Proteomski radni tokovi s visokopropusnom digestijom proteina
Proteomika je ključno područje za razumijevanje bioloških procesa i sistema, a digestija proteina predstavlja kritičan korak u njenim radnim tokovima. Tradicionalno se digestija proteina provodi u otopini pomoću proteolitičkih enzima poput tripsina, koji specifično hidrolizira peptidne veze na ostacima lizina i arginina. Ovaj proces stvara peptide koji su vrlo pogodni za ionizaciju i fragmentaciju u primjenama masene spektrometrije (MS). Međutim, konvencionalne metode digestije zahtijevaju 12–24 sata do završetka, što stvara značajna uska grla u proteomskim radnim tokovima.
Ultrazvučna obrada nudi snažnu alternativu, dramatično skraćujući vrijeme digestije sa sati na samo nekoliko minuta. Kada se kombinira s naprednim sonikatorima za više uzoraka, kao što su Hielscher CupHorn, VialTweeter i sonikator za ploče s 96 jažica UIP400MTP, ultrazvučna obrada omogućava ubrzanu, visokopropusnu proteomiku. Ove tehnologije pojednostavljuju radne tokove, skraćuju vrijeme pripreme uzoraka i povećavaju efikasnost bez ugrožavanja reproducibilnosti ili kvaliteta podataka.
Uloga ultrazvučne energije u digestiji proteina
Ultrazvučna obrada koristi fokusirane ultrazvučne talase za stvaranje kavitacije – lokaliziranih mikromjehurića koji kolabiraju i stvaraju intenzivne smične sile. Ovaj fenomen pospješuje prijenos mase, potiče miješanje enzima sa supstratima i razvija strukture proteina, izlažući mjesta cijepanja proteolitičkim enzimima poput tripsina.
Rezultat? Značajno smanjenje vremena digestije bez ugrožavanja efikasnosti ili reproducibilnosti.
Ultrazvučno potpomognuta proteolitička digestija: metodologija i rezultati
Ubrzani protokol digestije
Ultrazvučno potpomognuta digestija kombinira proteolitičke enzime i ultrazvučnu energiju radi ubrzanja radnih tokova. Na primjer, uz upotrebu Hielscher UP200St-CupHorn (200 W, 26 kHz), radni tok digestije odvija se na sljedeći način:
- Redukcija: Uzorci proteina (0,5 mg/mL, 20 µL) tretiraju se DTT-om (2 µL, 110 mM) u puferu amonijevog bikarbonata (12,5 mM). Ultrazvučna obrada primjenjuje se pri amplitudi od 50% tokom 5 minuta.
- Alkilacija: Nakon dodavanja IAA (2 µL, 400 mM), ultrazvučna obrada ponavlja se pod istim uvjetima.
- Digestija: Uzorci se razrjeđuju i inkubiraju s nanočesticama s imobiliziranim tripsinom. Završni ciklus ultrazvučne obrade (5 minuta) dovršava digestiju. Peptidi se odvajaju, suše i pohranjuju za MS analizu.
Ova ultrazvučna metoda smanjuje ukupno vrijeme pripreme sa 12 sati na manje od 30 minuta. Uprkos ubrzanom procesu, prinos i kvalitet peptida ostaju u skladu s tradicionalnim metodama preko noći.
Efikasnost ultrazvučne digestije proteina
U komparativnim studijama s proteomima E. coli:
- Identifikacija proteina: Ultrazvučno digestirani uzorci identificirali su 777 proteina za 5 minuta, u usporedbi s 817 za 12 sati. Zajedničke identifikacije proteina premašile su 70%.
- Reproducibilnost: Ponovljene analize pokazale su vrijednosti korelacije iznad 98% unutar svake metode, što dokazuje pouzdanost.
- Selektivnost: Određeni proteini su se preferencijalno digestirali jednom ili drugom metodom, pri čemu je ultrazvučna digestija favorizirala 65 proteina, a digestija preko noći 54 proteina. Takve nijansirane razlike naglašavaju jedinstveni potencijal ultrazvučne obrade za specifične primjene.
Rezultati label-free kvantifikacije sedam proteina dodanih u E. coli
uzorak. Sljedeći proteini dodani su na dva različita nivoa, kako je navedeno u koloni
nazvanoj “Theo Ratio”. Theo Ratio je teorijski omjer između dva nivoa korištena u ovom
eksperimentu. Goveđi serumski albumin (ALBU), β-laktoglobulin (LACB), α-S1 kazein (CASA1),
α-S2 kazein (CASA2), citokrom c (CYC), ovalbumin (OVAL) i karbonska anhidraza 2
(CAH2). Omjeri su izračunati pomoću LFQ intenziteta proteina dobivenih iz MaxQuant
analize. Studentov t-test primijenjen je za usporedbu vrijednosti dobivenih svakom metodom (p>0,01, n=3, t-theoretical=4,6).
Studija i grafika: © Martins et al., 2019)
Tripsin imobiliziran na nanočesticama
Integracija nanočestica s imobiliziranim tripsinom (npr. T-FMNPs) s ultrazvučnom obradom dodatno unapređuje proteomske radne tokove. Ove nanočestice pružaju veliku površinu za interakcije enzima i supstrata, čime povećavaju efikasnost. Kada se primjenjuje na složene proteome, kao što je E. coli, kombinirana metoda postiže:
- Brzina: Potpuna digestija u roku od 5 minuta.
- Tačnost: Kvantifikacija proteina uporediva s tradicionalnim metodama (p > 0,01, n=3).
- Skalabilnost: Prilagodba platformama s više jažica poput UIP400MTP omogućava visokopropusnu obradu.
Kliknite ovdje za detaljan protokol s uputama korak po korak!
(usp. Martins et al., 2019)
Najbolji modeli sonikatora za proteomiku
Hielscher Ultrasonics nudi različite modele sonikatora za istovremenu pripremu više uzoraka, čime olakšava visokopropusne radne tokove. Bilo da radite s viralama, epruvetama, pločama s više jažica (npr. pločama sa 6, 24 ili 96 jažica) ili Petrijevim posudama – nudimo vam idealne sonikatore za vaše eksperimente.
Sonikator za ploče s više jažica UIP400MTP
Za vrhunsku propusnost, UIP400MTP pruža mogućnost ultrazvučne obrade ploča s 96 jažica. Kompatibilan s bilo kojom standardnom mikropločom, UIP400MTP ne zahtijeva skupe vlasničke potrošne materijale i daje vam slobodu da odaberete najbolju ploču s više jažica za svoje istraživanje. Ravnomjernom isporukom energije preko cijele ploče omogućava brzu redukciju, alkilaciju i digestiju do 200 složenih proteoma za samo 1 sat. Ovaj nivo automatizacije i efikasnosti presudan je za visokopropusnu proteomiku i kliničke primjene. Saznajte više o sonikatoru za ploče s više jažica!
VialTweeter
VialTweeter je prilagođen laboratorijama kojima je potrebna istovremena ultrazvučna obrada do 10 viala ili epruveta. Njegov neinvazivni pristup eliminira rizike od unakrsne kontaminacije, a istovremeno osigurava reproducibilnu digestiju proteina. Ovaj uređaj je idealan za istraživače koji rade s ograničenim volumenima uzoraka ili različitim vrstama uzoraka.
Saznajte više o sonikatoru za više epruveta VialTweeter!
Hielscher UP200St-CupHorn
CupHorn sonikator je snažan uređaj namijenjen istovremenoj obradi više uzoraka u zatvorenim posudama. Osigurava ravnomjernu raspodjelu ultrazvučne energije i preciznu kontrolu temperature. Mogućnost istovremene obrade do pet uzoraka, zajedno s kompatibilnošću s radnim tokovima koji obuhvataju redukciju, alkilaciju i digestiju, čini CupHorn pouzdanim alatom za proteomiku zasnovanu na MS metodama.
Saznajte više o CupHorn SonoReactoru!
Protokol korak po korak za ultrazvučno potpomognutu proteolitičku digestiju pomoću tripsina imobiliziranog na nanočesticama
Ovaj protokol autora Martins et al. (2019) optimiziran je za brzu digestiju proteina pomoću ultrazvučne energije i tripsina imobiliziranog na nanočesticama (T-FMNPs). Navedeni koraci osiguravaju efikasnu redukciju, alkilaciju i proteolizu pogodnu za primjene masene spektrometrije (MS).
Koraci protokola
- Redukcija disulfidnih veza
- Dodajte 2 µL otopine DTT-a (110 mM) u 20 µL uzorka proteina (0,5 mg/mL) u AmBic puferu.
- Stavite epruvetu s uzorkom u sonoreaktor UP200St-CupHorn.
- Sonicirajte uzorak 2,5 minute pri amplitudi od 50% (200 W, 26 kHz).
- Napravite kratku pauzu radi hlađenja, zatim sonicirajte još 2,5 minute pod istim uvjetima.
- Alkilacija reduciranih ostataka cisteina
- Dodajte 2 µL otopine IAA (400 mM) u reducirani uzorak proteina.
- Sonicirajte 2,5 minute pri amplitudi od 50% kako biste olakšali alkilaciju.
- Napravite pauzu radi hlađenja, zatim sonicirajte dodatnih 2,5 minute.
Napomena: Svedite izlaganje alkiliranog uzorka svjetlu na minimum kako biste spriječili razgradnju IAA.
- Razrjeđivanje uzorka
- Razrijedite alkilirani uzorak proteina do konačnog volumena od 100 µL pomoću 25 mM AmBic pufera koji sadrži 4% acetonitrila (v/v).
- Temeljito promiješajte nježnim pipetiranjem.
- Proteolitička digestija pomoću tripsina imobiliziranog na nanočesticama
- Dodajte 20 µL otopine T-FMNP (3 mg/mL) u razrijeđeni uzorak proteina.
- Sonicirajte smjesu u sonoreaktoru 2,5 minute pri amplitudi od 50%.
- Napravite pauzu radi hlađenja, zatim sonicirajte još 2,5 minute pod istim uvjetima.
- Odvajanje nanočestica s tripsinom
- Pomoću magneta odvojite T-FMNPs od supernatanta koji sadrži digestirane peptide.
- Prenesite supernatant u novu mikrocentrifugalnu epruvetu.
- Priprema peptida za MS analizu
- Osušite supernatant koji sadrži peptide u vakuumskoj centrifugi.
- Pohranite osušene peptide na -20°C do daljnje analize masenom spektrometrijom.
Literatura / reference
- FactSheet UIP400MTP Multi-well Plate Sonicator – Non-Contact Sonicator – Hielscher Ultrasonics
- FactSheet UIP550MTP Multi-well Plate Sonicator – Non-Contact Sonicator – Hielscher Ultrasonics
- FactSheet VialTweeter Multi-Tube Sonicator – Non-Contact Sonicator – Hielscher Ultrasonics
- Gonçalo Martins, Javier Fernández-Lodeiro, Jamila Djafari, Carlos Lodeiro, J.L. Capelo, Hugo M. Santos (2019): Label-free protein quantification after ultrafast digestion of complex proteomes using ultrasonic energy and immobilized-trypsin magnetic nanoparticles. Talanta, Volume 196, 2019. 262-270.
- Lauren E. Cruchley-Fuge, Martin R. Jones, Ossama Edbali, Gavin R. Lloyd, Ralf J. M. Weber, Andrew D. Southam, Mark R. Viant (2024): Automated extraction of adherent cell lines from 24-well and 96-well plates for multi-omics analysis using the Hielscher UIP400MTP sonicator and Beckman Coulter i7 liquid handling workstation. Metabomeeting 2024, University of Liverpool, 26-28th November 2024.
- Cosenza-Contreras M, Seredynska A, Vogele D, Pinter N, Brombacher E, Cueto RF, Dinh TJ, Bernhard P, Rogg M, Liu J, Willems P, Stael S, Huesgen PF, Kuehn EW, Kreutz C, Schell C, Schilling O. (2024): TermineR: Extracting information on endogenous proteolytic processing from shotgun proteomics data. Proteomics. 2024.
Često postavljana pitanja
Koji su 5 koraka analize proteoma?
Pet koraka analize proteoma su: (1) ekstrakcija proteina, pri kojoj se proteini izoliraju iz bioloških uzoraka pomoću puferâ za lizu; (2) razdvajanje proteina, koje se obično postiže tehnikama poput gel-elektroforeze ili tečne hromatografije radi razdvajanja složenih smjesa; (3) digestija proteina, pri kojoj se proteini enzimski cijepaju na peptide, često pomoću tripsina; (4) analiza masenom spektrometrijom, pri kojoj se peptidi ioniziraju, fragmentiraju i analiziraju radi određivanja njihove mase i sekvence; i (5) analiza podataka, pri kojoj bioinformatički alati identificiraju i kvantificiraju proteine na osnovu podataka masene spektrometrije, pružajući uvid u proteom.
Šta je proteolitička digestija?
Proteolitička digestija je enzimski proces kojim se proteini hidroliziraju na manje peptide ili aminokiseline cijepanjem peptidnih veza, što obično omogućavaju proteolitički enzimi.
Koja su 3 proteolitička enzima?
Tri glavna proteolitička enzima su tripsin, kimotripsin i pepsin, a svaki ima specifične supstratne specifičnosti i optimalne uvjete aktivnosti.
Koje su metode proteolize?
Metode proteolize uključuju enzimsku digestiju (npr. pomoću tripsina ili drugih proteaza), hemijsko cijepanje (npr. cijanogen-bromidom na ostacima metionina) i fizičke metode poput ultrazvučne obrade radi pojačanja enzimske aktivnosti.
Šta inhibira proteolizu?
Proteoliza se može inhibirati inhibitorima proteaza, kao što su fenilmetilsulfonil-fluorid (PMSF) ili etilendiamintetraoctena kiselina (EDTA), faktorima okoline poput ekstremnog pH ili temperature, ili izostankom potrebnih kofaktora za aktivnost proteaza.
Hielscher Ultrasonics proizvodi visokoučinkovite ultrazvučne homogenizatore od laboratorijskih do industrijskih veličina.



