Протокол анализа минимальной ингибирующей концентрации (MIC)
Анализ минимальной ингибирующей концентрации (MIC) на основе биопленки является важным методом оценки эффективности антимикробных препаратов против микроорганизмов, ассоциированных с биопленкой, которые демонстрируют повышенную устойчивость благодаря своему защитному внеклеточному матриксу. Решающим этапом в этом анализе является разрушение биопленочных структур для высвобождения встроенных клеток для точной оценки жизнеспособности. Многолуночный ультразвуковой аппарат UIP400MTP облегчает этот процесс, используя сфокусированный ультразвук для создания контролируемой кавитации, эффективно отделяя клетки биопленки и диспергируя их в однородную суспензию. Это точное и воспроизводимое разрушение биопленки повышает надежность и производительность анализов MIC, что делает UIP400MTP важным инструментом в продвижении исследований биопленки.
Ультразвуковая обработка при отслоении биопленки
Анализ MIC на основе биопленки обычно измеряет жизнеспособность бактерий или ингибирование роста с помощью таких методов, как гальваническое покрытие, подсчет колоний или измерение оптической плотности. Ультразвуковая обработка является важнейшим этапом анализа МПК на основе биопленки при оценке антимикробной восприимчивости микроорганизмов, ассоциированных с биопленкой. Его основная функция заключается в отделении и диспергировании клеток, встроенных в биопленочный матрикс, в однородную суспензию для точного анализа.
Биопленки значительно более устойчивы к противомикробным агентам по сравнению с планктонными клетками, что делает надлежащую отслойку критически важной для точного анализа. Во время этого процесса ультразвуковые волны генерируют контролируемую кавитацию, разрушая матрицу биопленки и высвобождая встроенные клетки в однородную суспензию в восстановительной среде. Этот шаг позволяет точно оценить жизнеспособность клеток, диспергированных в биопленке, с помощью таких методов, как осаждение, разведение и подсчет колоний. Надлежащее разрушение биопленки с помощью ультразвука предотвращает защиту клеток оставшимися компонентами матрикса, что в противном случае могло бы привести к недооценке антимикробной активности. Для этой цели особенно хорошо подходит многолуночный ультразвуковой аппарат UIP400MTP, который предлагает точные и воспроизводимые условия ультразвуковой обработки для обеспечения надежной и высокопроизводительной подготовки аналитических пластин.
UIP400MTP микропланшетный ультразвуковой аппарат для точно контролируемого отслоения биопленки в анализах MIC и MBEC.
Почему ультразвук необходим при анализах минимальной ингибиторной концентрации на основе биопленки
Для измерения жизнеспособности и подсчета клеток требуется полное и надежное отделение и диспергирование отдельных клеток. UIP400MTP способствует равномерному, не повреждающему отслоению биопленки и диспергированию клеток для получения надежных результатов анализа.
- Сложность биопленки: Биопленки представляют собой структурированные микробные сообщества, заключенные во внеклеточную матрицу полимерного вещества (ЭПС), которая защищает микроорганизмы и делает их более устойчивыми к антимикробным агентам.
- Равномерная дисперсия: Чтобы точно измерить жизнеспособность клеток, встроенных в биопленку, или их чувствительность к противомикробным препаратам, биопленку необходимо сначала вытеснить и разбить на однородную суспензию.
Протокол анализа минимальной ингибирующей концентрации на основе биопленки
Анализ минимальной ингибирующей концентрации (MIC) определяет самую низкую концентрацию противомикробного агента, необходимую для подавления видимого роста микроорганизмов. Этот протокол разработан для микроорганизмов, ассоциированных с биопленкой, UIP400MTP с использованием многолуночного ультразвукового аппарата для разрушения биопленки.
Шаг 1: Приготовление бактериального посева
- Приготовьте бактериальную суспензию:
Выращивайте бактерии в соответствующих средах до среднелогарифмической фазы.
Разбавьте культуру для достижения стандартизированной клеточной плотности (например, 0,5 по стандарту Макфарланда или OD600 ~0,1). - Приготовьте противомикробные растворы:
Разбавьте противомикробный агент в подходящей среде для получения диапазона концентраций (например, двукратное серийное разведение). - Выдавите в планшет 96well:
Добавьте антимикробные растворы в лунки стандартного 96-луночного планшета, с конечным объемом лунки ~150–200 μл.
Включите контроль роста (без противомикробных препаратов) и контроль стерильности (без бактериального инокулята).
Шаг 2: Образование биопленки на колышковой крышке
- Прикрепите колышковую крышку:
Поместите специальную крышку с колышком на инокулированные лунки, убедившись, что колышки полностью погружены в бактериальную суспензию. - Инкубируйте тарелку:
Инкубируйте при соответствующей температуре (например, 37°C) в течение определенного времени (например, 24 часа) в статических условиях, чтобы обеспечить образование биопленки на колышках. - Промойте колышки:
Снимите колышек крышки с бактериальной суспензии и аккуратно промойте в стерильном физрастворе или PBS для удаления слабо прикрепленных планктонных клеток. - Подвергайте воздействию противомикробных препаратов:
Переложите колышковую крышку в новую пластину 96well с противомикробными разведениями, приготовленными ранее.
Инкубируйте в течение определенного периода времени (например, 24 часа) в статических условиях, чтобы позволить противомикробному агенту воздействовать на биопленки.
Шаг 3: Воздействие противомикробных препаратов
Многолуночный планшетный ультразвуковой аппарат UIP400MTP для высокопроизводительной пробоподготовки
Шаг 4: Ультразвуковая обработка с помощью ультразвукового аппарата Microplate UIP400MTP
Этап ультразвуковой обработки имеет решающее значение для отделения биопленок от колышковых крышек для оценки жизнеспособности. Выполните следующие действия для UIP400MTP ультразвукового аппарата:
- Подготовьте установку:
Заполните свежую 96-луночную пластину восстановительной средой (например, нейтрализующим бульоном или стерильной средой для роста) в каждой лунке. - Переложите колышек крышкой:
Снимите колышковую крышку с пластины для антимикробной обработки.
Промойте крышку колышка в стерильном физрастворе или PBS для удаления остатков противомикробных агентов. - Расположите пластину в ультразвуковом аппарате:
Прикрепите колышковую крышку к пластине для восстановительной среды.
Поместите пластину для восстановительной среды в ультразвуковой аппарат UIP400MTP, убедившись, что пластина сидит по центру и устойчиво, как в описанном руководстве. - Настройте параметры ультразвука:
Установите параметры ультразвука на UIP400MTP (настройки могут быть подстроены под биопленку):
Амплитуда: 70–100%.
Время ультразвуковой обработки: 1–3 минуты (регулируется в зависимости от структуры биопленки) в режиме цикла. - Ультразвуковая обработка:
Запустите процесс обработки ультразвуком. Ультразвуковые волны разрушают матрицу биопленки и вытесняют клетки в восстановительную среду. - Контролируйте процесс:
Используйте вставной датчик температуры для контроля температуры проб в лунках. UIP400MTP можно подключить к лабораторному охладителю для охлаждения. - Работа с постультразвуковой обработкой:
Немедленно переложите восстановительную среду, содержащую отделившиеся биопленки, в свежую стерильную тарелку для последующего анализа.
(A) Планшет, содержащий TSB с 2% глюкозой, используемый для образования биопленки, восстановления клеток и определения MIC и MBEC; (Б) Крышка со штифтами для образования стафилококковых биопленок.
Образующиеся на штифтах биопленочные клетки вытесняли с помощью ультразвуковой обработки (ультразвуковая технология Hielscher) в течение 5 мин в 96-луночных планшетах, содержащих свежую питательную среду для восстановления клеток.
(Фото и исследование: ©де Оливейра и др., 2016)
Шаг 4: Оценка жизнеспособности
Планшетные и культуральные обособленные биопленки:
- Выполняйте серийное разведение восстановительной среды и планшета на агаре для подсчета колониеобразующих единиц (КОЕ).
- Оцените MIC:
Определите МПК как самую низкую концентрацию противомикробных препаратов, которая полностью подавляет видимый рост микроорганизмов в восстановительной среде.
Проектирование, производство и консалтинг – Качество «Сделано в Германии»
Ультразвуковые аппараты Hielscher хорошо известны своими высочайшими стандартами качества и дизайна. Надежность и простота в эксплуатации позволяют без проблем интегрировать наши ультразвуковые аппараты в промышленные объекты. Гидроакустические аппараты Hielscher легко справляются с суровыми условиями и требовательными условиями окружающей среды.
Hielscher Ultrasonics является компанией, сертифицированной по стандарту ISO, и уделяет особое внимание высокопроизводительным ультразвуковым аппаратам, отличающимся самыми современными технологиями и удобством в использовании. Конечно, ультразвуковые аппараты Hielscher соответствуют требованиям CE и соответствуют требованиям UL, CSA и RoHs.
Упрощение подготовки образцов в 96-луночных планшетах и пробирных планшетах Использование многолуночного планшетного ультразвукового аппарата UIP400MTP
Литература / Литература
- FactSheet UIP400MTP Multi-well Plate Sonicator – Non-Contact Sonicator – Hielscher Ultrasonics
- Dreyer J., Ricci G., van den Berg J., Bhardwaj V., Funk J., Armstrong C., van Batenburg V., Sine C., VanInsberghe M.A., Marsman R., Mandemaker I.K., di Sanzo S., Costantini J., Manzo S.G., Biran A., Burny C., Völker-Albert M., Groth A., Spencer S.L., van Oudenaarden A., Mattiroli F. (2024): Acute multi-level response to defective de novo chromatin assembly in S-phase. Molecular Cell 2024.
- Mochizuki, Chika; Taketomi, Yoshitaka; Irie, Atsushi; Kano, Kuniyuki; Nagasaki, Yuki; Miki, Yoshimi; Ono, Takashi; Nishito, Yasumasa; Nakajima, Takahiro; Tomabechi, Yuri; Hanada, Kazuharu; Shirouzu, Mikako; Watanabe, Takashi; Hata, Kousuke; Izumi, Yoshihiro; Bamba, Takeshi; Chun, Jerold; Kudo, Kai; Kotani, Ai; Murakami, Makoto (2024): Secreted phospholipase PLA2G12A-driven lysophospholipid signaling via lipolytic modification of extracellular vesicles facilitates pathogenic Th17 differentiation. BioRxiv 2024.
- Cosenza-Contreras M, Seredynska A, Vogele D, Pinter N, Brombacher E, Cueto RF, Dinh TJ, Bernhard P, Rogg M, Liu J, Willems P, Stael S, Huesgen PF, Kuehn EW, Kreutz C, Schell C, Schilling O. (2024): TermineR: Extracting information on endogenous proteolytic processing from shotgun proteomics data. Proteomics. 2024.
- De Oliveira A, Cataneli Pereira V, Pinheiro L, Moraes Riboli DF, Benini Martins K, Ribeiro de Souza da Cunha MDL (2016): Antimicrobial Resistance Profile of Planktonic and Biofilm Cells of Staphylococcus aureus and Coagulase-Negative Staphylococci. International Journal of Molecular Sciences 17(9):1423; 2016.
- Martins KB, Ferreira AM, Pereira VC, Pinheiro L, Oliveira A, Cunha MLRS (2019): In vitro Effects of Antimicrobial Agents on Planktonic and Biofilm Forms of Staphylococcus saprophyticus Isolated From Patients With Urinary Tract Infections. Frontiers in Microbiology 2019.
Часто задаваемые вопросы
Что такое анализ MIC?
Анализ минимальной ингибирующей концентрации (MIC) — это стандартизированный тест, используемый для определения самой низкой концентрации противомикробного агента, необходимой для подавления видимого роста микроорганизма. Обычно его проводят с использованием методов микроразведения бульона или разведения агара, при которых микроорганизмы подвергаются серийному разведению противомикробного средства. Анализы MIC имеют решающее значение для оценки эффективности противомикробных препаратов, руководства клиническим лечением и оценки уровней резистентности как планктонных, так и биопленочных микроорганизмов.
В чем разница между анализом минимальной ингибирующей концентрации на основе биопленки и анализом MBIC?
Анализ минимальной ингибирующей концентрации (MIC) на основе биопленки и анализ минимальной ингибирующей концентрации биопленки (MBIC) связаны между собой, но различаются по своей цели и методологии.
Анализ MIC на основе биопленки оценивает самую низкую концентрацию противомикробного агента, необходимого для подавления видимого роста или жизнеспособности биопленки, уделяя особое внимание клеткам, связанным с биопленкой, а не планктонным бактериям. В отличие от этого, анализ MBIC конкретно измеряет способность противомикробного агента предотвращать образование биопленки, а не обрабатывает предварительно сформированные биопленки. В то время как оба анализа имеют дело с бактериями, связанными с биопленкой, анализ MIC на основе биопленки направлен на лечение, а анализ MBIC делает акцент на профилактику, что делает их дополнительными инструментами для изучения антимикробной эффективности против биопленок.
Какие биопленки используются в анализах MIC?
Микробные биопленки и планктонные клетки используются в анализах минимальной ингибиторной концентрации (MIC) для изучения антимикробной эффективности в различных условиях.
- Планктонные клетки:
Планктонные клетки представляют собой свободно плавающие одиночные микробные клетки, которые служат стандартной моделью для традиционных анализов MIC. К распространенным микроорганизмам относятся кишечная палочка, синегнойная палочка, золотистый стафилококк и кандида альбиканса. Эти анализы определяют МИК, необходимый для ингибирования роста свободноживущих клеток, и имеют решающее значение для первоначального антимикробного скрининга. - Биопленочные клетки:
Биопленочные клетки – это микроорганизмы, встроенные во внеклеточный матрикс, что значительно повышает их устойчивость к противомикробным препаратам. Биопленочные MIC-анализы часто включают:- Грамотрицательные бактерии: Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa и Klebsiella pneumoniae, известные своим образованием биопленки при инфекциях и в промышленных условиях.
- Грамположительные бактерии: Staphylococcus aureus (включая MRSA), Staphylococcus epidermidis и Enterococcus faecalis, обычно участвующие в инфекциях, связанных с устройствами.
- Грибы: Candida albicans и родственные виды, важные при грибковых инфекциях, связанных с биопленкой.
- Смешанные биопленки: Они иногда используются для репликации естественных полимикробных биопленок, таких как те, которые обнаруживаются в хронических ранах или промышленных биообрастаниях.
Сравнивая значения МПК для планктонных клеток и клеток, ассоциированных с биопленкой, исследователи могут оценить повышенную устойчивость биопленок и определить агенты, эффективные против этих более устойчивых микробных сообществ.
В чем разница между MIC и MBEC?
Минимальная ингибиторная концентрация (MIC) — это самая низкая концентрация противомикробного агента, необходимая для предотвращения образования биопленки, в то время как минимальная концентрация для уничтожения биопленки (MBEC) — это самая низкая концентрация, необходимая для уничтожения укоренившейся биопленки. MIC фокусируется на профилактике биопленок, в то время как MBEC оценивает эффективность лечения в отношении зрелых биопленок.
Какие планшеты обычно используются для анализов MBEC?
Микротитровые планшеты, обычно используемые для анализа MBEC, обычно представляют собой 96-луночные планшеты, изготовленные из полистирола или полипропилена. Эти материалы обеспечивают подходящую поверхность для образования биопленки и химически устойчивы к антимикробным агентам, испытываемым в ходе анализа. Полистирольные пластины широко предпочтительны из-за их оптической прозрачности, что является преимуществом для последующих анализов, таких как спектрофотометрические или флуоресцентные измерения. Конструкция этих планшетов включает в себя съемные колышки с крышками, которые необходимы для анализа, поскольку на колышках, погруженных в лунки, содержащие питательную среду, образуются биопленки. Стандартизированные планшеты, такие как совместимые с протоколом анализа MBEC, специально разработаны для обеспечения воспроизводимости и совместимости с ультразвуковым аппаратом UIP400MTP или другим технологическим оборудованием.
Что такое пластины PEG-Lid?
Пластины с полиэтиленовой крышкой представляют собой специализированные системы многолуночных планшетов, в которых крышка оснащена небольшими штифтами или штифтами полиэтиленгликоля (ПЭГ), проходящими в каждую лунку. Эти стержни обеспечивают поверхность для образования микробной биопленки в контролируемых условиях, имитируя рост биопленки в реальных условиях. Такая конструкция позволяет биопленкам развиваться на колышках, в то время как лунки содержат питательные среды или противомикробные агенты, что позволяет проводить высокопроизводительные испытания чувствительности биопленки к лечению, например, в анализах MBEC, MBIC и MIC.
В чем преимущество ультразвукового вытеснения биопленки по сравнению с соскобием клеток?
Ультразвуковое смещение биопленки дает значительное преимущество по сравнению с соскабливанием клеток, обеспечивая неинвазивный, однородный и высокоэффективный метод удаления биопленок с поверхностей. В отличие от соскобливания, которое может быть непоследовательным и повреждать подстилающую поверхность или клетки, ультразвуковые волны проникают в биопленочный матрикс, разрушая его на части без нарушения целостности соседних структур. Этот метод обеспечивает воспроизводимость, сводит к минимуму риск загрязнения и особенно эффективен для областей применения, требующих точного удаления биопленки, таких как микробиологические исследования или испытания медицинских устройств. Узнайте больше о том, как UIP400MTP Sonicator превосходно справляется со скрейпингом ячеек!
Hielscher Ultrasonics производит высокопроизводительные ультразвуковые гомогенизаторы от лаборатория Кому промышленного размера.


