Quy trình thử nghiệm nồng độ ức chế tối thiểu (MIC)
Thử nghiệm nồng độ ức chế tối thiểu (MIC) dựa trên màng sinh học là phương pháp thiết yếu để đánh giá hiệu quả của các tác nhân kháng vi sinh vật đối với vi sinh vật gắn với màng sinh học, vốn có khả năng đề kháng cao hơn nhờ chất nền ngoại bào bảo vệ chúng. Một bước then chốt trong thử nghiệm này là tách các cấu trúc màng sinh học để giải phóng các tế bào nằm bên trong nhằm đánh giá chính xác khả năng sống của tế bào. Máy siêu âm đĩa nhiều giếng UIP400MTP hỗ trợ quá trình này bằng cách sử dụng siêu âm hội tụ để tạo ra hiện tượng xâm thực có kiểm soát, tách hiệu quả các tế bào màng sinh học và phân tán chúng thành huyền phù đồng nhất. Việc phá vỡ màng sinh học chính xác và có khả năng tái lập này nâng cao độ tin cậy và năng suất xử lý mẫu của các thử nghiệm MIC, khiến UIP400MTP trở thành công cụ thiết yếu để thúc đẩy nghiên cứu màng sinh học.
Tại sao tôi nên sử dụng siêu âm trong các thử nghiệm MIC?
- Dữ liệu chính xác, có khả năng tái lập: Thu được các huyền phù tế bào đồng nhất, loại bỏ tác dụng che chắn của chất nền, bảo đảm số lượng khuẩn lạc và kết quả đo mật độ quang phản ánh đúng hiệu quả kháng vi sinh vật.
- Hiệu quả xử lý mẫu với năng suất cao: Xử lý đồng thời toàn bộ đĩa 96 giếng chỉ trong 1–3 phút, thay thế thao tác cạo thủ công chậm và thiếu nhất quán bằng quy trình làm việc tinh gọn.
- Bảo toàn khả năng sống của tế bào: Nhẹ nhàng tách các tế bào nằm trong màng sinh học mà không gây tổn thương vật lý như khi cạo, duy trì tỷ lệ sống cao hơn để tính toán MIC/MBEC đáng tin cậy.
- Không có nguy cơ nhiễm chéo: Tận dụng thiết kế đầu siêu âm dạng cốc không tiếp xúc, xử lý đồng đều tất cả các giếng mà không để đầu dò chạm vào từng mẫu hoặc giếng.
- Sẵn sàng đáp ứng tiêu chuẩn: Điều chỉnh phương pháp của bạn theo các quy trình đã được thẩm định trong ngành như ASTM E2799-22, giúp dữ liệu có độ tin cậy cao hơn khi dùng cho mục đích đáp ứng yêu cầu quản lý hoặc công bố.
- Tự tin sàng lọc thuốc và phương pháp điều trị: Tin tưởng vào kết quả đánh giá độ nhạy cảm để đưa ra quyết định sáng suốt hơn về hiệu quả kháng vi sinh vật, xác định đặc điểm đề kháng hoặc phát triển liệu pháp.
Tăng năng suất phòng thí nghiệm của bạn đồng thời bảo toàn khả năng sống của tế bào. Hãy cho chúng tôi biết loại đĩa vi giếng bạn sử dụng để nhận khuyến nghị về cách tách màng sinh học và phân tán tế bào hiệu quả bằng xử lý siêu âm với năng suất mẫu cao.
Máy siêu âm đĩa vi giếng UIP400MTP để tách màng sinh học với khả năng kiểm soát chính xác trong các thử nghiệm MIC và MBEC.
Siêu âm để tách màng sinh học
Thử nghiệm MIC dựa trên màng sinh học thường đo khả năng sống của vi khuẩn hoặc mức độ ức chế sinh trưởng bằng các phương pháp như cấy đĩa, đếm khuẩn lạc hoặc đo mật độ quang. Xử lý siêu âm là bước then chốt trong các thử nghiệm MIC dựa trên màng sinh học khi đánh giá độ nhạy cảm với tác nhân kháng vi sinh vật của các vi sinh vật gắn với màng sinh học. Chức năng chính của bước này là tách và phân tán các tế bào nằm trong chất nền màng sinh học thành huyền phù đồng nhất để phân tích chính xác.
Màng sinh học có khả năng đề kháng với các tác nhân kháng vi sinh vật cao hơn đáng kể so với các tế bào sống tự do, vì vậy việc tách đúng cách là yếu tố then chốt để phân tích chính xác. Trong quá trình này, sóng siêu âm tạo ra hiện tượng xâm thực có kiểm soát, phá vỡ chất nền màng sinh học và giải phóng các tế bào nằm bên trong thành huyền phù đồng nhất trong môi trường phục hồi. Bước này cho phép đánh giá chính xác khả năng sống của các tế bào được phân tán từ màng sinh học thông qua các phương pháp như cấy đĩa, pha loãng và đếm khuẩn lạc. Việc phá vỡ màng sinh học đúng cách bằng siêu âm ngăn các thành phần chất nền còn sót lại che chắn tế bào, vì sự che chắn này có thể dẫn đến việc đánh giá thấp hoạt tính kháng vi sinh vật. Máy siêu âm đĩa nhiều giếng UIP400MTP đặc biệt phù hợp cho mục đích này, cung cấp các điều kiện xử lý siêu âm chính xác và có khả năng tái lập để bảo đảm việc chuẩn bị đĩa thử nghiệm đáng tin cậy với năng suất xử lý mẫu cao.
Tại sao siêu âm là cần thiết trong các thử nghiệm nồng độ ức chế tối thiểu dựa trên màng sinh học
Để đo khả năng sống và đếm tế bào, cần tách và phân tán hoàn toàn, đáng tin cậy các tế bào riêng lẻ. UIP400MTP thúc đẩy quá trình tách màng sinh học và phân tán tế bào đồng đều, không gây tổn thương, giúp thu được kết quả thử nghiệm vững chắc.
- Tính phức tạp của màng sinh học: Màng sinh học là các cộng đồng vi sinh vật có cấu trúc, được bao bọc trong một chất nền gồm các chất polyme ngoại bào (EPS), giúp bảo vệ vi sinh vật và làm tăng khả năng đề kháng của chúng với các tác nhân kháng vi sinh vật.
- Phân tán đồng đều: Để đo chính xác khả năng sống của các tế bào nằm trong màng sinh học hoặc độ nhạy của chúng với các tác nhân kháng vi sinh vật, trước tiên phải tách màng sinh học khỏi bề mặt và phá vỡ thành một huyền phù đồng nhất.
Trong khi phép thử MIC tiêu chuẩn đo khả năng đề kháng của các tế bào sống trôi nổi, xử lý siêu âm là bước thiết yếu trong các phép thử Biofilm-MIC và MBEC để đảm bảo thu hồi đúng lượng tế bào làm mốc ban đầu.
Quy trình thử nghiệm nồng độ ức chế tối thiểu dựa trên màng sinh học
Phép thử nồng độ ức chế tối thiểu (MIC) xác định nồng độ thấp nhất của một tác nhân kháng vi sinh vật cần thiết để ức chế sự phát triển có thể quan sát được của vi sinh vật. Quy trình này được thiết kế cho các vi sinh vật liên quan đến màng sinh học, sử dụng máy siêu âm đĩa nhiều giếng UIP400MTP để phá vỡ màng sinh học.
Bước 1: Chuẩn bị dịch cấy vi khuẩn
- Chuẩn bị huyền phù vi khuẩn:
Nuôi vi khuẩn trong môi trường thích hợp đến giữa pha tăng trưởng lũy thừa.
Pha loãng dịch nuôi cấy để đạt mật độ tế bào chuẩn hóa (ví dụ: chuẩn McFarland 0,5 hoặc OD600 ~0,1). - Chuẩn bị các dung dịch kháng vi sinh vật:
Pha loãng tác nhân kháng vi sinh vật trong môi trường thích hợp để tạo một dãy nồng độ (ví dụ: pha loãng nối tiếp với hệ số 2). - Phân phối vào đĩa 96 giếng:
Thêm các dung dịch kháng vi sinh vật vào các giếng của đĩa 96 giếng tiêu chuẩn, với thể tích cuối cùng trong mỗi giếng là ~150–200 µL.
Bố trí các mẫu đối chứng tăng trưởng (không có tác nhân kháng vi sinh vật) và đối chứng vô trùng (không có dịch cấy vi khuẩn).
Bước 2: Hình thành màng sinh học trên nắp có chốt
- Lắp nắp có chốt:
Đặt nắp có chốt chuyên dụng lên các giếng đã cấy vi khuẩn, đảm bảo các chốt ngập hoàn toàn trong huyền phù vi khuẩn. - Ủ đĩa:
Ủ ở nhiệt độ thích hợp (ví dụ: 37°C) trong thời gian quy định (ví dụ: 24 giờ) trong điều kiện tĩnh để màng sinh học hình thành trên các chốt. - Rửa các chốt:
Lấy nắp có chốt ra khỏi huyền phù vi khuẩn và rửa nhẹ bằng dung dịch nước muối vô trùng hoặc PBS để loại bỏ các tế bào sống trôi nổi bám lỏng lẻo. - Cho tiếp xúc với các tác nhân kháng vi sinh vật:
Chuyển nắp có chốt sang một đĩa 96 giếng mới chứa các dung dịch kháng vi sinh vật đã pha loãng trước đó.
Ủ trong một khoảng thời gian xác định (ví dụ: 24 giờ) trong điều kiện tĩnh để tác nhân kháng vi sinh vật tác động lên các màng sinh học.
Bước 3: Tiếp xúc với tác nhân kháng vi sinh vật
Máy siêu âm đĩa nhiều giếng UIP400MTP để chuẩn bị mẫu với năng suất cao
Bước 4: Xử lý siêu âm bằng máy siêu âm đĩa vi giếng UIP400MTP
Bước xử lý siêu âm đóng vai trò then chốt trong việc tách màng sinh học khỏi các nắp có chốt để đánh giá khả năng sống. Thực hiện các bước sau với máy siêu âm UIP400MTP:
- Chuẩn bị hệ thống:
Cho môi trường phục hồi (ví dụ: canh thang trung hòa hoặc môi trường nuôi cấy vô trùng) vào từng giếng của một đĩa 96 giếng mới. - Chuyển nắp có chốt:
Lấy nắp có chốt ra khỏi đĩa xử lý bằng tác nhân kháng vi sinh vật.
Rửa nắp có chốt bằng dung dịch nước muối vô trùng hoặc PBS để loại bỏ các tác nhân kháng vi sinh vật còn dư. - Đặt đĩa vào máy siêu âm:
Lắp nắp có chốt lên đĩa chứa môi trường phục hồi.
Đặt đĩa chứa môi trường phục hồi vào máy siêu âm UIP400MTP, đảm bảo đĩa nằm chính giữa và ổn định như mô tả trong hướng dẫn sử dụng. - Điều chỉnh các thông số xử lý siêu âm:
Thiết lập các thông số xử lý siêu âm trên UIP400MTP (có thể điều chỉnh các thiết lập cho phù hợp với màng sinh học):
Biên độ: 70–100%.
Thời gian xử lý siêu âm: 1–3 phút (điều chỉnh dựa trên cấu trúc màng sinh học) ở chế độ chu kỳ. - Xử lý siêu âm:
Bắt đầu quá trình xử lý siêu âm. Sóng siêu âm sẽ phá vỡ chất nền của màng sinh học và tách các tế bào vào môi trường phục hồi. - Theo dõi quá trình:
Sử dụng cảm biến nhiệt độ dạng cắm để theo dõi nhiệt độ mẫu trong các giếng. Có thể kết nối UIP400MTP với máy làm lạnh phòng thí nghiệm để làm mát. - Xử lý sau siêu âm:
Chuyển ngay môi trường phục hồi chứa các màng sinh học đã được tách ra sang một đĩa vô trùng mới để phân tích tiếp theo.
(A) Đĩa chứa TSB với 2% glucose được sử dụng để hình thành màng sinh học, thu hồi tế bào và xác định MIC và MBEC; (B) Nắp có chốt để hình thành màng sinh học của tụ cầu khuẩn.
Các tế bào màng sinh học hình thành trên các chốt được tách ra bằng xử lý siêu âm (Hielscher Ultrasound Technology) trong 5 min trong các đĩa 96 giếng chứa môi trường nuôi cấy mới để thu hồi tế bào.
(Hình ảnh và nghiên cứu: ©de Oliveira et al., 2016)
Bước 4: Đánh giá khả năng sống
Cấy đĩa và nuôi cấy các màng sinh học đã tách:
- Thực hiện pha loãng nối tiếp môi trường thu hồi và cấy lên thạch để đếm các đơn vị hình thành khuẩn lạc (CFU).
- Đánh giá MIC:
Xác định MIC là nồng độ chất kháng vi sinh vật thấp nhất ức chế hoàn toàn sự phát triển có thể quan sát được của vi sinh vật trong môi trường thu hồi.
Chuyển sang xử lý siêu âm không tiếp xúc có độ chính xác cao để đảm bảo huyền phù tế bào đồng nhất và kết quả MIC đáng tin cậy!
Ai được hưởng lợi từ việc xử lý siêu âm trong các phép thử MIC?
- Các nhà sản xuất thiết bị y tế: Để kiểm tra hiệu quả của các lớp phủ bề mặt và thẩm định quy trình làm sạch cho các thiết bị dễ hình thành màng sinh học.
- Các nhà vi sinh học lâm sàng: Để chẩn đoán chính xác các nhiễm trùng liên quan đến vật cấy ghép (như PJI) bằng cách thu hồi vi khuẩn từ các dụng cụ và bộ phận y tế.
- Các nhà phát triển dược phẩm: Để đánh giá hiệu quả của các chất kháng vi sinh vật mới đối với các tác nhân gây bệnh có sức chống chịu cao nằm trong màng sinh học.
- Các nhà nghiên cứu học thuật: Để thực hiện các nghiên cứu có năng suất xử lý mẫu cao và khả năng tái lập về sinh học màng sinh học và cơ chế đề kháng với chất kháng vi sinh vật.
- Các nhóm kiểm soát chất lượng công nghiệp: Để đánh giá sự bám bẩn sinh học và hiệu quả của chất khử trùng trong môi trường công nghiệp (ví dụ: sử dụng các tiêu chuẩn ASTM E2799-22).
Thiết kế, sản xuất và tư vấn – Chất lượng sản xuất tại Đức
Các thiết bị siêu âm Hielscher nổi tiếng với các tiêu chuẩn cao nhất về chất lượng và thiết kế. Độ bền và khả năng vận hành dễ dàng cho phép tích hợp thuận lợi các thiết bị siêu âm của chúng tôi vào các cơ sở công nghiệp. Các thiết bị siêu âm Hielscher dễ dàng đáp ứng những điều kiện khắc nghiệt và môi trường đòi hỏi cao.
Hielscher Ultrasonics là công ty được chứng nhận ISO và đặc biệt chú trọng đến các thiết bị siêu âm hiệu năng cao với công nghệ tiên tiến nhất và tính thân thiện với người dùng. Tất nhiên, các thiết bị siêu âm Hielscher tuân thủ CE và đáp ứng các yêu cầu của UL, CSA và RoHs.
Tinh giản quy trình chuẩn bị mẫu trong các đĩa 96 giếng và đĩa xét nghiệm bằng thiết bị siêu âm đĩa đa giếng UIP400MTP
Tài liệu / Tài liệu tham khảo
- FactSheet UIP400MTP Multi-well Plate Sonicator – Non-Contact Sonicator – Hielscher Ultrasonics
- Dreyer J., Ricci G., van den Berg J., Bhardwaj V., Funk J., Armstrong C., van Batenburg V., Sine C., VanInsberghe M.A., Marsman R., Mandemaker I.K., di Sanzo S., Costantini J., Manzo S.G., Biran A., Burny C., Völker-Albert M., Groth A., Spencer S.L., van Oudenaarden A., Mattiroli F. (2024): Acute multi-level response to defective de novo chromatin assembly in S-phase. Molecular Cell 2024.
- Mochizuki, Chika; Taketomi, Yoshitaka; Irie, Atsushi; Kano, Kuniyuki; Nagasaki, Yuki; Miki, Yoshimi; Ono, Takashi; Nishito, Yasumasa; Nakajima, Takahiro; Tomabechi, Yuri; Hanada, Kazuharu; Shirouzu, Mikako; Watanabe, Takashi; Hata, Kousuke; Izumi, Yoshihiro; Bamba, Takeshi; Chun, Jerold; Kudo, Kai; Kotani, Ai; Murakami, Makoto (2024): Secreted phospholipase PLA2G12A-driven lysophospholipid signaling via lipolytic modification of extracellular vesicles facilitates pathogenic Th17 differentiation. BioRxiv 2024.
- Cosenza-Contreras M, Seredynska A, Vogele D, Pinter N, Brombacher E, Cueto RF, Dinh TJ, Bernhard P, Rogg M, Liu J, Willems P, Stael S, Huesgen PF, Kuehn EW, Kreutz C, Schell C, Schilling O. (2024): TermineR: Extracting information on endogenous proteolytic processing from shotgun proteomics data. Proteomics. 2024.
- De Oliveira A, Cataneli Pereira V, Pinheiro L, Moraes Riboli DF, Benini Martins K, Ribeiro de Souza da Cunha MDL (2016): Antimicrobial Resistance Profile of Planktonic and Biofilm Cells of Staphylococcus aureus and Coagulase-Negative Staphylococci. International Journal of Molecular Sciences 17(9):1423; 2016.
- Martins KB, Ferreira AM, Pereira VC, Pinheiro L, Oliveira A, Cunha MLRS (2019): In vitro Effects of Antimicrobial Agents on Planktonic and Biofilm Forms of Staphylococcus saprophyticus Isolated From Patients With Urinary Tract Infections. Frontiers in Microbiology 2019.
Câu hỏi thường gặp
Phép thử MIC là gì?
Phép thử nồng độ ức chế tối thiểu (MIC) là phép thử tiêu chuẩn hóa được sử dụng để xác định nồng độ thấp nhất của một chất kháng vi sinh vật cần thiết để ức chế sự phát triển có thể quan sát được của một vi sinh vật. Phép thử này thường được thực hiện bằng phương pháp vi pha loãng trong canh thang hoặc pha loãng trong thạch, trong đó vi sinh vật được cho tiếp xúc với các nồng độ pha loãng nối tiếp của chất kháng vi sinh vật. Các phép thử MIC đóng vai trò thiết yếu trong việc đánh giá hiệu quả kháng vi sinh vật, hướng dẫn điều trị lâm sàng và đánh giá mức độ đề kháng ở cả vi sinh vật sống tự do trong dịch và vi sinh vật liên quan đến màng sinh học.
Phép thử nồng độ ức chế tối thiểu dựa trên màng sinh học và phép thử MBIC khác nhau như thế nào?
Phép thử nồng độ ức chế tối thiểu (MIC) dựa trên màng sinh học và phép thử nồng độ ức chế màng sinh học tối thiểu (MBIC) có liên quan với nhau nhưng khác biệt về mục đích và phương pháp thực hiện.
Phép thử MIC dựa trên màng sinh học xác định nồng độ thấp nhất của một tác nhân kháng vi sinh vật cần thiết để ức chế sự phát triển nhìn thấy được hoặc khả năng sống của màng sinh học, tập trung vào các tế bào gắn với màng sinh học thay vì vi khuẩn sống tự do. Ngược lại, phép thử MBIC đo cụ thể khả năng ngăn ngừa sự hình thành màng sinh học của một tác nhân kháng vi sinh vật, thay vì xử lý các màng sinh học đã hình thành. Mặc dù cả hai phép thử đều liên quan đến vi khuẩn gắn với màng sinh học, phép thử MIC dựa trên màng sinh học tập trung vào điều trị, còn phép thử MBIC nhấn mạnh việc phòng ngừa, khiến chúng trở thành các công cụ bổ trợ cho nhau trong nghiên cứu hiệu quả kháng vi sinh vật đối với màng sinh học.
Những màng sinh học nào được sử dụng trong các phép thử MIC?
Cả màng sinh học vi sinh vật và tế bào sống tự do đều được sử dụng trong các phép thử nồng độ ức chế tối thiểu (MIC) để nghiên cứu hiệu quả kháng vi sinh vật trong các điều kiện khác nhau.
- Tế bào sống tự do:
Tế bào sống tự do là các tế bào vi sinh vật đơn lẻ, trôi nổi tự do, đóng vai trò là mô hình tiêu chuẩn cho các phép thử MIC truyền thống. Các vi sinh vật thường gặp bao gồm Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus và Candida albicans. Các phép thử này xác định MIC cần thiết để ức chế sự phát triển của các tế bào sống tự do và đóng vai trò thiết yếu trong sàng lọc ban đầu các tác nhân kháng vi sinh vật. - Tế bào gắn với màng sinh học:
Các tế bào trong màng sinh học là những vi sinh vật nằm trong một chất nền ngoại bào, giúp tăng đáng kể khả năng đề kháng của chúng với các tác nhân kháng vi sinh vật. Các phép thử MIC trên màng sinh học thường bao gồm:- Vi khuẩn Gram âm: Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa và Klebsiella pneumoniae, được biết đến với khả năng hình thành màng sinh học trong các trường hợp nhiễm trùng và môi trường công nghiệp.
- Vi khuẩn Gram dương: Staphylococcus aureus (bao gồm MRSA), Staphylococcus epidermidis và Enterococcus faecalis, thường có liên quan đến các trường hợp nhiễm trùng liên quan đến thiết bị y tế.
- Nấm: Candida albicans và các loài có họ hàng gần, đóng vai trò quan trọng trong các trường hợp nhiễm nấm liên quan đến màng sinh học.
- Màng sinh học đa loài: Đôi khi được sử dụng để mô phỏng các màng sinh học đa vi sinh vật trong tự nhiên, chẳng hạn như những màng sinh học có trong vết thương mạn tính hoặc trong hiện tượng bám bẩn sinh học ở môi trường công nghiệp.
Bằng cách so sánh các giá trị MIC của tế bào sống tự do và tế bào gắn với màng sinh học, các nhà nghiên cứu có thể đánh giá khả năng đề kháng tăng lên của màng sinh học và xác định các tác nhân có hiệu quả đối với những quần xã vi sinh vật có sức chống chịu cao hơn này.
MIC và MBEC khác nhau như thế nào?
Nồng độ ức chế tối thiểu (MIC) là nồng độ thấp nhất của một tác nhân kháng vi sinh vật cần thiết để ngăn ngừa sự hình thành màng sinh học, trong khi nồng độ tiêu diệt màng sinh học tối thiểu (MBEC) là nồng độ thấp nhất cần thiết để tiêu diệt một màng sinh học đã hình thành. MIC tập trung vào việc ngăn ngừa màng sinh học, còn MBEC đánh giá hiệu quả điều trị đối với các màng sinh học trưởng thành.
Những loại đĩa nào thường được sử dụng cho các phép thử MBEC?
Các đĩa vi chuẩn độ thường được sử dụng cho các phép thử MBEC thường là đĩa 96 giếng làm từ polystyrene hoặc polypropylene. Những vật liệu này cung cấp bề mặt phù hợp cho sự hình thành màng sinh học và có khả năng kháng hóa chất đối với các tác nhân kháng vi sinh vật được kiểm tra trong phép thử. Đĩa polystyrene được ưa chuộng rộng rãi nhờ độ trong quang học, tạo thuận lợi cho các phân tích tiếp theo như phép đo quang phổ hoặc phép đo dựa trên huỳnh quang. Thiết kế của các đĩa này bao gồm nắp có chốt có thể tháo rời, một bộ phận thiết yếu cho phép thử vì màng sinh học hình thành trên các chốt được nhúng trong những giếng chứa môi trường nuôi cấy. Các đĩa được tiêu chuẩn hóa, chẳng hạn như những đĩa tuân thủ quy trình thử nghiệm MBEC, được thiết kế chuyên biệt để bảo đảm khả năng tái lập và tính tương thích với thiết bị siêu âm UIP400MTP hoặc các thiết bị xử lý khác.
Đĩa có nắp PEG là gì?
Đĩa có nắp PEG là hệ thống đĩa nhiều giếng chuyên dụng, trong đó nắp được trang bị các chốt hoặc ghim nhỏ bằng polyethylene glycol (PEG) nhô vào từng giếng. Các chốt này cung cấp bề mặt để màng sinh học vi sinh vật hình thành trong điều kiện được kiểm soát, mô phỏng sự phát triển của màng sinh học trong thực tế. Thiết kế này cho phép màng sinh học phát triển trên các chốt trong khi các giếng chứa môi trường nuôi cấy hoặc tác nhân kháng vi sinh vật, cho phép thử nghiệm với năng suất xử lý cao để đánh giá độ nhạy của màng sinh học đối với các biện pháp xử lý, chẳng hạn như trong các phép thử MBEC, MBIC và MIC.
Tách màng sinh học bằng siêu âm có ưu điểm gì so với cạo tế bào?
Tách màng sinh học bằng siêu âm mang lại ưu điểm đáng kể so với cạo tế bào nhờ cung cấp một phương pháp không xâm lấn, đồng đều và có hiệu quả cao để loại bỏ màng sinh học khỏi các bề mặt. Khác với việc cạo, vốn có thể không đồng nhất và gây tổn hại cho bề mặt bên dưới hoặc tế bào, sóng siêu âm xuyên vào chất nền của màng sinh học và phá vỡ chất nền này mà không làm ảnh hưởng đến tính toàn vẹn của các cấu trúc lân cận. Phương pháp này đảm bảo khả năng tái lập, giảm thiểu nguy cơ nhiễm bẩn và đặc biệt hiệu quả đối với các ứng dụng đòi hỏi loại bỏ màng sinh học một cách chính xác, chẳng hạn như trong nghiên cứu vi sinh vật học hoặc thử nghiệm thiết bị y tế. Đọc thêm về cách máy siêu âm UIP400MTP vượt trội so với phương pháp cạo tế bào!
Hielscher Ultrasonics sản xuất các máy đồng nhất hóa siêu âm hiệu suất cao từ quy mô phòng thí nghiệm đến quy mô công nghiệp.
