Protokol o kultivaci a oddělení biofilmu Staphylococcus
Standardizované metody jsou nezbytné pro spolehlivé výsledky výzkumu. Zde naleznete kultivační a oddělovací protokol pro stafylokokové biofilmy. Tento protokol se zaměřuje na efektivní přípravu vzorků s vysokou propustností pomocí UIP400MTP vícejamkového sonikátoru destiček pro efektivní a vysoce výkonné odstraňování biofilmu v 96jamkových destičkách. Protokol obsahuje také klíčové kroky pro kultivaci, praní a vizualizaci biofilmu se zaměřením na minimalizaci variability a zajištění reprodukovatelnosti.
Výzkum biofilmu a antibiotik Staphylococcus
Biofilmy Staphylococcus hrají zásadní roli při přetrvávajících infekcích kvůli jejich rezistenci vůči antibiotikům a imunitním reakcím. Tvorba biofilmu poskytuje ochranné prostředí pro bakterie, což ztěžuje léčbu infekcí. Výzkum biofilmů se často zaměřuje na pochopení jejich tvorby, chování a náchylnosti k antimikrobiálním látkám, s důrazem na vysoce výkonné metody pro zefektivnění experimentálních pracovních postupů.
UIP400MTP vícejamkový sonikátor nabízí významnou výhodu ve výzkumu biofilmu tím, že umožňuje rychlé a účinné oddělení biofilmů z 96jamkových destiček. Toto zařízení poskytuje rovnoměrnou ultrazvukovou energii do všech jamek, což zajišťuje konzistentní výsledky a zároveň minimalizuje variabilitu.
Protokol pro kultivaci a oddělení biofilmu Staphylococcus
Níže vás provedeme krok za krokem procesem kultivace a oddělování stafylokokového biofilmu. Jako příkladný analytický krok vám ukážeme, jak spektrofotometricky kvantifikovat kultivovanou biomasu barvením krystalovou violetí.
Kultivace biofilmu Staphylococcus
Požadované materiály:
- Sterilní 96jamkové mikrotitrační destičky ošetřené tkáňovými kulturami s plochým dnem a víčky
- Tryptický sójový vývar (TSB) s 0,25 % glukózy
- Biologický bezpečnostní box
Schody:
- Připravte si sterilní pracovní prostředí v biologické bezpečnostní skříni, abyste minimalizovali kontaminaci.
- Přidejte TSB obsahující 0,25 % glukózy do jamek s mikrotitrační destičkou. TSB bez glukózy obecně nepodporuje tvorbu biofilmu a měl by být používán pouze jako kontrola v případě potřeby.
- Naočkujte jamky bakteriálními kmeny připravenými podle níže uvedeného popisu:
- Připravte bakteriální suspenze a zajistěte, aby neexistovaly žádné již existující shluky buněk, homogenizací suspenzí pomocí sonikace nebo rozbitím shluků jehlou o průměru 23 a krátkým vírem.
- Destička se uzavře víkem a inkubuje se za podmínek optimálních pro tvorbu biofilmu (např. 37 °C po dobu 24 hodin).
- Proveďte experiment ve třech vyhotoveních pro každý bakteriální kmen (tři jamky na kmen), abyste zajistili spolehlivost.
- Přidělte šest jamek na destičku pro negativní kontroly. Na jednu 96jamkovou destičku lze testovat až 30 kmenů.
Vizualizace a mytí biofilmu
- Po inkubaci médium opatrně zlikvidujte, aby nedošlo k narušení biofilmu.
- Každý dobře omyjte čtyřikrát fyziologickým roztokem, abyste odstranili planktonní bakterie.
- Zkontrolujte dno jamek, zda na něm nejsou bílé skvrny svědčící o přítomnosti biofilmu.
Oddělení biofilmu pomocí vícejamkové destičky sonikátoru UIP400MTP
Nastavení a parametry zařízení:
- UIP400MTP vícejamkový destičkový sonikátor
- Provozní nastavení: 60% amplituda, režim cyklu s 60 sekundami ZAPNUTO / 30 sekund VYPNUTO
Schody:
- Umístěte promytou mikrotitrační destičku na UIP400MTP plošinu.
- Sonikujte vzorky při doporučeném nastavení (60% amplituda, 60 sekund zapnuto, 30 sekund vypnuto). Upravte nastavení na kmen bakterií.
- Zahajte proces sonikace, abyste oddělili biofilm. Ultrazvukové vlny narušují matrici biofilmu a uvolňují přilnavé bakterie.
- UIP400MTP zajišťuje rovnoměrnou expozici ve všech jamkách pro konzistentní výsledky oddělení.
Analytický krok: Kvantifikace oddělené biofilmové biomasy Staphylococcus pomocí krystalové violeti (CV)
Požadované materiály:
- 0.1% roztok krystalové violeti (CV)
- 95% ethanol nebo 30% kyselina octová (pro solubilizaci)
- Čtečka mikrodestiček schopná číst při 570 nm
- Sterilní mikrotitrační destičky pro barvení
Schody:
- Příprava barvicí destičky: Přeneste 100 μl oddělené suspenze biofilmu z každé jamky sonikované destičky do odpovídajících jamek čisté, sterilní 96jamkové mikrotitrační destičky. Tím je zajištěno jasné a rovnoměrné prostředí pro barvení.
- Barvení odděleného biofilmu: Přidejte 150 μl 0,1% roztoku krystalové violeti do každé jamky obsahující oddělenou suspenzi biofilmu. Jemně pipetujte, abyste zajistili rovnoměrné promíchání suspenze biofilmu a krystalové violeti.
- Inkubace: Nechte destičku inkubovat při pokojové teplotě po dobu 15 minut, aby krystalová violet mohla účinně obarvit biomasu.
- Praní: Po inkubaci opatrně vyhoďte roztok krystalové violeti z jamek, aniž byste narušili biomasu. Každý dobře omyjte třikrát sterilním fyziologickým roztokem, abyste odstranili nespoutané skvrny.
- Sušení: Nechte desku uschnout na vzduchu při pokojové teplotě nebo pod sterilním krytem s prouděním vzduchu. Vyhněte se zahřívání, protože by to mohlo změnit výsledky.
- Solubilizace: Přidejte 200 μl 95% ethanolu (nebo 30% kyseliny octové, v závislosti na standardních laboratorních postupech) do každé jamky, aby se solubilizovala navázaná křišťálová violet. Jemně promíchejte pipetováním nebo protřepáváním destičky po dobu 10 minut při pokojové teplotě.
- Měření: Změřte optickou hustotu (OD) solubilizovaného roztoku krystalové violeti při 570 nm pomocí čtečky mikrodestiček.
- Analýza dat: Odečtěte průměrnou hodnotu OD570 negativních kontrol (jamky s TSB, ale bez bakteriálního inokula) z experimentálních jamek, abyste zohlednili barvení pozadí. Zaznamenávejte a analyzujte data.
Poznámka: Experiment proveďte pro každou podmínku ve trojím vyhotovení, abyste zajistili reprodukovatelnost. Zajistěte správné zacházení s křišťálovou violetí a etanolem, dodržujte bezpečnostní a likvidační protokoly.
Přehled klíčových výhod UIP400MTP:
- Zpracování s vysokou propustností: Navrženo speciálně pro vícejamkové destičky, což vám umožní zpracovávat více vzorků současně.
- Rovnoměrné ultrazvukové rozložení: Zajišťuje stejnou intenzitu ultrazvuku napříč jamkami a poskytuje konzistentní výsledky napříč všemi vzorky.
- Použijte jakoukoli standardní desku: UIP400MTP si poradí se všemi standardními vícejamkovými destičkami, Petriho miskami a stojánky na zkumavky. Nejsou potřeba žádné drahé proprietární značky!
- Uživatelsky přívětivé rozhraní: Snadno se nastavuje a ovládá, což z něj činí vynikající nástroj pro zvýšení produktivity laboratoře. Programovatelné nastavení a automatizace usnadňují standardizaci procesů!
Vysoce výkonné oddělení biofilmu S 96jamkovým deskovým sonikátorem UIP400MTP
Literatura / Reference
- FactSheet UIP400MTP Multi-well Plate Sonicator – Non-Contact Sonicator – Hielscher Ultrasonics
- Lauren E. Cruchley-Fuge, Martin R. Jones, Ossama Edbali, Gavin R. Lloyd, Ralf J. M. Weber, Andrew D. Southam, Mark R. Viant (2024): Automated extraction of adherent cell lines from 24-well and 96-well plates for multi-omics analysis using the Hielscher UIP400MTP sonicator and Beckman Coulter i7 liquid handling workstation. Metabomeeting 2024, University of Liverpool, 26-28th November 2024.
- De Oliveira A, Cataneli Pereira V, Pinheiro L, Moraes Riboli DF, Benini Martins K, Ribeiro de Souza da Cunha MDL (2016): Antimicrobial Resistance Profile of Planktonic and Biofilm Cells of Staphylococcus aureus and Coagulase-Negative Staphylococci. International Journal of Molecular Sciences 17(9):1423; 2016.
- Martins KB, Ferreira AM, Pereira VC, Pinheiro L, Oliveira A, Cunha MLRS (2019): In vitro Effects of Antimicrobial Agents on Planktonic and Biofilm Forms of Staphylococcus saprophyticus Isolated From Patients With Urinary Tract Infections. Frontiers in Microbiology 2019.
- Dreyer J., Ricci G., van den Berg J., Bhardwaj V., Funk J., Armstrong C., van Batenburg V., Sine C., VanInsberghe M.A., Marsman R., Mandemaker I.K., di Sanzo S., Costantini J., Manzo S.G., Biran A., Burny C., Völker-Albert M., Groth A., Spencer S.L., van Oudenaarden A., Mattiroli F. (2024): Acute multi-level response to defective de novo chromatin assembly in S-phase. Molecular Cell 2024.
- Mochizuki, Chika; Taketomi, Yoshitaka; Irie, Atsushi; Kano, Kuniyuki; Nagasaki, Yuki; Miki, Yoshimi; Ono, Takashi; Nishito, Yasumasa; Nakajima, Takahiro; Tomabechi, Yuri; Hanada, Kazuharu; Shirouzu, Mikako; Watanabe, Takashi; Hata, Kousuke; Izumi, Yoshihiro; Bamba, Takeshi; Chun, Jerold; Kudo, Kai; Kotani, Ai; Murakami, Makoto (2024): Secreted phospholipase PLA2G12A-driven lysophospholipid signaling via lipolytic modification of extracellular vesicles facilitates pathogenic Th17 differentiation. BioRxiv 2024.
- Cosenza-Contreras M, Seredynska A, Vogele D, Pinter N, Brombacher E, Cueto RF, Dinh TJ, Bernhard P, Rogg M, Liu J, Willems P, Stael S, Huesgen PF, Kuehn EW, Kreutz C, Schell C, Schilling O. (2024): TermineR: Extracting information on endogenous proteolytic processing from shotgun proteomics data. Proteomics. 2024.
Nejčastější dotazy
Co jsou extracelulární polymerní látky (EPS)?
Extracelulární polymerní látky (EPS) jsou komplexní směs biopolymerů, primárně složená z polysacharidů, proteinů, nukleových kyselin a lipidů, vylučovaných mikroorganismy v biofilmech. EPS tvoří ochrannou matrici, která obaluje mikrobiální komunitu, poskytuje strukturální integritu, zprostředkovává adhezi k povrchům a chrání buňky před environmentálními stresy, včetně antibiotik a imunitních reakcí.
Co se rozumí planktonními bakteriemi?
Planktonní bakterie jsou volně plovoucí, jednobuněčné mikroorganismy, které existují v suspenzi, například v tekuté kultuře nebo tělesných tekutinách, spíše než aby byly připojeny k povrchům nebo vytvářely strukturovaná společenství jako biofilmy.
Jaký je rozdíl mezi biofilmem a planktonními bakteriemi?
Klíčový rozdíl mezi biofilmovými a planktonními bakteriemi spočívá v jejich organizaci. Biofilmy jsou strukturovaná, povrchově připojená společenství bakterií zabudovaná do matrice extracelulární polymerní látky (EPS), zatímco planktonní bakterie jsou volně plovoucí a postrádají takovou strukturální organizaci.
Jsou bakterie v biofilmech obtížněji léčitelné antibiotiky než planktonní bakterie?
Bakterie v biofilmech se ve srovnání s planktonními bakteriemi výrazně obtížněji léčí antibiotiky. Biofilmová matrice působí jako fyzická bariéra a bakterie v ní vykazují změněné metabolické stavy a zvýšenou odolnost vůči stresu, což přispívá ke snížení účinnosti antibiotik.
Mohou antibiotika zničit biofilmy?
Biofilmy lze někdy vymýtit antibiotiky, ale je to náročné. Účinná léčba často vyžaduje vysoké koncentrace antibiotik, specifické kombinace nebo doplňkové terapie, protože matrice EPS a mechanismy bakteriální rezistence chrání biofilm.
Jsou Staphylococcus adherentní bakterie?
Bakterie Staphylococcus jsou známé svými adhenčními schopnostmi. Snadno se připevňují na povrchy a vytvářejí biofilmy, zejména na lékařských prostředcích nebo hostitelských tkáních, což z nich činí hlavního přispěvatele k přetrvávajícím infekcím.
Jaké druhy bakterií Staphylococcus existují?
Bakterie Staphylococcus zahrnují několik typů, z nichž nejvýznamnější jsou Staphylococcus aureus a Staphylococcus epidermidis. S. aureus je patogenní a může způsobit závažné infekce, zatímco S. epidermidis je běžně spojován s infekcemi souvisejícími s biofilmem.
Co je Crystal Violet?
Křišťálová violet je základní barvivo běžně používané pro barvení biologických materiálů. V mikrobiologii se používá k posouzení tvorby biofilmu barvením biomasy, kterou lze následně spektrofotometricky kvantifikovat.
Hielscher Ultrasonics vyrábí vysoce výkonné ultrazvukové homogenizátory od laboratoř k průmyslová velikost.



