Протокол за анализ на минимална инхибиторна концентрация (MIC)
Анализът за минимална инхибиторна концентрация (MIC), базиран на биофилм, е основен метод за оценка на ефективността на антимикробните агенти срещу микроорганизми, свързани с биофилм, които проявяват повишена резистентност поради защитния си извънклетъчен матрикс. Решаваща стъпка в този анализ е разрушаването на структурите на биофилма, за да се освободят вградени клетки за точна оценка на жизнеспособността. Многоямковият ултразвук UIP400MTP улеснява този процес, като използва фокусиран ултразвук за генериране на контролирана кавитация, ефективно отделяне на клетките от биофилм и разпръскването им в равномерна суспензия. Това прецизно и възпроизводимо разрушаване на биофилма повишава надеждността и производителността на MIC анализите, което прави UIP400MTP основен инструмент за напредък в изследванията на биофилма.
Разпознаване за откъсване на биофилма
Базираният на биофилм MIC анализ обикновено измерва бактериалната жизнеспособност или инхибиране на растежа, като използва методи като покритие, преброяване на колонии или измерване на оптична плътност. Соникацията е критична стъпка в анализите на MIC на базата на биофилм при оценката на антимикробната чувствителност на микроорганизми, свързани с биофилми. Основната му функция е да отделя и диспергира клетките, вградени в матрицата на биофилма, в еднородна суспензия за точен анализ.
Биофилмите са значително по-устойчиви на антимикробни агенти в сравнение с планктонните клетки, което прави правилното отделяне от решаващо значение за точния анализ. По време на този процес ултразвуковите вълни генерират контролирана кавитация, разчупвайки матрицата на биофилма и освобождавайки вградените клетки в равномерна суспензия в средата за възстановяване. Тази стъпка позволява прецизни оценки на жизнеспособността на клетките, диспергирани с биофилм, чрез методи като покритие, разреждане и преброяване на колонии. Правилното разрушаване на биофилма чрез ултразвук предотвратява предпазването на остатъчните компоненти на матрицата от екраниране на клетките, което в противен случай може да доведе до подценяване на антимикробната активност. Многоямковият пластинов ултразвуков UIP400MTP е особено подходящ за тази цел, като предлага прецизни и възпроизводими условия на ултразвук, за да осигури надеждна и високопроизводителна подготовка на пробните плочи.

UIP400MTP микроплачен ултразвук за прецизно контролирано отделяне на биофилма при MIC и MBEC анализи.
Защо е необходима сонация при анализи за минимална концентрация на инхибитория на базата на биофилм
За измерване на жизнеспособността и преброяване на клетките е необходимо пълно и надеждно отделяне и дисперсия на единични клетки. UIP400MTP насърчава равномерно, неувреждащо отделяне на биофилма и клетъчна дисперсия за стабилни резултати от анализа.
- Сложност на биофилма: Биофилмите са структурирани микробни съобщества, обвити в матрица от извънклетъчно полимерно вещество (EPS), която защитава микроорганизмите и ги прави по-устойчиви на антимикробни агенти.
- Равномерна дисперсия: За да се измери точно жизнеспособността на клетките, вградени в биофилм, или тяхната чувствителност към антимикробни средства, биофилмът първо трябва да бъде изместен и разграден до хомогенна суспензия.
Протокол за анализ на минимална инхибиторна концентрация на базата на биофилм
Анализът за минимална инхибиторна концентрация (MIC) определя най-ниската концентрация на антимикробен агент, необходима за инхибиране на видимия растеж на микроорганизмите. Този протокол е предназначен за микроорганизми, свързани с биофилм, като се използва UIP400MTP многоямков плачен ултразвук за разрушаване на биофилма.
Стъпка 1: Приготвяне на бактериален инокулум
- Пригответе бактериалната суспензия:
Отглеждайте бактерии в подходящи среди до средата на логаритмичната фаза.
Разредете културата, за да постигнете стандартизирана клетъчна плътност (напр. 0,5 стандарт на Макфарланд или OD600 ~0,1). - Пригответе антимикробни разтвори:
Антимикробният агент се разрежда в подходяща среда, за да се създаде диапазон от концентрации (напр. двойно серийно разреждане). - Дозирайте в плочата 96 ямки:
Добавете антимикробните разтвори в ямките на стандартна плоча с 96 ямки, с краен обем на ямката ~150–200 μL.
Включете контрол на растежа (без антимикробни средства) и контрол на стерилността (без бактериален инокулум).
Стъпка 2: Образуване на биофилм върху капака на колчето
- Прикрепете капака на колчето:
Поставете специализирания капак на колчето върху инокулираните кладенци, като се уверите, че колчетата са напълно потопени в бактериалната суспензия. - Инкубирайте чинията:
Инкубира се при подходяща температура (напр. 37°C) за определена продължителност (напр. 24 часа) при статични условия, за да се даде възможност за образуване на биофилм върху колчетата. - Изплакнете колчетата:
Отстранете капака на колчето от бактериалната суспензия и внимателно изплакнете със стерилен физиологичен разтвор или PBS, за да отстраните слабо прикрепените планктонни клетки. - Излагане на антимикробни средства:
Поставете капака на колчето в нова плоча 96 ямки, съдържаща антимикробните разреждания, приготвени по-рано.
Инкубира се за определен период от време (напр. 24 часа) при статични условия, за да се даде възможност на антимикробния агент да действа върху биофилмите.
Стъпка 3: Излагане на антимикробни средства

Многоямкови пластинчати соникатори UIP400MTP за подготовка на проби с висока производителност
Стъпка 4: Уникиране с Microplate Sonicator UIP400MTP
Стъпката на ултразвук е от решаващо значение за отделянето на биофилмите от капаците на колчето, за да се оцени жизнеспособността. Следвайте тези стъпки за UIP400MTP sonicator:
- Подгответе настройката:
Напълнете прясна чиния с 96 ямки със среда за възстановяване (напр. неутрализиращ бульон или стерилна среда за растеж) във всяка ямка. - Прехвърлете капака на колчето:
Свалете капака на колчето от плочата за антимикробно лечение.
Изплакнете капака на колчето със стерилен физиологичен разтвор или PBS, за да отстраните остатъчните антимикробни агенти. - Поставете плочата в ултразвука:
Прикрепете капака на колчето към плочата на средата за възстановяване.
Поставете плочата на средата за възстановяване в UIP400MTP ултразвука, като се уверите, че плочата седи центрирана и стабилна, както е описано в ръководството. - Регулирайте параметрите на ултразвука:
Задайте параметрите на ултразвука на UIP400MTP (настройките могат да се регулират според биофилма):
Амплитуда: 70–100%.
Време за уникиране: 1–3 минути (регулирайте въз основа на структурата на биофилма) в режим на цикъл. - Соникирайте:
Започнете процеса на ултразвук. Ултразвуковите вълни ще нарушат матрицата на биофилма и ще изместят клетките в средата за възстановяване. - Наблюдавайте процеса:
Използвайте щепселния температурен сензор, за да следите температурата на пробата в кладенците. UIP400MTP може да бъде свързан към лабораторен охладител за охлаждане. - Обработка след уникиране:
Незабавно прехвърлете средата за възстановяване, съдържаща отделени биофилми, в нова стерилна плака за последващ анализ.

(A) Плака, съдържаща TSB с 2% глюкоза, използвана за образуване на биофилм, клетъчно възстановяване и определяне на MIC и MBEC; (Б) Капак с щифтове за образуване на стафилококови биофилми.
Клетките на биофилма, образувани върху щифтовете, са изместени чрез ултразвук (ултразвукова технология на Hielscher) за 5 минути в 96-ямкови плаки, съдържащи прясна хранителна среда за възстановяване на клетките.
(Снимка и проучване: ©de Oliveira et al., 2016)
Стъпка 4: Оценка на жизнеспособността
Отделени биофилми от плаки и култури:
- Извършва се серийно разреждане на средата за възстановяване и плочата върху агар, за да се изброят колониеобразуващите единици (CFU).
- Оценете MIC:
Определете MIC като най-ниската концентрация на антимикробни средства, която напълно инхибира видимия растеж на микробите в средата за възстановяване.
Проектиране, производство и консултиране – Качество, произведено в Германия
Ултразвуковите апарати Hielscher са добре известни със своите най-високи стандарти за качество и дизайн. Здравината и лесната работа позволяват безпроблемното интегриране на нашите ултразвукови апарати в промишлени съоръжения. Суровите условия и взискателната среда се справят лесно с ултразвуковите уреди на Hielscher.
Hielscher Ultrasonics е сертифицирана по ISO компания и поставя специален акцент върху високопроизводителните ултразвукови уреди, отличаващи се с най-съвременна технология и удобство за потребителя. Разбира се, ултразвуковите апарати на Hielscher са съвместими с CE и отговарят на изискванията на UL, CSA и RoHs.

Рационализиране на подготовката на пробите в 96-ямкови плочи и пробирни плочи Използване на многоямковия плоча Sonicator UIP400MTP
Литература / Препратки
- FactSheet UIP400MTP Multi-well Plate Sonicator – Non-Contact Sonicator – Hielscher Ultrasonics
- Dreyer J., Ricci G., van den Berg J., Bhardwaj V., Funk J., Armstrong C., van Batenburg V., Sine C., VanInsberghe M.A., Marsman R., Mandemaker I.K., di Sanzo S., Costantini J., Manzo S.G., Biran A., Burny C., Völker-Albert M., Groth A., Spencer S.L., van Oudenaarden A., Mattiroli F. (2024): Acute multi-level response to defective de novo chromatin assembly in S-phase. Molecular Cell 2024.
- Mochizuki, Chika; Taketomi, Yoshitaka; Irie, Atsushi; Kano, Kuniyuki; Nagasaki, Yuki; Miki, Yoshimi; Ono, Takashi; Nishito, Yasumasa; Nakajima, Takahiro; Tomabechi, Yuri; Hanada, Kazuharu; Shirouzu, Mikako; Watanabe, Takashi; Hata, Kousuke; Izumi, Yoshihiro; Bamba, Takeshi; Chun, Jerold; Kudo, Kai; Kotani, Ai; Murakami, Makoto (2024): Secreted phospholipase PLA2G12A-driven lysophospholipid signaling via lipolytic modification of extracellular vesicles facilitates pathogenic Th17 differentiation. BioRxiv 2024.
- Cosenza-Contreras M, Seredynska A, Vogele D, Pinter N, Brombacher E, Cueto RF, Dinh TJ, Bernhard P, Rogg M, Liu J, Willems P, Stael S, Huesgen PF, Kuehn EW, Kreutz C, Schell C, Schilling O. (2024): TermineR: Extracting information on endogenous proteolytic processing from shotgun proteomics data. Proteomics. 2024.
- De Oliveira A, Cataneli Pereira V, Pinheiro L, Moraes Riboli DF, Benini Martins K, Ribeiro de Souza da Cunha MDL (2016): Antimicrobial Resistance Profile of Planktonic and Biofilm Cells of Staphylococcus aureus and Coagulase-Negative Staphylococci. International Journal of Molecular Sciences 17(9):1423; 2016.
- Martins KB, Ferreira AM, Pereira VC, Pinheiro L, Oliveira A, Cunha MLRS (2019): In vitro Effects of Antimicrobial Agents on Planktonic and Biofilm Forms of Staphylococcus saprophyticus Isolated From Patients With Urinary Tract Infections. Frontiers in Microbiology 2019.
Често задавани въпроси
Какво представлява MIC анализът?
Анализът за минимална инхибиторна концентрация (MIC) е стандартизиран тест, използван за определяне на най-ниската концентрация на антимикробен агент, необходима за инхибиране на видимия растеж на микроорганизъм. Обикновено се извършва с помощта на методи за разреждане на бульон или агар, при които микроорганизмите са изложени на серийни разреждания на антимикробния агент. MIC анализите са от решаващо значение за оценка на антимикробната ефикасност, насочване на клиничното лечение и оценка на нивата на резистентност както при планктонни, така и при биофилм-свързани микроорганизми.
Каква е разликата между анализът за минимална инхибиторна концентрация, базиран на биофилм, и анализът MBIC?
Анализът за минимална инхибиторна концентрация (MIC), базиран на биофилм, и анализът за минимална инхибиторна концентрация на биофилм (MBIC) са свързани, но различни по своята цел и методология.
Базираният на биофилм MIC анализ оценява най-ниската концентрация на антимикробен агент, необходим за инхибиране на видимия растеж или жизнеспособност на биофилма, като се фокусира върху клетките, свързани с биофилма, а не върху планктонните бактерии. За разлика от това, анализът MBIC специално измерва способността на антимикробния агент да предотвратява образуването на биофилми, вместо да третира предварително оформени биофилми. Докато и двата теста се занимават с бактерии, свързани с биофилми, MIC анализът, базиран на биофилм, е насочен към лечението, а анализът MBIC набляга на превенцията, което ги прави допълващи инструменти за изучаване на антимикробната ефикасност срещу биофилми.
Какви биофилми се използват в MIC тестовете?
Микробните биофилми и планктонните клетки се използват в тестовете за минимална инхибиторна концентрация (MIC) за изследване на антимикробната ефикасност при различни условия.
- Планктонни клетки:
Планктонните клетки са свободно плаващи, единични микробни клетки, които служат като стандартен модел за традиционните анализи на MIC. Често срещаните микроорганизми включват Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus и Candida albicans. Тези анализи определят MIC необходим за инхибиране на растежа на свободно живеещи клетки и са от решаващо значение за първоначалния антимикробен скрининг. - Клетки, свързани с биофилм:
Биофилмовите клетки са микроорганизми, вградени в извънклетъчен матрикс, което значително повишава тяхната устойчивост към антимикробни средства. Биофилмовите MIC тестове често включват:- Грам-отрицателни бактерии: Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa и Klebsiella pneumoniae, известни с образуването на биофилм при инфекции и промишлени условия.
- Грам-положителни бактерии: Staphylococcus aureus (включително MRSA), Staphylococcus epidermidis и Enterococcus faecalis, често замесени в инфекции, свързани с устройството.
- Гъбички: Candida albicans и сродни видове, важни при гъбични инфекции, свързани с биофилми.
- Биофилми от смесени видове: Те понякога се използват за възпроизвеждане на естествени полимикробни биофилми, като тези, открити в хронични рани или промишлено биообрастване.
Чрез сравняване на стойностите на MIC за планктонни клетки и клетки, свързани с биофилми, изследователите могат да оценят повишената резистентност на биофилмите и да идентифицират агенти, ефективни срещу тези по-устойчиви микробни общности.
Каква е разликата между MIC и MBEC?
Минималната инхибиторна концентрация (MIC) е най-ниската концентрация на антимикробен агент, необходима за предотвратяване на образуването на биофилм, докато минималната концентрация за ликвидиране на биофилм (MBEC) е най-ниската концентрация, необходима за ликвидиране на установен биофилм. MIC се фокусира върху превенцията на биофилма, докато MBEC оценява ефикасността на лечението срещу зрели биофилми.
Какви плочи обикновено се използват за MBEC анализи?
Микротитърните плочи, които обикновено се използват за MBEC анализи, обикновено са плочи с 96 ямки, направени от полистирол или полипропилен. Тези материали осигуряват подходяща повърхност за образуване на биофилм и са химически устойчиви на антимикробните агенти, тествани по време на анализа. Полистироловите плочи са широко предпочитани поради тяхната оптична яснота, която е от полза за анализи надолу по веригата като спектрофотометрични или флуоресцентни измервания. Дизайнът на тези плочи включва подвижни капаци на колчета, които са от съществено значение за анализа, тъй като върху колчетата се образуват биофилми, които са потопени в кладенците, съдържащи растежни среди. Стандартизираните плочи, като тези, съвместими с протокола за анализ MBEC, са специално проектирани, за да осигурят възпроизводимост и съвместимост с UIP400MTP ултразвуков апарат или друго оборудване за обработка.
Какво представляват плочите с капак PEG?
Плочите с капак PEG са специализирани системи за плочи с много ямки, при които капакът е оборудван с малки колчета или щифтове от полиетилен гликол (PEG), простиращи се във всяка кладенеца. Тези колчета осигуряват повърхност за образуване на микробен биофилм при контролирани условия, имитирайки растежа на биофилма в реалния свят. Дизайнът позволява биофилмите да се развиват върху колчетата, докато кладенците съдържат растежни среди или антимикробни агенти, което позволява тестване с висока производителност на чувствителността на биофилма към обработки, като например в MBEC, MBIC и MIC тестове.
Какво е предимството на ултразвуковото изместване на биофилма в сравнение с клетъчното изстъргване?
Ултразвуковото изместване на биофилма предлага значително предимство пред клетъчното изстъргване, като осигурява неинвазивен, еднороден и високоефективен метод за отстраняване на биофилми от повърхности. За разлика от изстъргването, което може да бъде непоследователно и да повреди подлежащата повърхност или клетки, ултразвуковите вълни проникват в матрицата на биофилма, разчупвайки я, без да нарушават целостта на съседните структури. Този метод гарантира възпроизводимост, минимизира риска от замърсяване и е особено ефективен за приложения, изискващи прецизно отстраняване на биофилм, като например при микробиологични изследвания или тестване на медицински изделия. Прочетете повече как UIP400MTP Sonicator превъзхожда изстъргването на клетки!

Hielscher Ultrasonics произвежда високоефективни ултразвукови хомогенизатори от лаборатория да индустриален размер.