Утворення амілоїдних фібрил за допомогою ультразвукового пристрою для мікропланшетів UIP400MTP
Амілоїдні фібрили, подібно до кристалів, утворюються шляхом нуклеації та подальшого росту. Однак через високий бар’єр вільної енергії нуклеації спонтанне утворення амілоїдних фібрил відбувається лише після тривалої лаг-фази. Ультразвукова обробка стала потужним інструментом для індукування нуклеації амілоїду, завдяки чому утворення фібрил значно прискорюється. У поєднанні з мікропланшетним рідером, який реєструє флуоресценцію тіофлавіну T (ThT), ультразвукова обробка забезпечує високопродуктивне виявлення амілоїдних фібрил одночасно в багатьох зразках.
Індуковане ультразвуком утворення амілоїдних фібрил за допомогою ультразвукового пристрою для мікропланшетів UIP400MTP
За допомогою ультразвукового пристрою для багатолункових планшетів UIP400MTP можна швидко синтезувати великі кількості амілоїдних фібрил однакової якості для дослідницьких цілей. Цей ефективний підхід дає змогу вивчати амілоїдогенність білків. Ця методика сприяє швидкому та відтворюваному утворенню амілоїдних фібрил, що було продемонстровано на β2-мікроглобуліні (β2-m) – амілоїдогенному білку, пов’язаному з діаліз-асоційованим амілоїдозом.
Простий експериментальний підхід: індуковане ультразвуком утворення амілоїдних фібрил
Для індукування утворення фібрил 96-лунковий мікропланшет розмістили в центрі ультразвукового пристрою для багатолункових планшетів UIP400MTP, який забезпечує рівномірний ультразвуковий вплив на всі лунки. Умови експерименту були такими:
- Кожна лунка містила 0,2 ml розчину β2-мікроглобуліну (0,3 mg/ml, pH 2,5) з додаванням 5 μM ThT.
- Планшет піддавали циклам ультразвукової обробки, наприклад 1 хвилина ультразвукової обробки з подальшою паузою тривалістю 9 хвилин.
- Після ультразвукової обробки флуоресценцію ThT вимірювали за допомогою мікропланшетного рідера.
(пор. So et al., 2011)
Порівняння зі звичайним перемішуванням
Порівняно з традиційними методами перемішування ультразвукова обробка різко скоротила лаг-фазу утворення фібрил. За звичайних умов струшування мікропланшета лише в 1 із 10 лунок спостерігалося підвищення флуоресценції ThT через 20 годин. Натомість за циклічної ультразвукової обробки (15 хвилин ультразвукової обробки з подальшими 5 хвилинами спокою) значне підвищення флуоресценції ThT було виявлено відразу після першої ультразвукової обробки.
Стрімке прискорення кінетики утворення фібрил
Результати, отримані So et al. (2011), продемонстрували, що за допомогою ультразвукової обробки тривалість спонтанного утворення фібрил β2-мікроглобуліну за pH 2,5 можна скоротити з кількох годин до лише 10–15 хвилин.
Зображення, отримані методом атомно-силової мікроскопії (AFM), підтвердили, що фібрили, утворені шляхом 10-хвилинної ультразвукової обробки кожні 15 хвилин, морфологічно не відрізнялися від фібрил, утворених шляхом 1-хвилинної ультразвукової обробки кожні 10 хвилин. Це підкреслює відтворюваність і надійність індукованого ультразвуком утворення амілоїдних фібрил.
AFM-зображення амілоїдних фібрил, отриманих шляхом 1-хвилинної ультразвукової обробки кожні 10 хв (i), шляхом 10-хвилинної ультразвукової обробки кожні 15 хв (ii) та за допомогою реакції із затравкою без ультразвукової обробки (iii). Біла масштабна лінійка відповідає 1 μm.
Дослідження та зображення: ©So et al., 2011
Утворення фібрил за нейтрального pH
Навіть за нейтрального pH утворення фібрил було досягнуто після лаг-періоду тривалістю 1,5 години, що демонструє значне зниження енергетичного бар’єра нуклеації та росту під дією ультразвукової обробки. Це додатково підтверджує гіпотезу про те, що утворення амілоїдних фібрил є насамперед фізичною реакцією, значною мірою обмеженою енергетичним бар’єром нуклеації, який ультразвукова обробка ефективно знижує.
Вплив на дослідження захворювань, пов’язаних з амілоїдом
Просте й надійне утворення амілоїдних фібрил за допомогою ультразвукового пристрою для мікропланшетів UIP400MTP має важливе значення для досліджень хвороби Альцгеймера (AD) та інших захворювань, пов’язаних з амілоїдом, таких як хвороба Паркінсона, цукровий діабет II типу та системні амілоїдози. При AD агрегація амілоїду-β (Aβ) є ключовою патологічною ознакою, проте вивчення кінетики утворення його фібрил залишається складним через тривалі лаг-фази та варіабельність традиційних методів. Утворення фібрил під дією ультразвукової обробки прискорює нуклеацію, забезпечуючи високу відтворюваність і знижену варіабельність, що є вкрай важливим для скринінгу потенційних інгібіторів і розуміння амілоїдогенних механізмів. Крім того, висока продуктивність UIP400MTP дає змогу проводити масштабні дослідження неправильного згортання та агрегації білків, сприяючи відкриттю терапевтичних засобів, здатних модулювати утворення фібрил і потенційно сповільнювати прогресування нейродегенерації.
Це дослідження підтверджує, що ультразвукова обробка за допомогою ультразвукового пристрою для багатолункових планшетів UIP400MTP є високоефективним методом прискорення утворення амілоїдних фібрил. Основні переваги цього підходу:
- Різке скорочення лаг-періоду утворення фібрил.
- Рівномірний ультразвуковий вплив на всі лунки, що забезпечує відтворюване утворення фібрил.
- Можливість високопродуктивного скринінгу, що робить цей підхід придатним для пошуку амілоїдогенності білків у масштабі всього геному.
Завдяки поєднанню ультразвукової обробки з реєстрацією флуоресценції ThT цей метод забезпечує швидку, масштабовану й надійну платформу для вивчення утворення амілоїдних фібрил. З огляду на ефективність і потенціал високопродуктивної обробки цей підхід може полегшити простий синтез амілоїдних фібрил для біофізичних і фармацевтичних досліджень, пропонуючи перспективний інструмент для досліджень, пов’язаних з амілоїдом, і скринінгу лікарських засобів.
Високопродуктивна екстракція EM за допомогою ультразвукового пристрою для 96-лункових планшетів UIP400MTP
Література / Посилання
- FactSheet UIP400MTP Multi-well Plate Sonicator – Non-Contact Sonicator – Hielscher Ultrasonics
- Masatomo So, Hisashi Yagi, Kazumasa Sakurai, Hirotsugu Ogi, Hironobu Naiki, Yuji Goto (2011): Ultrasonication-Dependent Acceleration of Amyloid Fibril Formation. Journal of Molecular Biology, Volume 412, Issue 4, 2011. 568-577.
- Lauren E. Cruchley-Fuge, Martin R. Jones, Ossama Edbali, Gavin R. Lloyd, Ralf J. M. Weber, Andrew D. Southam, Mark R. Viant (2024): Automated extraction of adherent cell lines from 24-well and 96-well plates for multi-omics analysis using the Hielscher UIP400MTP sonicator and Beckman Coulter i7 liquid handling workstation. Metabomeeting 2024, University of Liverpool, 26-28th November 2024.
- De Oliveira A, Cataneli Pereira V, Pinheiro L, Moraes Riboli DF, Benini Martins K, Ribeiro de Souza da Cunha MDL (2016): Antimicrobial Resistance Profile of Planktonic and Biofilm Cells of Staphylococcus aureus and Coagulase-Negative Staphylococci. International Journal of Molecular Sciences 17(9):1423; 2016.
- Martins KB, Ferreira AM, Pereira VC, Pinheiro L, Oliveira A, Cunha MLRS (2019): In vitro Effects of Antimicrobial Agents on Planktonic and Biofilm Forms of Staphylococcus saprophyticus Isolated From Patients With Urinary Tract Infections. Frontiers in Microbiology 2019.
- Dreyer J., Ricci G., van den Berg J., Bhardwaj V., Funk J., Armstrong C., van Batenburg V., Sine C., VanInsberghe M.A., Marsman R., Mandemaker I.K., di Sanzo S., Costantini J., Manzo S.G., Biran A., Burny C., Völker-Albert M., Groth A., Spencer S.L., van Oudenaarden A., Mattiroli F. (2024): Acute multi-level response to defective de novo chromatin assembly in S-phase. Molecular Cell 2024.
- Mochizuki, Chika; Taketomi, Yoshitaka; Irie, Atsushi; Kano, Kuniyuki; Nagasaki, Yuki; Miki, Yoshimi; Ono, Takashi; Nishito, Yasumasa; Nakajima, Takahiro; Tomabechi, Yuri; Hanada, Kazuharu; Shirouzu, Mikako; Watanabe, Takashi; Hata, Kousuke; Izumi, Yoshihiro; Bamba, Takeshi; Chun, Jerold; Kudo, Kai; Kotani, Ai; Murakami, Makoto (2024): Secreted phospholipase PLA2G12A-driven lysophospholipid signaling via lipolytic modification of extracellular vesicles facilitates pathogenic Th17 differentiation. BioRxiv 2024.
- Cosenza-Contreras M, Seredynska A, Vogele D, Pinter N, Brombacher E, Cueto RF, Dinh TJ, Bernhard P, Rogg M, Liu J, Willems P, Stael S, Huesgen PF, Kuehn EW, Kreutz C, Schell C, Schilling O. (2024): TermineR: Extracting information on endogenous proteolytic processing from shotgun proteomics data. Proteomics. 2024.
Поширені запитання
Що таке первинна нуклеація амілоїду?
Первинна нуклеація амілоїду – це початковий етап утворення амілоїдних фібрил, який обмежує швидкість процесу та під час якого мономерні білки зазнають конформаційних змін і самоорганізуються в критичне ядро. Це ядро слугує матрицею для подальшої агрегації.
Як утворюється фібрила при амілоїдозі?
При амілоїдозі неправильно згорнуті білки агрегують шляхом нуклеаційно-залежної полімеризації. Щойно утворюється ядро, мономери швидко подовжуються, утворюючи багаті на β-складчасті шари фібрили шляхом вторинної нуклеації та матричного росту, що призводить до утворення амілоїдних відкладень.
Що таке поліморфізм амілоїдних фібрил?
Поліморфізм амілоїдних фібрил означає структурні варіації фібрил, утворених одним і тим самим білком. Відмінності в морфології фібрил, розташуванні протофіламентів і молекулярному пакуванні виникають через умови середовища, мутації або різні шляхи агрегації.
У чому різниця між амілоїдними фібрилами та бляшками?
Амілоїдні фібрили – це лінійні білкові агрегати, багаті на β-складчасті шари, тоді як амілоїдні бляшки – це позаклітинні відкладення агрегованих фібрил, часто змішаних із ліпідами, металами та клітинними рештками, які спостерігаються при нейродегенеративних захворюваннях, таких як хвороба Альцгеймера.
У чому різниця між альфа-синуклеїном та амілоїдом?
Альфа-синуклеїн – це нейрональний білок, який бере участь у функціонуванні синапсів, але за патологічних умов він неправильно згортається й утворює амілоїдоподібні фібрили. «Амілоїд» – це загальний термін для фібрилярних агрегатів неправильно згорнутих білків, тоді як фібрили альфа-синуклеїну характерні для таких захворювань, як хвороба Паркінсона.
Що таке білкова фібрила?
Білкова фібрила – це високовпорядкований ниткоподібний агрегат, багатий на β-складчасті шари, утворений неправильно згорнутими або частково розгорнутими білками. Ці фібрили зазвичай нерозчинні й виникають шляхом нуклеаційно-залежної полімеризації. Вони пов’язані з різними патологічними станами, зокрема амілоїдозами та нейродегенеративними захворюваннями (наприклад, хворобами Альцгеймера та Паркінсона). Однак у біологічних системах існують і функціональні білкові фібрили, такі як волокна curli у бактерій і фібрили шовку в павуків.
Hielscher Ultrasonics виготовляє високопродуктивні ультразвукові гомогенізатори від лабораторного до промислового розміру.

