Quy trình thử nghiệm MBEC sử dụng máy siêu âm đĩa 96 giếng UIP400MTP
Thử nghiệm MBEC được sử dụng để xác định nồng độ chất kháng vi sinh vật cần thiết để loại bỏ màng sinh học hình thành trên nắp có chốt. Để đánh giá khả năng sống của màng sinh học, trước tiên phải tách màng sinh học khỏi nắp có chốt của đĩa 96 giếng. Xử lý siêu âm là phương pháp đáng tin cậy và hiệu quả nhất để thực hiện việc tách này. Máy siêu âm đĩa nhiều giếng UIP400MTP được thiết kế chuyên biệt để xử lý các đĩa thử nghiệm với hiệu quả và sự thuận tiện tối đa, giúp đơn giản hóa và đẩy nhanh các thử nghiệm MBEC thông lượng cao.
Xử lý siêu âm để tách màng sinh học
Xử lý siêu âm là bước quan trọng trong các thử nghiệm nồng độ diệt trừ màng sinh học tối thiểu (MBEC), giúp tách hiệu quả các tế bào màng sinh học khỏi bề mặt mà chúng bám vào. Về bản chất, màng sinh học là các quần thể vi sinh vật có cấu trúc, được bao bọc trong một chất nền ngoại bào, khiến chúng có khả năng chống chịu các chất kháng vi sinh vật cao hơn đáng kể so với tế bào sống tự do. Trong các thử nghiệm MBEC, quá trình xử lý siêu âm sử dụng sóng siêu âm để tạo ra hiện tượng xâm thực có kiểm soát, phá vỡ chất nền màng sinh học và giải phóng các tế bào nằm trong đó vào huyền phù. Bước này bảo đảm các tế bào màng sinh học phân tán đồng đều trong môi trường phục hồi, tạo điều kiện đánh giá chính xác khả năng sống bằng phương pháp cấy trên đĩa, pha loãng hoặc đo quang phổ. Nếu màng sinh học không được tách đúng cách, các thành phần chất nền còn sót lại có thể che chắn tế bào, dẫn đến đánh giá thấp hiệu quả kháng vi sinh vật. Vì vậy, xử lý siêu âm là bước không thể thiếu để thu được các giá trị MBEC đáng tin cậy và có khả năng tái lập, phản ánh đúng khả năng diệt trừ của các chất được thử nghiệm. Máy siêu âm đĩa nhiều giếng UIP400MTP cho phép chuẩn bị mẫu thông lượng cao một cách dễ dàng trong các đĩa thử nghiệm.
Máy siêu âm đĩa nhiều giếng UIP400MTP giúp chuẩn bị mẫu thông lượng cao trong các đĩa thử nghiệm một cách thuận tiện.
Quy trình thử nghiệm nồng độ diệt trừ màng sinh học tối thiểu (MBEC)
Bước 1: Hình thành màng sinh học
- Chuẩn bị huyền phù vi khuẩn:
Nuôi vi khuẩn trong môi trường thích hợp đến pha sinh trưởng lũy thừa.
Pha loãng dịch nuôi cấy vi khuẩn đến mật độ quang xác định (ví dụ: OD600 ~0,1). - Cấy vào đĩa 96 giếng:
Thêm huyền phù vi khuẩn (ví dụ: 150–200 µL) vào từng giếng của đĩa vi chuẩn độ 96 giếng tiêu chuẩn. - Gắn nắp có chốt:
Đặt nắp có chốt lên đĩa đã cấy để màng sinh học có thể hình thành trên bề mặt các chốt. - Ủ đĩa:
Ủ hệ thống ở nhiệt độ thích hợp (ví dụ: 37°C) trong 24–48 giờ, không lắc, để thúc đẩy sự phát triển của màng sinh học.
Bước 2: Xử lý bằng các chất kháng vi sinh vật
- Chuẩn bị các dung dịch kháng vi sinh vật:
Chuẩn bị một dải nồng độ chất kháng vi sinh vật trong môi trường mới.
Cho màng sinh học tiếp xúc với các chất kháng vi sinh vật:
Lấy nắp có chốt ra khỏi dịch nuôi cấy vi khuẩn và rửa bằng nước muối sinh lý vô trùng hoặc PBS để loại bỏ các tế bào sống tự do.
Đặt nắp có chốt vào một đĩa 96 giếng mới chứa các dung dịch kháng vi sinh vật. - Ủ đĩa:
Ủ trong một khoảng thời gian xác định (ví dụ: 24 giờ) để màng sinh học tiếp xúc với chất kháng vi sinh vật.
Máy siêu âm đĩa nhiều giếng UIP400MTP để chuẩn bị mẫu thông lượng cao
Bước 3: Xử lý siêu âm bằng máy siêu âm đĩa 96 giếng UIP400MTP
Bước xử lý siêu âm có vai trò thiết yếu trong việc tách màng sinh học khỏi nắp có chốt để đánh giá khả năng sống. Thực hiện các bước sau với máy siêu âm UIP400MTP:
- Chuẩn bị hệ thống:
Cho môi trường phục hồi (ví dụ: canh thang trung hòa hoặc môi trường nuôi cấy mới) vào từng giếng của một đĩa 96 giếng mới. - Chuyển nắp có chốt:
Lấy nắp có chốt ra khỏi đĩa xử lý bằng chất kháng vi sinh vật.
Rửa nắp có chốt bằng nước muối sinh lý vô trùng hoặc PBS để loại bỏ các chất kháng vi sinh vật còn sót lại. - Định vị đĩa và máy siêu âm:
Gắn nắp có chốt vào đĩa chứa môi trường phục hồi.
Đặt đĩa chứa môi trường phục hồi lên bệ của máy siêu âm UIP400MTP, bảo đảm đĩa nằm ở chính giữa và ổn định. - Điều chỉnh các thông số siêu âm:
Thiết lập các thông số siêu âm trên UIP400MTP (có thể điều chỉnh các thiết lập cho phù hợp với màng sinh học):
Biên độ: 70–100%.
Thời gian xử lý siêu âm: 1–3 phút (điều chỉnh theo độ bền chắc của màng sinh học) ở chế độ chu kỳ. - Xử lý siêu âm:
Bắt đầu quá trình xử lý siêu âm. Dao động siêu âm sẽ tách màng sinh học khỏi bề mặt các chốt vào môi trường phục hồi. - Theo dõi quá trình:
Sử dụng cảm biến nhiệt độ dạng cắm để theo dõi nhiệt độ mẫu trong các giếng. Có thể kết nối UIP400MTP với bộ làm lạnh phòng thí nghiệm để làm mát. - Xử lý sau siêu âm:
Chuyển ngay môi trường phục hồi (lúc này chứa màng sinh học đã được tách ra) sang một đĩa vô trùng mới để thực hiện các phân tích tiếp theo.
(A) Đĩa chứa TSB với 2% glucose được sử dụng để hình thành màng sinh học, thu hồi tế bào và
xác định MIC và MBCB; (B) Nắp có các chốt để hình thành màng sinh học của tụ cầu khuẩn. xác định MIC và MBCB; (B) Nắp có các chốt để hình thành màng sinh học của tụ cầu khuẩn.
Các tế bào màng sinh học hình thành trên các chốt được tách ra bằng xử lý siêu âm (Hielscher Ultrasound Technology) trong 5 min trong các đĩa 96 giếng chứa môi trường nuôi cấy mới để thu hồi tế bào.
(Hình ảnh và nghiên cứu: ©de Oliveira et al., 2016)
Bước 4: Đánh giá khả năng sống
Cấy trên đĩa và nuôi cấy màng sinh học đã tách:
- Pha loãng nối tiếp môi trường phục hồi và cấy lên thạch để đếm số đơn vị hình thành khuẩn lạc (CFU).
Hoặc sử dụng phép thử khả năng sống dựa trên đo màu hoặc huỳnh quang. - Ghi nhận kết quả:
Xác định MBEC là nồng độ chất kháng vi sinh vật thấp nhất đã diệt trừ khả năng sống có thể phát hiện được của màng sinh học.
Thiết kế, sản xuất và tư vấn – Chất lượng sản xuất tại Đức
Các máy siêu âm Hielscher nổi tiếng với chất lượng và tiêu chuẩn thiết kế cao nhất. Độ bền và khả năng vận hành dễ dàng cho phép tích hợp thuận lợi các máy siêu âm của chúng tôi vào cơ sở công nghiệp. Các máy siêu âm Hielscher dễ dàng đáp ứng điều kiện khắc nghiệt và môi trường có yêu cầu cao.
Hielscher Ultrasonics là công ty được chứng nhận ISO và đặc biệt chú trọng đến các máy siêu âm hiệu suất cao tích hợp công nghệ tiên tiến nhất và dễ sử dụng. Tất nhiên, các máy siêu âm Hielscher tuân thủ CE và đáp ứng các yêu cầu của UL, CSA và RoHs.
Đơn giản hóa việc chuẩn bị mẫu trong đĩa 96 giếng và đĩa thử nghiệm bằng máy siêu âm đĩa nhiều giếng UIP400MTP
Tài liệu / Tài liệu tham khảo
- FactSheet UIP400MTP Multi-well Plate Sonicator – Non-Contact Sonicator – Hielscher Ultrasonics
- Dreyer J., Ricci G., van den Berg J., Bhardwaj V., Funk J., Armstrong C., van Batenburg V., Sine C., VanInsberghe M.A., Marsman R., Mandemaker I.K., di Sanzo S., Costantini J., Manzo S.G., Biran A., Burny C., Völker-Albert M., Groth A., Spencer S.L., van Oudenaarden A., Mattiroli F. (2024): Acute multi-level response to defective de novo chromatin assembly in S-phase. Molecular Cell 2024.
- Mochizuki, Chika; Taketomi, Yoshitaka; Irie, Atsushi; Kano, Kuniyuki; Nagasaki, Yuki; Miki, Yoshimi; Ono, Takashi; Nishito, Yasumasa; Nakajima, Takahiro; Tomabechi, Yuri; Hanada, Kazuharu; Shirouzu, Mikako; Watanabe, Takashi; Hata, Kousuke; Izumi, Yoshihiro; Bamba, Takeshi; Chun, Jerold; Kudo, Kai; Kotani, Ai; Murakami, Makoto (2024): Secreted phospholipase PLA2G12A-driven lysophospholipid signaling via lipolytic modification of extracellular vesicles facilitates pathogenic Th17 differentiation. BioRxiv 2024.
- Cosenza-Contreras M, Seredynska A, Vogele D, Pinter N, Brombacher E, Cueto RF, Dinh TJ, Bernhard P, Rogg M, Liu J, Willems P, Stael S, Huesgen PF, Kuehn EW, Kreutz C, Schell C, Schilling O. (2024): TermineR: Extracting information on endogenous proteolytic processing from shotgun proteomics data. Proteomics. 2024.
- De Oliveira A, Cataneli Pereira V, Pinheiro L, Moraes Riboli DF, Benini Martins K, Ribeiro de Souza da Cunha MDL (2016): Antimicrobial Resistance Profile of Planktonic and Biofilm Cells of Staphylococcus aureus and Coagulase-Negative Staphylococci. International Journal of Molecular Sciences 17(9):1423; 2016.
- Martins KB, Ferreira AM, Pereira VC, Pinheiro L, Oliveira A, Cunha MLRS (2019): In vitro Effects of Antimicrobial Agents on Planktonic and Biofilm Forms of Staphylococcus saprophyticus Isolated From Patients With Urinary Tract Infections. Frontiers in Microbiology 2019.
- Microplate Sonicator Validated in Peer-Reviewed Proteomics Study
Câu hỏi thường gặp
Thử nghiệm MBEC là gì?
Thử nghiệm nồng độ diệt trừ màng sinh học tối thiểu (MBEC) là phương pháp chuẩn hóa được sử dụng để xác định nồng độ thấp nhất của một chất kháng vi sinh vật cần thiết để diệt trừ vi khuẩn gắn với màng sinh học. Phương pháp này bao gồm nuôi màng sinh học trên các bề mặt chuyên dụng, cho chúng tiếp xúc với các nồng độ chất kháng vi sinh vật khác nhau và đánh giá khả năng sống của các tế bào đã tách sau khi phá vỡ màng sinh học, thường bằng xử lý siêu âm, nhằm đánh giá hiệu quả của biện pháp xử lý.
MBIC và MBEC khác nhau như thế nào?
Nồng độ ức chế màng sinh học tối thiểu (MBIC) là nồng độ thấp nhất của một chất kháng vi sinh vật cần thiết để ngăn ngừa sự hình thành màng sinh học, trong khi nồng độ diệt trừ màng sinh học tối thiểu (MBEC) là nồng độ thấp nhất cần thiết để diệt trừ một màng sinh học đã hình thành. MBIC tập trung vào việc ngăn ngừa màng sinh học, còn MBEC đánh giá hiệu quả xử lý đối với màng sinh học trưởng thành.
Những loại đĩa nào thường được sử dụng cho thử nghiệm MBEC?
Các đĩa vi chuẩn độ thường được sử dụng cho thử nghiệm MBEC thường là đĩa 96 giếng làm từ polystyrene hoặc polypropylene. Những vật liệu này cung cấp bề mặt thích hợp cho sự hình thành màng sinh học và có khả năng kháng hóa chất đối với các chất kháng vi sinh vật được kiểm tra trong thử nghiệm. Đĩa polystyrene được ưa chuộng rộng rãi nhờ độ trong quang học, mang lại lợi thế cho các phân tích tiếp theo như phép đo quang phổ hoặc phép đo dựa trên huỳnh quang. Thiết kế của các đĩa này bao gồm nắp có chốt tháo rời được, một bộ phận thiết yếu của thử nghiệm vì màng sinh học hình thành trên các chốt được nhúng vào giếng chứa môi trường nuôi cấy. Các đĩa được chuẩn hóa, chẳng hạn như đĩa tuân thủ quy trình thử nghiệm MBEC, được thiết kế chuyên biệt để bảo đảm khả năng tái lập và tính tương thích với máy siêu âm UIP400MTP hoặc các thiết bị xử lý khác.
Đĩa có nắp PEG là gì?
Đĩa có nắp PEG là hệ thống đĩa nhiều giếng chuyên dụng, trong đó nắp được trang bị các chốt hoặc ghim nhỏ bằng polyethylene glycol (PEG) vươn vào từng giếng. Những chốt này cung cấp bề mặt để màng sinh học vi sinh vật hình thành trong điều kiện được kiểm soát, mô phỏng sự phát triển của màng sinh học trong thực tế. Thiết kế này cho phép màng sinh học phát triển trên các chốt trong khi các giếng chứa môi trường nuôi cấy hoặc chất kháng vi sinh vật, cho phép thử nghiệm thông lượng cao về độ nhạy của màng sinh học đối với các biện pháp xử lý, như trong các thử nghiệm MBEC và MBIC.
Hielscher Ultrasonics sản xuất các máy đồng nhất hóa siêu âm hiệu suất cao từ quy mô phòng thí nghiệm đến công nghiệp.