jones, Ossama Edbali, Gavin R. Lloyd, Ralf J. M. Weber, Andrew D. Southam, Mark R. Viant (2024): Automated extraction of adherent cell lines from 24-well and 96-well plates for multi-omics analysis using the Hielscher UIP400MTP sonicator and Beckman Coulter i7 liquid handling workstation. Metabomeeting 2024, University of Liverpool, 26-28th November 2024.
- De Oliveira A, Cataneli Pereira V, Pinheiro L, Moraes Riboli DF, Benini Martins K, Ribeiro de Souza da Cunha MDL (2016): Antimicrobial Resistance Profile of Planktonic and Biofilm Cells of Staphylococcus aureus and Coagulase-Negative Staphylococci. International Journal of Molecular Sciences 17(9):1423; 2016.
- Martins KB, Ferreira AM, Pereira VC, Pinheiro L, Oliveira A, Cunha MLRS (2019): In vitro Effects of Antimicrobial Agents on Planktonic and Biofilm Forms of Staphylococcus saprophyticus Isolated From Patients With Urinary Tract Infections. Frontiers in Microbiology 2019.
- Dreyer J., Ricci G., van den Berg J., Bhardwaj V., Funk J., Armstrong C., van Batenburg V., Sine C., VanInsberghe M.A., Marsman R., Mandemaker I.K., di Sanzo S., Costantini J., Manzo S.G., Biran A., Burny C., Völker-Albert M., Groth A., Spencer S.L., van Oudenaarden A., Mattiroli F. (2024): Acute multi-level response to defective de novo chromatin assembly in S-phase. Molecular Cell 2024.
- Mochizuki, Chika; Taketomi, Yoshitaka; Irie, Atsushi; Kano, Kuniyuki; Nagasaki, Yuki; Miki, Yoshimi; Ono, Takashi; Nishito, Yasumasa; Nakajima, Takahiro; Tomabechi, Yuri; Hanada, Kazuharu; Shirouzu, Mikako; Watanabe, Takashi; Hata, Kousuke; Izumi, Yoshihiro; Bamba, Takeshi; Chun, Jerold; Kudo, Kai; Kotani, Ai; Murakami, Makoto (2024): Secreted phospholipase PLA2G12A-driven lysophospholipid signaling via lipolytic modification of extracellular vesicles facilitates pathogenic Th17 differentiation. BioRxiv 2024.
- Cosenza-Contreras M, Seredynska A, Vogele D, Pinter N, Brombacher E, Cueto RF, Dinh TJ, Bernhard P, Rogg M, Liu J, Willems P, Stael S, Huesgen PF, Kuehn EW, Kreutz C, Schell C, Schilling O. (2024): TermineR: Extracting information on endogenous proteolytic processing from shotgun proteomics data. Proteomics. 2024.
Často kladené otázky
Co jsou extracelulární polymerní látky (EPS)?
Extracelulární polymerní látky (EPS) jsou komplexní směsí biopolymerů, složenou především z polysacharidů, proteinů, nukleových kyselin a lipidů, kterou vylučují mikroorganismy v biofilmech. EPS tvoří ochrannou matrici, která obklopuje mikrobiální společenství, zajišťuje strukturní integritu, zprostředkovává adhezi k povrchům a chrání buňky před stresovými vlivy prostředí, včetně antibiotik a imunitních reakcí.
Co se rozumí planktonními bakteriemi?
Planktonní bakterie jsou volně se vznášející jednobuněčné mikroorganismy, které existují v suspenzi, například v tekuté kultuře nebo tělních tekutinách, místo aby byly přichyceny k povrchům nebo tvořily strukturovaná společenství, jako jsou biofilmy.
Jaký je rozdíl mezi biofilmem a planktonními bakteriemi?
Hlavní rozdíl mezi biofilmem a planktonními bakteriemi spočívá v jejich organizaci. Biofilmy jsou strukturovaná, k povrchu přichycená společenství bakterií uložená v matrici extracelulárních polymerních látek (EPS), zatímco planktonní bakterie se volně vznášejí a takovou strukturní organizaci postrádají.
Léčí se bakterie v biofilmech antibiotiky obtížněji než planktonní bakterie?
Bakterie v biofilmech se antibiotiky léčí výrazně obtížněji než planktonní bakterie. Matrice biofilmu působí jako fyzická bariéra a bakterie v ní vykazují změněné metabolické stavy a zvýšenou odolnost vůči stresu, což přispívá ke snížené účinnosti antibiotik.
Lze biofilmy zničit antibiotiky?
Biofilmy lze antibiotiky někdy eradikovat, je to však náročné. Účinná léčba často vyžaduje vysoké koncentrace antibiotik, specifické kombinace nebo podpůrné terapie, protože matrice EPS a mechanismy bakteriální rezistence biofilm chrání.
Jsou stafylokoky adherentní bakterie?
Bakterie rodu Staphylococcus jsou dobře známé svou schopností adheze. Snadno se přichycují k povrchům a tvoří biofilmy, zejména na zdravotnických prostředcích nebo tkáních hostitele, což z nich činí hlavního původce perzistentních infekcí.
Jaké typy bakterií rodu Staphylococcus existují?
Bakterie rodu Staphylococcus zahrnují několik typů, z nichž nejvýznamnější jsou Staphylococcus aureus a Staphylococcus epidermidis. S. aureus je patogenní a může způsobovat závažné infekce, zatímco S. epidermidis je běžně spojován s infekcemi zdravotnických prostředků souvisejícími s biofilmem.
Co je krystalová violeť?
Krystalová violeť je bazické barvivo běžně používané k barvení biologických materiálů. V mikrobiologii se používá k hodnocení tvorby biofilmu barvením biomasy, kterou lze následně spektrofotometricky kvantifikovat.
Hielscher Ultrasonics vyrábí vysoce výkonné ultrazvukové homogenizátory od laboratorní po průmyslovou velikost.


