Как использовать ультразвуковые гомогенизаторы тканей Hielscher
Перед очисткой или характеристикой внутриклеточных макромолекул, таких как белки, органеллы, ферменты или активные соединения, необходимо применять эффективный метод лизиса тканей и разрушения клеток. Обработка ультразвуком – высокоэффективный метод подготовки клеток, быстро высвобождающий внутриклеточный материал в буферный раствор. Механические силы сдвига, возникающие при ультразвуковой гомогенизации тканей, можно точно регулировать с учётом конкретного материала. Это позволяет бережно подготавливать мягкие ткани или фрагментировать ДНК/РНК под действием сдвига при более мягкой обработке ультразвуком, а также использовать интенсивную ультразвуковую кавитацию для разрушения клеток (например, nannochloropsis, дрожжей).
Ниже представлены ткани, клетки и другие биологические материалы с рекомендуемыми протоколами обработки ультразвуком и указаниями по эффективной подготовке образцов с помощью ультразвукового гомогенизатора тканей или разрушителя клеток.
Лабораторный ультразвуковой аппарат UP200Ht (200W, 26kHz) для подготовки образцов
Как получать лизаты, гомогенаты и экстракты из биологических материалов
В алфавитном порядке:
Ацетобактер субоксиданс
Актиномицеты
Активность щелочной фосфатазы (ALP) и лактатдегидрогеназы (LDH)
Применение ультразвука:
Определение активности ALP и LDH и содержания белка
Замороженные клеточные образцы размораживали в течение 20 мин на льду, затем проводили лизис клеток с помощью PBS, содержащего 1% Triton X-100, в течение 50 мин на льду. Во время лизиса клеток каждый образец обрабатывали ультразвуком в течение 1 мин при 80 W с помощью ультразвукового процессора UP100H (Hielscher Ultrasonics).
Рекомендуемый прибор:
UP100H
Источник / научная статья:
Bernhardt, A. et al. (2008): Минерализованный коллаген – искусственный внеклеточный костный матрикс – улучшает остеогенную дифференцировку стромальных клеток костного мозга.
Определение активности ALP и LDH и содержания белка
Замороженные клеточные образцы размораживали в течение 20 мин на льду, затем проводили лизис клеток с помощью PBS, содержащего 1% Triton X-100, в течение 50 мин на льду. Во время лизиса клеток каждый образец обрабатывали ультразвуком в течение 1 мин при 80 W с помощью ультразвукового процессора UP100H (Hielscher Ultrasonics).
Рекомендуемый прибор:
UP100H
Источник / научная статья:
Bernhardt, A. et al. (2008): Минерализованный коллаген – искусственный внеклеточный костный матрикс – улучшает остеогенную дифференцировку стромальных клеток костного мозга.
Аморфный трикальцийфосфат (ATCP)
Применение ультразвука:
Наночастицы ATCP, являющиеся исключительно реакционноспособным прекурсором образования гидроксиапатита, диспергировали в хлороформе, содержащем 5 % (w/w) Tween20 относительно PLGA, с помощью ультразвукового прибора Hielscher UP400S при 320W в течение 5 мин, применяя импульсные интервалы (50%) для обеспечения релаксации частиц.
Рекомендуемый прибор:
UP400S
Источник / научная статья:
Mohn, Dirk; Ege, Duygu; Feldman, Kirifl; Schneider, Oliver D.; Imfeld, Thomas; Boccaccini, Aldo R. (2014): Сферические наполнители из наночастиц фосфата кальция позволяют перерабатывать полимеры для изготовления устройств фиксации костей с высокой биоактивностью. Бесплатная библиотека 01 мая 2010. 21 января 2014.
Наночастицы ATCP, являющиеся исключительно реакционноспособным прекурсором образования гидроксиапатита, диспергировали в хлороформе, содержащем 5 % (w/w) Tween20 относительно PLGA, с помощью ультразвукового прибора Hielscher UP400S при 320W в течение 5 мин, применяя импульсные интервалы (50%) для обеспечения релаксации частиц.
Рекомендуемый прибор:
UP400S
Источник / научная статья:
Mohn, Dirk; Ege, Duygu; Feldman, Kirifl; Schneider, Oliver D.; Imfeld, Thomas; Boccaccini, Aldo R. (2014): Сферические наполнители из наночастиц фосфата кальция позволяют перерабатывать полимеры для изготовления устройств фиксации костей с высокой биоактивностью. Бесплатная библиотека 01 мая 2010. 21 января 2014.
Антоцианы
Применение ультразвука:
Антоцианы: диглюкозиды, моноглюкозид, ацилированные моноглюкозиды и ацилированные диглюкозиды пеонидина, мальвидина, цианидина, петунидина и дельфинидина: экстракция из кожицы винограда за 40 sec; pH 5,0; соотношение материала и экстракционного растворителя 1:6.
Рекомендуемый прибор:
UP100H
Антоцианы: диглюкозиды, моноглюкозид, ацилированные моноглюкозиды и ацилированные диглюкозиды пеонидина, мальвидина, цианидина, петунидина и дельфинидина: экстракция из кожицы винограда за 40 sec; pH 5,0; соотношение материала и экстракционного растворителя 1:6.
Рекомендуемый прибор:
UP100H
Антрахиноны
Применение ультразвука:
Экстракция антрахинонов из корней Morinda citrifolia
Рекомендуемый прибор:
UP400S
Экстракция антрахинонов из корней Morinda citrifolia
Рекомендуемый прибор:
UP400S
Семена абрикоса
Применение ультразвука:
Предварительная обработка ультразвуком перед экстракцией масла из семян Jatropha curcas L. для улучшения экстракции.
Рекомендуемый прибор:
UP400S
Предварительная обработка ультразвуком перед экстракцией масла из семян Jatropha curcas L. для улучшения экстракции.
Рекомендуемый прибор:
UP400S
Полынь селенгинская (Artemisia selengensis Turcz)
Применение ультразвука:
Экстракция рутина (1,0g измельчённого образца в 30 mL метанола) при 25°C за 5–10 мин.
Рекомендуемый прибор:
UP50H
Экстракция рутина (1,0g измельчённого образца в 30 mL метанола) при 25°C за 5–10 мин.
Рекомендуемый прибор:
UP50H
Аспергилл жёлтый (Aspergillus flavus)
Применение ультразвука:
Ультразвуковая инактивация Aspergillus flavus в питательной среде Сабуро
Рекомендуемый прибор:
UP200S
Ультразвуковая инактивация Aspergillus flavus в питательной среде Сабуро
Рекомендуемый прибор:
UP200S
Б. сферикус / Бациллус сферикус
Споры Bacillus anthracis sterne 34F2
Применение ультразвука:
Ультразвуковое удаление спор Bacillus anthracis sterne 34F2, Bacillus cereus ATCC 21281 и Bacillus thuringiensis ATCC 33680. Применение 150 ppm гипохлорита натрия совместно с ультразвуком привело к инактивации спор.
Рекомендуемый прибор:
UP200S при амплитуде 100%
Источник / научная статья:
Pamarthi, S.R. et al.: Эффективность ультразвука при удалении загрязнений, содержащих споры Bacillus spp, внедрённые в сложные пищевые матрицы, прикреплённые к различным контактным поверхностям.
Ультразвуковое удаление спор Bacillus anthracis sterne 34F2, Bacillus cereus ATCC 21281 и Bacillus thuringiensis ATCC 33680. Применение 150 ppm гипохлорита натрия совместно с ультразвуком привело к инактивации спор.
Рекомендуемый прибор:
UP200S при амплитуде 100%
Источник / научная статья:
Pamarthi, S.R. et al.: Эффективность ультразвука при удалении загрязнений, содержащих споры Bacillus spp, внедрённые в сложные пищевые матрицы, прикреплённые к различным контактным поверхностям.
Споры Bacillus cereus ATCC 21281
Применение ультразвука:
Ультразвуковое удаление спор Bacillus anthracis sterne 34F2, Bacillus cereus ATCC 21281 и Bacillus thuringiensis ATCC 33680. Применение 150 ppm гипохлорита натрия совместно с ультразвуком привело к инактивации спор.
Рекомендуемый прибор:
UP200S при амплитуде 100%
Источник / научная статья:
Pamarthi, S.R. et al.: Эффективность ультразвука при удалении загрязнений, содержащих споры Bacillus spp, внедрённые в сложные пищевые матрицы, прикреплённые к различным контактным поверхностям.
Ультразвуковое удаление спор Bacillus anthracis sterne 34F2, Bacillus cereus ATCC 21281 и Bacillus thuringiensis ATCC 33680. Применение 150 ppm гипохлорита натрия совместно с ультразвуком привело к инактивации спор.
Рекомендуемый прибор:
UP200S при амплитуде 100%
Источник / научная статья:
Pamarthi, S.R. et al.: Эффективность ультразвука при удалении загрязнений, содержащих споры Bacillus spp, внедрённые в сложные пищевые матрицы, прикреплённые к различным контактным поверхностям.
Сенная палочка (Bacillus subtilis)
Применение ультразвука:
Высокомощный низкочастотный ультразвук в малых объёмах бактериальной суспензии приводит к непрерывному снижению числа бактериальных клеток, то есть преобладает их гибель. В больших объёмах обработка ультразвуком приводит к первоначальному увеличению числа клеток, указывающему на разъединение скоплений бактерий, однако после завершения разъединения скоплений число клеток снижается и гибель клеток приобретает большее значение.
Рекомендуемый прибор:
UP200St
Источник / научная статья:
Joyce, E.; Phull, S. S.; Lorimer, J. P.; Mason, T. J. (2003): Разработка и оценка применения ультразвука для обработки бактериальных суспензий. Исследование влияния частоты, мощности и времени обработки ультразвуком на культивируемые виды Bacillus. Ultrason. Sonochem. 10/2003. с. 315–318.
Высокомощный низкочастотный ультразвук в малых объёмах бактериальной суспензии приводит к непрерывному снижению числа бактериальных клеток, то есть преобладает их гибель. В больших объёмах обработка ультразвуком приводит к первоначальному увеличению числа клеток, указывающему на разъединение скоплений бактерий, однако после завершения разъединения скоплений число клеток снижается и гибель клеток приобретает большее значение.
Рекомендуемый прибор:
UP200St
Источник / научная статья:
Joyce, E.; Phull, S. S.; Lorimer, J. P.; Mason, T. J. (2003): Разработка и оценка применения ультразвука для обработки бактериальных суспензий. Исследование влияния частоты, мощности и времени обработки ультразвуком на культивируемые виды Bacillus. Ultrason. Sonochem. 10/2003. с. 315–318.
Альфа-амилаза ячменя
Применение ультразвука:
Стимуляция или подавление активности альфа-амилазы ячменя: образец (10 g семян ячменя) диспергировали в 80 ml водопроводной воды при непосредственной обработке ультразвуком с интенсивностью, соответствующей амплитуде 20, 60 и 100%, долей времени включения ультразвука в периоде 50% и дополнительным перемешиванием. Сонотрод погружали в раствор примерно на 9 mm. Раствор обрабатывали при постоянной температуре 30C° в течение 5, 10 и 15 мин.
Рекомендуемый прибор:
UP200S, амплитуды: 20, 60 и 100%; доля времени включения ультразвука в периоде 50%; сонотрод S3, 30C°.
Источник / научная статья:
Yaldagard et al. (2008): Влияние мощности ультразвука на активность альфа-амилазы ячменя при обработке семян после посева
Стимуляция или подавление активности альфа-амилазы ячменя: образец (10 g семян ячменя) диспергировали в 80 ml водопроводной воды при непосредственной обработке ультразвуком с интенсивностью, соответствующей амплитуде 20, 60 и 100%, долей времени включения ультразвука в периоде 50% и дополнительным перемешиванием. Сонотрод погружали в раствор примерно на 9 mm. Раствор обрабатывали при постоянной температуре 30C° в течение 5, 10 и 15 мин.
Рекомендуемый прибор:
UP200S, амплитуды: 20, 60 и 100%; доля времени включения ультразвука в периоде 50%; сонотрод S3, 30C°.
Источник / научная статья:
Yaldagard et al. (2008): Влияние мощности ультразвука на активность альфа-амилазы ячменя при обработке семян после посева
Науплиусы морских желудей
Применение ультразвука:
Разрушение клеток / уничтожение мезозоопланктона: при обработке ультразвуком с четырьмя значениями расхода (200, 400, 520 и 800 lh-1) и четырьмя значениями амплитуды (25, 50, 75 и 100 %) была достигнута доля погибших организмов от 61 до 97 %.
Рекомендуемый прибор:
UIP2000hd
Источник / научная статья:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ультрафиолетовый свет, ультразвук и перекись водорода как средства обработки балластной воды – эксперименты с мезозоопланктоном в солоноватой воде с низкой солёностью.
Разрушение клеток / уничтожение мезозоопланктона: при обработке ультразвуком с четырьмя значениями расхода (200, 400, 520 и 800 lh-1) и четырьмя значениями амплитуды (25, 50, 75 и 100 %) была достигнута доля погибших организмов от 61 до 97 %.
Рекомендуемый прибор:
UIP2000hd
Источник / научная статья:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ультрафиолетовый свет, ультразвук и перекись водорода как средства обработки балластной воды – эксперименты с мезозоопланктоном в солоноватой воде с низкой солёностью.
Штаммы бифидобактерий: B. breve ATCC 15700, B. animalis subsp. lactis (BB-12), B. longum (BB-46)
Применение ультразвука:
Разрушение бактериальных клеток и высвобождение ß-галактозидазы из штаммов бифидобактерий: B. breve ATCC 15700, B. animalis subsp. Lactis (BB-12), B. longum (BB-46): 100 mL пастеризованного молока, смешанного с бактериальной культурой, обрабатывали ультразвуком. Кавитация вызывает разрушение бактериальных клеток и одновременно высвобождение ß-галактозидазы.
Рекомендуемый прибор:
UIP1000hd: амплитуда: 10%, мощность: 80W, амплитуда: 100%, мощность: 200W; сонотрод BS2d34; 15–30 мин.
Источник / научная статья:
Hung et al. (2009): Ферментация йогурта с пробиотиками при содействии ультразвука.
Разрушение бактериальных клеток и высвобождение ß-галактозидазы из штаммов бифидобактерий: B. breve ATCC 15700, B. animalis subsp. Lactis (BB-12), B. longum (BB-46): 100 mL пастеризованного молока, смешанного с бактериальной культурой, обрабатывали ультразвуком. Кавитация вызывает разрушение бактериальных клеток и одновременно высвобождение ß-галактозидазы.
Рекомендуемый прибор:
UIP1000hd: амплитуда: 10%, мощность: 80W, амплитуда: 100%, мощность: 200W; сонотрод BS2d34; 15–30 мин.
Источник / научная статья:
Hung et al. (2009): Ферментация йогурта с пробиотиками при содействии ультразвука.
Клетки BL21(DE3) pAtHNL (клетки Arabidopsis thaliana)
Применение ультразвука:
Разрушение клеток: 15 g клеток BL21-(DE3)_pAtHNL медленно суспендировали в 50 mM калий-фосфатном буфере (pH 7,5) при 0 degC.
Рекомендуемый прибор:
UP200S + сонотрод S14D: при 70W/cm2 (4 x 5 мин), с охлаждением в ледяной бане
Источник / научная статья:
Okrob, D. et al (2009): Гидроксинитриллиаза из Arabidopsis thaliana: определение параметров реакции для синтеза энантиомерно чистого циангидрина с использованием чистого и иммобилизованного катализатора. Adv. Synth. Catal. 2011, 353, 2399 – 2408.
Разрушение клеток: 15 g клеток BL21-(DE3)_pAtHNL медленно суспендировали в 50 mM калий-фосфатном буфере (pH 7,5) при 0 degC.
Рекомендуемый прибор:
UP200S + сонотрод S14D: при 70W/cm2 (4 x 5 мин), с охлаждением в ледяной бане
Источник / научная статья:
Okrob, D. et al (2009): Гидроксинитриллиаза из Arabidopsis thaliana: определение параметров реакции для синтеза энантиомерно чистого циангидрина с использованием чистого и иммобилизованного катализатора. Adv. Synth. Catal. 2011, 353, 2399 – 2408.
Клетки крови (эритроциты и лейкоциты)
Болдин из листьев больдо (Peumus boldus Molina)
Применение ультразвука:
Важным активным соединением в больдо является больдин ((S)-2,9-dihydroxy-1,10-dimethoxiaporphine), который наряду с катехином ((2S,3R)-2-(3,4-dihydroxy-phenyl)-3,4-dihydro-1(2H)-benzopyran-3,5,7-triol) относится к основным компонентам алкалоидной и флавоноидной фракции листьев больдо. Больдин – сильный антиоксидант, который подвергается перекисному повреждению, опосредованному свободными радикалами, и эффективно улавливает гидроксильные радикалы.
Процедура экстракции: При типичной процедуре экстракции образцы листьев больдо экстрагировали с помощью 1L дистиллированной воды при атмосферном давлении, используя ультразвуковой аппарат UIP1000hd в периодическом и проточном режимах. Время экстракции составляет от 10 до 40 мин при интенсивности ультразвука от 10 до 23 W/cm2 и температуре от 10 до 70°C. Наилучшие результаты были достигнуты при следующих условиях: интенсивность ультразвука 23 W/cm2 в течение 40 мин при температуре 36°C
Результаты: Результаты анализа показывают, что обработка ультразвуком высокой мощности усиливает высвобождение анализируемых веществ из растительного матрикса больдо, обеспечивая значительно более высокую скорость по сравнению с традиционным методом: одинаковый выход достигался при обработке ультразвуком за 30 мин, тогда как время традиционной экстракции составляло 2 ч.
Chemat (2013) и соавторы показали, что экстракция с применением ультразвука повышает эффективность экстракции из растений, сокращая время экстракции и увеличивая концентрацию экстрактов (при одинаковом количестве растворителя и растительного материала). Анализ показал, что оптимизированные условия были следующими: мощность обработки ультразвуком 23 W/cm2 с помощью UIP1000hd в течение 40 мин при температуре 36°C. Оптимизированные параметры ультразвуковой экстракции обеспечивают улучшение экстракции по сравнению с традиционной мацерацией по времени процесса (30 мин вместо 120 мин), более высокому выходу, более высокой энергоэффективности, улучшенной чистоте, более высокой безопасности и лучшему качеству продукта.
Рекомендуемый прибор:
UIP1000hd с сонотродом BS2d34 и проточной ячейкой
Источник / научная статья:
Petigny, L.; Périno-Issartier, S.; Wajsman, J.; Chemat, F. (2013): Периодическая и непрерывная экстракция листьев больдо (Peumus boldus Mol.) с применением ультразвука. International Journal of Molecular Science 14, 2013. 5750–5764.
Важным активным соединением в больдо является больдин ((S)-2,9-dihydroxy-1,10-dimethoxiaporphine), который наряду с катехином ((2S,3R)-2-(3,4-dihydroxy-phenyl)-3,4-dihydro-1(2H)-benzopyran-3,5,7-triol) относится к основным компонентам алкалоидной и флавоноидной фракции листьев больдо. Больдин – сильный антиоксидант, который подвергается перекисному повреждению, опосредованному свободными радикалами, и эффективно улавливает гидроксильные радикалы.
Процедура экстракции: При типичной процедуре экстракции образцы листьев больдо экстрагировали с помощью 1L дистиллированной воды при атмосферном давлении, используя ультразвуковой аппарат UIP1000hd в периодическом и проточном режимах. Время экстракции составляет от 10 до 40 мин при интенсивности ультразвука от 10 до 23 W/cm2 и температуре от 10 до 70°C. Наилучшие результаты были достигнуты при следующих условиях: интенсивность ультразвука 23 W/cm2 в течение 40 мин при температуре 36°C
Результаты: Результаты анализа показывают, что обработка ультразвуком высокой мощности усиливает высвобождение анализируемых веществ из растительного матрикса больдо, обеспечивая значительно более высокую скорость по сравнению с традиционным методом: одинаковый выход достигался при обработке ультразвуком за 30 мин, тогда как время традиционной экстракции составляло 2 ч.
Chemat (2013) и соавторы показали, что экстракция с применением ультразвука повышает эффективность экстракции из растений, сокращая время экстракции и увеличивая концентрацию экстрактов (при одинаковом количестве растворителя и растительного материала). Анализ показал, что оптимизированные условия были следующими: мощность обработки ультразвуком 23 W/cm2 с помощью UIP1000hd в течение 40 мин при температуре 36°C. Оптимизированные параметры ультразвуковой экстракции обеспечивают улучшение экстракции по сравнению с традиционной мацерацией по времени процесса (30 мин вместо 120 мин), более высокому выходу, более высокой энергоэффективности, улучшенной чистоте, более высокой безопасности и лучшему качеству продукта.
Рекомендуемый прибор:
UIP1000hd с сонотродом BS2d34 и проточной ячейкой
Источник / научная статья:
Petigny, L.; Périno-Issartier, S.; Wajsman, J.; Chemat, F. (2013): Периодическая и непрерывная экстракция листьев больдо (Peumus boldus Mol.) с применением ультразвука. International Journal of Molecular Science 14, 2013. 5750–5764.
Бычий сывороточный альбумин (BSA)
Применение ультразвука:
Микрокапсулирование в сополимере молочной и гликолевой кислот за 40 sec.
Рекомендуемый прибор:
GDmini
Источник / научная статья:
Freitas et al. (2005): Проточное ультразвуковое эмульгирование в сочетании со статическим микросмешиванием для асептического получения микросфер методом экстракции растворителя.
Микрокапсулирование в сополимере молочной и гликолевой кислот за 40 sec.
Рекомендуемый прибор:
GDmini
Источник / научная статья:
Freitas et al. (2005): Проточное ультразвуковое эмульгирование в сочетании со статическим микросмешиванием для асептического получения микросфер методом экстракции растворителя.
Ствол головного мозга + надпочечник
Применение ультразвука:
Диспергирование и анализ нуклеотидов; размер образца: образцы по 10 mg в 10 ml жидкости.
Рекомендуемый прибор:
UP50H
Диспергирование и анализ нуклеотидов; размер образца: образцы по 10 mg в 10 ml жидкости.
Рекомендуемый прибор:
UP50H
Кандида белая
Углеводы, полисахариды и другие функциональные соединения
Применение ультразвука:
Экстракция углеводов, полисахаридов и других функциональных соединений
Рекомендуемый прибор:
UP200St
Экстракция углеводов, полисахаридов и других функциональных соединений
Рекомендуемый прибор:
UP200St
Карнозиновая кислота из розмарина
Применение ультразвука:
Экстракция карнозовой кислоты, активного соединения, из розмарина.
Рекомендуемый прибор:
UP400S
Экстракция карнозовой кислоты, активного соединения, из розмарина.
Рекомендуемый прибор:
UP400S
Капсаициноиды
Применение ультразвука:
Экстракция капсаициноидов (капсаицина, нордигидрокапсаицина) из перца чили: капсаициноиды из перца Capsicum frutescens получали методом ультразвуковой экстракции при следующих условиях: растворитель: 95% (v/v) этанол, соотношение объёма растворителя и массы 10 ml/g, время ультразвуковой экстракции 40 мин, температура экстракции 45°C. Выход экстрагируемых веществ: 85% капсаициноидов
Рекомендуемый прибор:
UP400S
Экстракция капсаициноидов (капсаицина, нордигидрокапсаицина) из перца чили: капсаициноиды из перца Capsicum frutescens получали методом ультразвуковой экстракции при следующих условиях: растворитель: 95% (v/v) этанол, соотношение объёма растворителя и массы 10 ml/g, время ультразвуковой экстракции 40 мин, температура экстракции 45°C. Выход экстрагируемых веществ: 85% капсаициноидов
Рекомендуемый прибор:
UP400S
Каротиноиды, бета-каротиноиды
кДНК (cDNA)
Применение ультразвука:
Поли-А-РНК очищали с помощью набора Dynabeads для очистки мРНК (Invitrogen) по инструкции производителя и обрабатывали в течение 30 мин при 37°C с помощью TURBO DNase (Ambion; 0,2 единицы/1 μg РНК). Синтез первой и второй цепей проводили по протоколу производителя. Около 500ng двухцепочечной кДНК фрагментировали обработкой ультразвуком с помощью прибора Hielscher UTR200. ДНК разделяли в 2% агарозном геле с высокой разрешающей способностью и вырезали фрагменты длиной 230–270 пар оснований.
Рекомендуемый прибор:
UTR200 или TD_CupHorn
Источник / научная статья:
Delft, J. van; Gaj, St.; Lienhard,M.; Albrecht, M. W.; Kirpiy, A.; Brauers, K.; Claessen, S.; Lizarraga, D.; Lehrach, H.; Herwig, R.; Kleinjans, J. (2012): RNA-Seq даёт новые сведения о транскриптомных ответах, индуцированных канцерогеном бензо[a]пиреном. Toxicological Sciences 130/2, 2012. 427–439.
Поли-А-РНК очищали с помощью набора Dynabeads для очистки мРНК (Invitrogen) по инструкции производителя и обрабатывали в течение 30 мин при 37°C с помощью TURBO DNase (Ambion; 0,2 единицы/1 μg РНК). Синтез первой и второй цепей проводили по протоколу производителя. Около 500ng двухцепочечной кДНК фрагментировали обработкой ультразвуком с помощью прибора Hielscher UTR200. ДНК разделяли в 2% агарозном геле с высокой разрешающей способностью и вырезали фрагменты длиной 230–270 пар оснований.
Рекомендуемый прибор:
UTR200 или TD_CupHorn
Источник / научная статья:
Delft, J. van; Gaj, St.; Lienhard,M.; Albrecht, M. W.; Kirpiy, A.; Brauers, K.; Claessen, S.; Lizarraga, D.; Lehrach, H.; Herwig, R.; Kleinjans, J. (2012): RNA-Seq даёт новые сведения о транскриптомных ответах, индуцированных канцерогеном бензо[a]пиреном. Toxicological Sciences 130/2, 2012. 427–439.
Кариофанон латум
Применение ультразвука:
Экстракция глюкозамина, мурамовой кислоты, аланина, глутаминовой кислоты и лизина из caryophanon datum.
Рекомендуемый прибор:
UP100H
Экстракция глюкозамина, мурамовой кислоты, аланина, глутаминовой кислоты и лизина из caryophanon datum.
Рекомендуемый прибор:
UP100H
Целлюлоза
Применение ультразвука:
Гомогенизация / подготовка изотопно-однородной целлюлозы.
Рекомендуемый прибор:
UP200S; в ледяной бане
Источник / научная статья:
Laumer et al. (2009): Новый подход к гомогенизации целлюлозы для использования микроколичеств в анализе стабильных изотопов.
Гомогенизация / подготовка изотопно-однородной целлюлозы.
Рекомендуемый прибор:
UP200S; в ледяной бане
Источник / научная статья:
Laumer et al. (2009): Новый подход к гомогенизации целлюлозы для использования микроколичеств в анализе стабильных изотопов.
Нанокристаллы целлюлозы (CNC), полученные из нанокристаллов эвкалиптовой целлюлозы
Применение ультразвука:
Нанокристаллы целлюлозы (CNC), полученные из CNC эвкалиптовой целлюлозы, модифицировали реакцией с methyl adipoyl chloride, получая CNCm, либо со смесью уксусной и серной кислот, получая CNCa. Для этого лиофилизированные CNC, CNCm и CNCa повторно диспергировали в чистых растворителях (EA, THF или DMF) при 0,1 wt% посредством перемешивания на магнитной мешалке в течение ночи при (24 ± 1) C, после чего обрабатывали в течение 20 мин в ультразвуковой бане с использованием UP100H Hielscher Ultrasonics (Германия), оснащённого сонотродом 130 W/cm2, при 24 ± 1 degC. Затем в дисперсию CNC добавляли CAB, чтобы конечная концентрация полимера составляла 0,9 wt%.
Рекомендуемый прибор:
UP100H; при 24 degC в течение 20 мин.
Источник / научная статья:
Blachechen, L. S. et al (2013): Взаимосвязь коллоидной стабильности нанокристаллов целлюлозы и их диспергируемости в матрице ацетобутирата целлюлозы. Cellulose 2013.
Нанокристаллы целлюлозы (CNC), полученные из CNC эвкалиптовой целлюлозы, модифицировали реакцией с methyl adipoyl chloride, получая CNCm, либо со смесью уксусной и серной кислот, получая CNCa. Для этого лиофилизированные CNC, CNCm и CNCa повторно диспергировали в чистых растворителях (EA, THF или DMF) при 0,1 wt% посредством перемешивания на магнитной мешалке в течение ночи при (24 ± 1) C, после чего обрабатывали в течение 20 мин в ультразвуковой бане с использованием UP100H Hielscher Ultrasonics (Германия), оснащённого сонотродом 130 W/cm2, при 24 ± 1 degC. Затем в дисперсию CNC добавляли CAB, чтобы конечная концентрация полимера составляла 0,9 wt%.
Рекомендуемый прибор:
UP100H; при 24 degC в течение 20 мин.
Источник / научная статья:
Blachechen, L. S. et al (2013): Взаимосвязь коллоидной стабильности нанокристаллов целлюлозы и их диспергируемости в матрице ацетобутирата целлюлозы. Cellulose 2013.
Целлюлоза из багассы сахарного тростника
Применение ультразвука:
Экстракция целлюлозы из багассы сахарного тростника
Рекомендуемый прибор:
UP200St
Экстракция целлюлозы из багассы сахарного тростника
Рекомендуемый прибор:
UP200St
Анализ методом иммунопреципитации хроматина (ChIP)
Применение ультразвука:
Обработку ультразвуком используют для лизиса клеток с целью высвобождения хроматина. Мягкую (импульсную) обработку ультразвуком используют для фрагментации хроматина. Кроме того, ультразвук ускоряет связывание антител с целевыми белками и тем самым сокращает время иммунопреципитации.
Рекомендуемый прибор:
UP100H
Источник / научная статья:
Basselet, P. et al. (2008): Подготовка образцов для анализа энтерогеморрагической Escherichia coli (EHEC) с использованием ДНК-микрочипов.
Lauri, A. (2005): Молекулярный анализ развития лепестков с помощью X-ChIP и двухгибридной технологии. Диссертация, Кёльнский университет, 2005.
Обработку ультразвуком используют для лизиса клеток с целью высвобождения хроматина. Мягкую (импульсную) обработку ультразвуком используют для фрагментации хроматина. Кроме того, ультразвук ускоряет связывание антител с целевыми белками и тем самым сокращает время иммунопреципитации.
Рекомендуемый прибор:
UP100H
Источник / научная статья:
Basselet, P. et al. (2008): Подготовка образцов для анализа энтерогеморрагической Escherichia coli (EHEC) с использованием ДНК-микрочипов.
Lauri, A. (2005): Молекулярный анализ развития лепестков с помощью X-ChIP и двухгибридной технологии. Диссертация, Кёльнский университет, 2005.
Хроматин
Применение ультразвука:
Фрагментация хроматина под действием сдвига
Рекомендуемый прибор:
UP400S; при амплитуде 30% и доле времени включения ультразвука в периоде 0,5; на льду.
Источник / научная статья:
Oh et al. (2003): Ген ацетил-КоА-карбоксилазы регулируется в печени белком-1, связывающим стерольный регуляторный элемент.
Фрагментация хроматина под действием сдвига
Рекомендуемый прибор:
UP400S; при амплитуде 30% и доле времени включения ультразвука в периоде 0,5; на льду.
Источник / научная статья:
Oh et al. (2003): Ген ацетил-КоА-карбоксилазы регулируется в печени белком-1, связывающим стерольный регуляторный элемент.
Выделение хроматина
Применение ультразвука:
Лизат клеток MEL DS19 обрабатывали ультразвуком в 10 раундах по 20 с каждый при 70% максимальной выходной мощности с помощью ультразвукового процессора Hielscher UP200H мощностью 200W
Рекомендуемый прибор:
UP200H; 70% максимальной выходной мощности; импульсный режим: 10 циклов по 20 sec каждый.
Источник / научная статья:
Kang, H. Ch. et al (2010): PIAS1 регулирует локализацию CP2c и образование активного промоторного комплекса при специфичной для эритроидных клеток экспрессии a-глобина. Nucleic Acids Res. 38/ 16, 2010. с. 5456–5471.
Лизат клеток MEL DS19 обрабатывали ультразвуком в 10 раундах по 20 с каждый при 70% максимальной выходной мощности с помощью ультразвукового процессора Hielscher UP200H мощностью 200W
Рекомендуемый прибор:
UP200H; 70% максимальной выходной мощности; импульсный режим: 10 циклов по 20 sec каждый.
Источник / научная статья:
Kang, H. Ch. et al (2010): PIAS1 регулирует локализацию CP2c и образование активного промоторного комплекса при специфичной для эритроидных клеток экспрессии a-глобина. Nucleic Acids Res. 38/ 16, 2010. с. 5456–5471.
Хроматография
Применение ультразвука:
Обработка адсорбента в растворителе ультразвуком устраняет агломераты за несколько секунд и позволяет получить однородную, легко заполняемую колонку. Применимо для подготовки адсорбента (например, силикагеля) перед колоночной хроматографией.
Рекомендуемый прибор:
UP400S
Обработка адсорбента в растворителе ультразвуком устраняет агломераты за несколько секунд и позволяет получить однородную, легко заполняемую колонку. Применимо для подготовки адсорбента (например, силикагеля) перед колоночной хроматографией.
Рекомендуемый прибор:
UP400S
Ветвистоусые ракообразные
Применение ультразвука:
Разрушение клеток мезозоопланктона
Рекомендуемый прибор:
UP2000hd с проточной ячейкой
Источник / научная статья:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ультрафиолетовый свет, ультразвук и перекись водорода как средства обработки балластной воды – эксперименты с мезозоопланктоном в солоноватой воде с низкой солёностью.
Разрушение клеток мезозоопланктона
Рекомендуемый прибор:
UP2000hd с проточной ячейкой
Источник / научная статья:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ультрафиолетовый свет, ультразвук и перекись водорода как средства обработки балластной воды – эксперименты с мезозоопланктоном в солоноватой воде с низкой солёностью.
Взрослые веслоногие ракообразные и копеподиты
Применение ультразвука:
Разрушение клеток мезозоопланктона: при обработке ультразвуком с четырьмя значениями расхода (200, 400, 520 и 800 lh-1) и четырьмя значениями амплитуды (25, 50, 75 и 100%) была достигнута доля погибших организмов от 87 до 99%.
Рекомендуемый прибор:
UIP2000hd с проточной ячейкой
Источник / научная статья:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ультрафиолетовый свет, ультразвук и перекись водорода как средства обработки балластной воды – эксперименты с мезозоопланктоном в солоноватой воде с низкой солёностью.
Разрушение клеток мезозоопланктона: при обработке ультразвуком с четырьмя значениями расхода (200, 400, 520 и 800 lh-1) и четырьмя значениями амплитуды (25, 50, 75 и 100%) была достигнута доля погибших организмов от 87 до 99%.
Рекомендуемый прибор:
UIP2000hd с проточной ячейкой
Источник / научная статья:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ультрафиолетовый свет, ультразвук и перекись водорода как средства обработки балластной воды – эксперименты с мезозоопланктоном в солоноватой воде с низкой солёностью.
Науплиусы веслоногих ракообразных
Применение ультразвука:
Разрушение клеток мезозоопланктона: при обработке ультразвуком с четырьмя значениями расхода (200, 400, 520 и 800 lh-1) и четырьмя значениями амплитуды (25, 50, 75 и 100%) была достигнута доля погибших организмов от 87 до 99%.
Рекомендуемый прибор:
UIP2000hd с проточной ячейкой
Источник / научная статья:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ультрафиолетовый свет, ультразвук и перекись водорода как средства обработки балластной воды – эксперименты с мезозоопланктоном в солоноватой воде с низкой солёностью.
Разрушение клеток мезозоопланктона: при обработке ультразвуком с четырьмя значениями расхода (200, 400, 520 и 800 lh-1) и четырьмя значениями амплитуды (25, 50, 75 и 100%) была достигнута доля погибших организмов от 87 до 99%.
Рекомендуемый прибор:
UIP2000hd с проточной ячейкой
Источник / научная статья:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ультрафиолетовый свет, ультразвук и перекись водорода как средства обработки балластной воды – эксперименты с мезозоопланктоном в солоноватой воде с низкой солёностью.
Клетки COS7
Применение ультразвука:
Лизис в 400 μl буфера
Рекомендуемый прибор:
UP200S; 7 циклов
Источник / научная статья:
Zaim (2005): Анализ мышей с дефицитом Nesprin-2.
Лизис в 400 μl буфера
Рекомендуемый прибор:
UP200S; 7 циклов
Источник / научная статья:
Zaim (2005): Анализ мышей с дефицитом Nesprin-2.
Криптоспоридий парвум
Применение ультразвука:
Ультразвуковая инактивация Cryptosporidium parvaum (простейших) в воде.
Рекомендуемый прибор:
UP400S
Источник / научная статья:
Tsukamoto, I.; Yim, B.; Stavarache, C. E.; Furuta, M.; Hashiba, K.; Maeda, Y. (2004): Инактивация Saccharomyces cerevisiae ультразвуковым облучением. Ultrasonics Sonochemistry 11/2004. с. 61–65.
Ультразвуковая инактивация Cryptosporidium parvaum (простейших) в воде.
Рекомендуемый прибор:
UP400S
Источник / научная статья:
Tsukamoto, I.; Yim, B.; Stavarache, C. E.; Furuta, M.; Hashiba, K.; Maeda, Y. (2004): Инактивация Saccharomyces cerevisiae ультразвуковым облучением. Ultrasonics Sonochemistry 11/2004. с. 61–65.
Кубосомы
Применение ультразвука:
Кубосомы – пустые или с введёнными молекулами флуорофора – получали диспергированием соответствующего количества моноолеина в растворе Pluronic F108 с помощью ультразвукового аппарата UP100H. Для получения флуоресцентных кубосом флуорофор диспергировали в расплавленном моноолеине посредством мягкой обработки ультразвуком перед диспергированием в Pluronic F108. Такую же процедуру использовали, когда флуоресцентные кубосомы также загружали кверцетином.
Образец: объём образца: 4 mL – приблизительно 96,4 wt% воды, 3,3 wt % моноолеина, 0,3 wt% Pluronic F108. Процентное содержание флуорофора составляло 2,5 × 10−3 и 2,8 × 10−3 wt%. Количество добавленного кверцетина: 6,4 × 10−6 wt%.
Обработка ультразвуком: UP100H, амплитуда 90%, доля времени включения ультразвука в периоде 0,9, в течение 10 мин.
Рекомендуемый прибор:
UP100H
Источник / научная статья:
Murgia, S.; Bonacchi,S.; Falchi, A. M.; Lampis, S.; Lippolis, V.; Meli, V.; Monduzzi, M.; Prodi, L.; Schmidt, J.; Talmon, Y.; Caltagirone, C. (2013): Флуоресцентные кубосомы, загруженные лекарственными веществами: универсальные наночастицы для потенциального применения в тераностике. Langmuir 29, 2013. 6673–6679.
Кубосомы – пустые или с введёнными молекулами флуорофора – получали диспергированием соответствующего количества моноолеина в растворе Pluronic F108 с помощью ультразвукового аппарата UP100H. Для получения флуоресцентных кубосом флуорофор диспергировали в расплавленном моноолеине посредством мягкой обработки ультразвуком перед диспергированием в Pluronic F108. Такую же процедуру использовали, когда флуоресцентные кубосомы также загружали кверцетином.
Образец: объём образца: 4 mL – приблизительно 96,4 wt% воды, 3,3 wt % моноолеина, 0,3 wt% Pluronic F108. Процентное содержание флуорофора составляло 2,5 × 10−3 и 2,8 × 10−3 wt%. Количество добавленного кверцетина: 6,4 × 10−6 wt%.
Обработка ультразвуком: UP100H, амплитуда 90%, доля времени включения ультразвука в периоде 0,9, в течение 10 мин.
Рекомендуемый прибор:
UP100H
Источник / научная статья:
Murgia, S.; Bonacchi,S.; Falchi, A. M.; Lampis, S.; Lippolis, V.; Meli, V.; Monduzzi, M.; Prodi, L.; Schmidt, J.; Talmon, Y.; Caltagirone, C. (2013): Флуоресцентные кубосомы, загруженные лекарственными веществами: универсальные наночастицы для потенциального применения в тераностике. Langmuir 29, 2013. 6673–6679.
Деккера брюкселленсис
Применение ультразвука:
Ультразвуковая инактивация Dekkera bruxellensis в воде
Рекомендуемый прибор:
UIP1500hd
Источник / научная статья:
Borthwick, K. A. J.; Coakley, W. T.; McDonnell, M. B.; Nowotny, H.; Benes, E.; Grfschl, .M (2005): Разработка нового компактного ультразвукового аппарата для разрушения клеток. J. Microbio. Meths. 60/2005. с. 207–216. / Lörincz, A. (2004): Ультразвуковое разрушение клеток дрожжей в водных суспензиях. Biosys. Eng. 89/ 2004. с. 297–308. / Tsukamoto, I.; Yim, B.; Stavarache, C. E.; Furuta, M.; Hashiba, K.; Maeda, Y. (2004): Инактивация Saccharomyces cerevisiae ультразвуковым облучением. Ultrason. Sonochem. 11/2004. с. 61–65.
Ультразвуковая инактивация Dekkera bruxellensis в воде
Рекомендуемый прибор:
UIP1500hd
Источник / научная статья:
Borthwick, K. A. J.; Coakley, W. T.; McDonnell, M. B.; Nowotny, H.; Benes, E.; Grfschl, .M (2005): Разработка нового компактного ультразвукового аппарата для разрушения клеток. J. Microbio. Meths. 60/2005. с. 207–216. / Lörincz, A. (2004): Ультразвуковое разрушение клеток дрожжей в водных суспензиях. Biosys. Eng. 89/ 2004. с. 297–308. / Tsukamoto, I.; Yim, B.; Stavarache, C. E.; Furuta, M.; Hashiba, K.; Maeda, Y. (2004): Инактивация Saccharomyces cerevisiae ультразвуковым облучением. Ultrason. Sonochem. 11/2004. с. 61–65.
Деккера/бреттаномицес брюкселленсис
Применение ультразвука:
Инактивация за 90–120 sec.
Рекомендуемый прибор:
UIP1500hd
Источник / научная статья:
см. выше
Инактивация за 90–120 sec.
Рекомендуемый прибор:
UIP1500hd
Источник / научная статья:
см. выше
ДНК
Применение ультразвука:
Фрагментация ДНК: обработка 100μL ультразвуком в течение 2 мин с помощью UP100H или обработка 100μL ультразвуком в течение 4 мин с помощью UTR200.
Рекомендуемый прибор:
UP100H, UTR200 или VialTweeter
Источник / научная статья:
Larguinho M. et al. (2010): Разработка быстрой и эффективной стратегии фрагментации ДНК на основе ультразвука.
Фрагментация ДНК: обработка 100μL ультразвуком в течение 2 мин с помощью UP100H или обработка 100μL ультразвуком в течение 4 мин с помощью UTR200.
Рекомендуемый прибор:
UP100H, UTR200 или VialTweeter
Источник / научная статья:
Larguinho M. et al. (2010): Разработка быстрой и эффективной стратегии фрагментации ДНК на основе ультразвука.
Клетки S2 Drosophila melanogaster
Применение ультразвука:
Экстракция клеточных белков из клеток Drosophila melanogaster S2: замороженные клетки S2 (1,56108) лизировали в 1 mL ледяного буфера для гомогенизации (100 mM Tris-HCl pH 7,5, 1% SDS) и оставляли на льду на 10 мин. Лизис клеток завершали обработкой ультразвуком на льду (6615 серий импульсов, импульс 0,5 с; интенсивность 75%) с помощью ультразвукового процессора Hielscher UP200S.
Рекомендуемый прибор:
UP200S (200W), интенсивность 75%; импульсный режим: 6615 серий импульсов, импульс 0,5 с.
Источник / научная статья:
Schwientek, T. et al. (2007): Последовательный лектиновый подход к O-гликопротеому муцинового типа клеток Drosophila melanogaster S2. Proteomics 7, 2007. с. 3264–3277.
Экстракция клеточных белков из клеток Drosophila melanogaster S2: замороженные клетки S2 (1,56108) лизировали в 1 mL ледяного буфера для гомогенизации (100 mM Tris-HCl pH 7,5, 1% SDS) и оставляли на льду на 10 мин. Лизис клеток завершали обработкой ультразвуком на льду (6615 серий импульсов, импульс 0,5 с; интенсивность 75%) с помощью ультразвукового процессора Hielscher UP200S.
Рекомендуемый прибор:
UP200S (200W), интенсивность 75%; импульсный режим: 6615 серий импульсов, импульс 0,5 с.
Источник / научная статья:
Schwientek, T. et al. (2007): Последовательный лектиновый подход к O-гликопротеому муцинового типа клеток Drosophila melanogaster S2. Proteomics 7, 2007. с. 3264–3277.
Производные E. coli
Применение ультразвука:
Разрушение клеток производных E. coli: замороженные осадки, соответствующие объёму образца Vculture = 4/OD mL, ресуспендировали в 580 μL 10 mM калий-фосфатного буфера pH 7, 1 mM EDTA. Добавляли 20 μL лизоцима (концентрация 1 g L-1) и инкубировали клеточную суспензию на льду примерно 30 мин. Затем клетки разрушали непрерывной обработкой ультразвуком с помощью ультразвукового аппарата (UP 200S, ультразвуковой процессор, Dr. Hielscher GmbH, Тельтов) на льду при амплитуде 50 % в течение 20 sec. Растворимые и нерастворимые клеточные фракции разделяли центрифугированием при 13 000 об/мин в течение 20 мин. Нерастворимые белки дважды промывали 10 mM калий-фосфатным буфером pH 7, 1 mM EDTA и хранили при –20°C.
Рекомендуемый прибор:
UP200S при амплитуде 50%
Источник / научная статья:
HA (2005): Оптимизация получения активного рекомбинантного белка: исследование влияния малых белков теплового шока Escherichia coli, IbpA и IbpB, на реактивацию телец включения in vivo.
Разрушение клеток производных E. coli: замороженные осадки, соответствующие объёму образца Vculture = 4/OD mL, ресуспендировали в 580 μL 10 mM калий-фосфатного буфера pH 7, 1 mM EDTA. Добавляли 20 μL лизоцима (концентрация 1 g L-1) и инкубировали клеточную суспензию на льду примерно 30 мин. Затем клетки разрушали непрерывной обработкой ультразвуком с помощью ультразвукового аппарата (UP 200S, ультразвуковой процессор, Dr. Hielscher GmbH, Тельтов) на льду при амплитуде 50 % в течение 20 sec. Растворимые и нерастворимые клеточные фракции разделяли центрифугированием при 13 000 об/мин в течение 20 мин. Нерастворимые белки дважды промывали 10 mM калий-фосфатным буфером pH 7, 1 mM EDTA и хранили при –20°C.
Рекомендуемый прибор:
UP200S при амплитуде 50%
Источник / научная статья:
HA (2005): Оптимизация получения активного рекомбинантного белка: исследование влияния малых белков теплового шока Escherichia coli, IbpA и IbpB, на реактивацию телец включения in vivo.
Антиген Echinococcus granulosus
Применение ультразвука:
Лизис и разрушение клеток: гомогенизированный образец растворимого белка зрелых E. granulosus, подготовленный замораживанием в жидком азоте и размораживанием при 42◦C, обрабатывали ультразвуком при 110V, 170W в течение 3×15 sec на льду. Затем образец центрифугировали в течение 15 мин при 10 000g. Концентрацию белка измеряли методом Брэдфорда, а образец хранили при -20◦C.
Рекомендуемый прибор:
UP200S; 170W, охлаждение на льду; 3 x 15 sec.
Источник / научная статья:
Tabar et al. (2010): Серодиагностика гидатидоза овец с использованием гидатидной жидкости, протосколекса и антигена целого тела Echinococcus granulosus.
Лизис и разрушение клеток: гомогенизированный образец растворимого белка зрелых E. granulosus, подготовленный замораживанием в жидком азоте и размораживанием при 42◦C, обрабатывали ультразвуком при 110V, 170W в течение 3×15 sec на льду. Затем образец центрифугировали в течение 15 мин при 10 000g. Концентрацию белка измеряли методом Брэдфорда, а образец хранили при -20◦C.
Рекомендуемый прибор:
UP200S; 170W, охлаждение на льду; 3 x 15 sec.
Источник / научная статья:
Tabar et al. (2010): Серодиагностика гидатидоза овец с использованием гидатидной жидкости, протосколекса и антигена целого тела Echinococcus granulosus.
Грамотрицательные Escherichia coli
Применение ультразвука:
Ультразвуковая инактивация Escherchia coli Gr- в молоке и соках.
Рекомендуемый прибор:
UP100H
Источник / научная статья:
Zenker, M.; Heinz, V.; Knorr, D. (2003): Применение термической обработки с содействием ультразвука для консервирования и сохранения качества жидких пищевых продуктов. J Food Prot 66/2003. с. 1642–1649.
Ультразвуковая инактивация Escherchia coli Gr- в молоке и соках.
Рекомендуемый прибор:
UP100H
Источник / научная статья:
Zenker, M.; Heinz, V.; Knorr, D. (2003): Применение термической обработки с содействием ультразвука для консервирования и сохранения качества жидких пищевых продуктов. J Food Prot 66/2003. с. 1642–1649.
Грамотрицательные Escherichia coli в физиологическом растворе
Применение ультразвука:
Ультразвуковая инактивация Escherchia coli Gr- в солевом растворе.
Рекомендуемый прибор:
UP100H
Источник / научная статья:
Duckhouse, H.; Mason, T. J.; Phull, S. S.; Lorimer, J. P. (2004): Влияние обработки ультразвуком на микробную дезинфекцию с использованием гипохлорита. Ultrason. Sonochem. 11/ 2004. с. 173–176.
Ультразвуковая инактивация Escherchia coli Gr- в солевом растворе.
Рекомендуемый прибор:
UP100H
Источник / научная статья:
Duckhouse, H.; Mason, T. J.; Phull, S. S.; Lorimer, J. P. (2004): Влияние обработки ультразвуком на микробную дезинфекцию с использованием гипохлорита. Ultrason. Sonochem. 11/ 2004. с. 173–176.
Грамотрицательные Escherichia coli в воде
Применение ультразвука:
Ультразвуковая инактивация Escherchia coli Gr- в воде.
Рекомендуемый прибор:
UP100H
Источник / научная статья:
Furuta, M.; Yamaguchi, M.; Tsukamoto, T.; Yim, B.; Stavarache, C. E.; Hasiba, K.; Maeda, Y. (2004): Инактивация Escherichia coli ультразвуковым облучением. Ultrason. Sonochem. 11/2004. с. 57–60.
Ультразвуковая инактивация Escherchia coli Gr- в воде.
Рекомендуемый прибор:
UP100H
Источник / научная статья:
Furuta, M.; Yamaguchi, M.; Tsukamoto, T.; Yim, B.; Stavarache, C. E.; Hasiba, K.; Maeda, Y. (2004): Инактивация Escherichia coli ультразвуковым облучением. Ultrason. Sonochem. 11/2004. с. 57–60.
Глаукома, диск зрительного нерва
Применение ультразвука:
Фрагментация РНК дисков зрительного нерва (из глаз крыс): диск зрительного нерва (ONH) замораживали на сухом льду и хранили при 80°C до экстракции. РНК выделяли обработкой замороженных дисков зрительного нерва ультразвуком в экстракционном буфере из набора с помощью зонда MS 0.5 (UP50H), после чего следовали инструкции набора Arcturus, включая обработку ДНКазой для удаления всей ДНК. Количественно определяли очищенную РНК.
Рекомендуемый прибор:
UP50H с зондом MS0.5
Источник / научная статья:
Johnson et al. (2007): Глобальные изменения экспрессии генов в диске зрительного нерва после воздействия повышенного внутриглазного давления на модели глаукомы у крыс.
Фрагментация РНК дисков зрительного нерва (из глаз крыс): диск зрительного нерва (ONH) замораживали на сухом льду и хранили при 80°C до экстракции. РНК выделяли обработкой замороженных дисков зрительного нерва ультразвуком в экстракционном буфере из набора с помощью зонда MS 0.5 (UP50H), после чего следовали инструкции набора Arcturus, включая обработку ДНКазой для удаления всей ДНК. Количественно определяли очищенную РНК.
Рекомендуемый прибор:
UP50H с зондом MS0.5
Источник / научная статья:
Johnson et al. (2007): Глобальные изменения экспрессии генов в диске зрительного нерва после воздействия повышенного внутриглазного давления на модели глаукомы у крыс.
Гликозаминогликан хондроитинсульфат (CS)
Применение ультразвука:
Определение CS методом с диметилметиленовым синим
Ресуспендирование клеток: осадки CS в микроцентрифужных пробирках ресуспендировали в 0,5 ml раствора папаина с концентрацией 0,1mg/ml в сбалансированном солевом растворе Хэнкса (HBSS), используя импульсы ультразвукового излучателя (UP 100H, Hielscher Ultrasonics GmbH, Германия) при доле времени включения ультразвука в периоде 1 и амплитуде 100 % в течение 3 sec. Затем проводили расщепление при 60 °C в течение 24 ч.
Для иммуноферментного анализа (ELISA) клетки затем суспендировали в дистиллированной и деионизированной воде при концентрации 106 клеток/ml и оставляли в морозильной камере при –70°C на ночь для облегчения лизиса клеток. После этого клетки гомогенизировали обработкой ультразвуком в течение 40 sec с помощью ультразвукового гомогенизатора тканей Hielscher UP100H.
Рекомендуемый прибор:
UP100H
Источник / научная статья:
Vandrovcova et al. (2011): Влияние покрытий из коллагена и хондроитинсульфата (CS) на поли(лактид-со-гликолиде) (PLGA) на остеобластоподобные клетки MG 63. Physiol. Res. 60; 2011. 797–813.
Определение CS методом с диметилметиленовым синим
Ресуспендирование клеток: осадки CS в микроцентрифужных пробирках ресуспендировали в 0,5 ml раствора папаина с концентрацией 0,1mg/ml в сбалансированном солевом растворе Хэнкса (HBSS), используя импульсы ультразвукового излучателя (UP 100H, Hielscher Ultrasonics GmbH, Германия) при доле времени включения ультразвука в периоде 1 и амплитуде 100 % в течение 3 sec. Затем проводили расщепление при 60 °C в течение 24 ч.
Для иммуноферментного анализа (ELISA) клетки затем суспендировали в дистиллированной и деионизированной воде при концентрации 106 клеток/ml и оставляли в морозильной камере при –70°C на ночь для облегчения лизиса клеток. После этого клетки гомогенизировали обработкой ультразвуком в течение 40 sec с помощью ультразвукового гомогенизатора тканей Hielscher UP100H.
Рекомендуемый прибор:
UP100H
Источник / научная статья:
Vandrovcova et al. (2011): Влияние покрытий из коллагена и хондроитинсульфата (CS) на поли(лактид-со-гликолиде) (PLGA) на остеобластоподобные клетки MG 63. Physiol. Res. 60; 2011. 797–813.
Клетки HaCaT
Применение ультразвука:
Лизис клеток HaCaT для иммунопреципитации хроматина (ChIP): клетки HaCaT фиксировали 1% формальдегидом в течение 10 минут при 37uC. Фиксированные клетки лизировали в буфере RIPA и обрабатывали ультразвуком на льду с помощью ультразвукового прибора мощностью 100W при амплитуде = 1 и доле времени включения ультразвука в периоде = 100%, используя 12 одноминутных (12 x 1 мин) импульсов.
Рекомендуемый прибор:
UP100H; в течение 12 мин на льду,
Источник / научная статья:
Zhang et al. (2007): Базонуклин регулирует подмножество генов рибосомной РНК в клетках HaCaT.
Лизис клеток HaCaT для иммунопреципитации хроматина (ChIP): клетки HaCaT фиксировали 1% формальдегидом в течение 10 минут при 37uC. Фиксированные клетки лизировали в буфере RIPA и обрабатывали ультразвуком на льду с помощью ультразвукового прибора мощностью 100W при амплитуде = 1 и доле времени включения ультразвука в периоде = 100%, используя 12 одноминутных (12 x 1 мин) импульсов.
Рекомендуемый прибор:
UP100H; в течение 12 мин на льду,
Источник / научная статья:
Zhang et al. (2007): Базонуклин регулирует подмножество генов рибосомной РНК в клетках HaCaT.
Гепарин: деполимеризация гепарина
Применение ультразвука:
Ультразвуковой метод позволяет получать низкомолекулярный гепарин (LMWH). Для этого гепарин подвергают радикальной деполимеризации, катализируемой перекисью водорода. Реакция протекает очень быстро и занимает менее 1 часа, при этом физико-химический процесс деполимеризации основан на мягких условиях реакции, не требует агрессивных или токсичных реагентов и обеспечивает получение продукта без химических артефактов. Таким образом, ультразвуковой процесс хорошо подходит для крупномасштабного производства LMWH, а также аналогов, получаемых из природных сульфатированных полисахаридов.
Процедура обработки ультразвуком:
Для физико-химической деполимеризации нефракционированного гепарина посредством радикальной деполимеризации с применением ультразвука гепарин растворяли в воде до конечной концентрации 25 mg/mL (5 mL). Реакционную смесь обрабатывали ультразвуком с помощью ультразвукового аппарата зондового типа UP50H. Ультразвуковой аппарат был оснащён зондом (микронаконечник MS3) диаметром 3mm, обеспечивавшим амплитуду 180μm. Процессор генерировал механические продольные колебания с частотой 30 kHz посредством электрического возбуждения. Реакционную смесь поддерживали при 60°C в реакторе Radleys®, а ультразвуковые волны подавали в виде импульсов длительностью 0,5 sec для предотвращения нагрева смеси. До запуска реакции одновременным добавлением перекиси водорода и воздействием ультразвуковых волн из раствора отбирали аликвоту нулевого времени (250μl). Перекись водорода добавляли для получения конечного соотношения перекись водорода/гепарин (w/w) 0,15 (3,75 mg/mL).
Рекомендуемый прибор:
UP50H с сонотродом MS3
Источник / научная статья:
Achour, Oussama; Bridiau, Nicolas; Godhbani, Azza; Le Joubioux, Florian; Bordenave Juchereau, Stephanie; Sannier, Fredéric; Piot, Jean-Marie; Fruitier Arnaudin, Ingrid; Maugard, Thierry (2013): Получение низкомолекулярного гепарина (LMWH) с антикоагулянтной активностью с применением ультразвука. Carbohydrate Polymers 97; 2013. 684–689.
Ультразвуковой метод позволяет получать низкомолекулярный гепарин (LMWH). Для этого гепарин подвергают радикальной деполимеризации, катализируемой перекисью водорода. Реакция протекает очень быстро и занимает менее 1 часа, при этом физико-химический процесс деполимеризации основан на мягких условиях реакции, не требует агрессивных или токсичных реагентов и обеспечивает получение продукта без химических артефактов. Таким образом, ультразвуковой процесс хорошо подходит для крупномасштабного производства LMWH, а также аналогов, получаемых из природных сульфатированных полисахаридов.
Процедура обработки ультразвуком:
Для физико-химической деполимеризации нефракционированного гепарина посредством радикальной деполимеризации с применением ультразвука гепарин растворяли в воде до конечной концентрации 25 mg/mL (5 mL). Реакционную смесь обрабатывали ультразвуком с помощью ультразвукового аппарата зондового типа UP50H. Ультразвуковой аппарат был оснащён зондом (микронаконечник MS3) диаметром 3mm, обеспечивавшим амплитуду 180μm. Процессор генерировал механические продольные колебания с частотой 30 kHz посредством электрического возбуждения. Реакционную смесь поддерживали при 60°C в реакторе Radleys®, а ультразвуковые волны подавали в виде импульсов длительностью 0,5 sec для предотвращения нагрева смеси. До запуска реакции одновременным добавлением перекиси водорода и воздействием ультразвуковых волн из раствора отбирали аликвоту нулевого времени (250μl). Перекись водорода добавляли для получения конечного соотношения перекись водорода/гепарин (w/w) 0,15 (3,75 mg/mL).
Рекомендуемый прибор:
UP50H с сонотродом MS3
Источник / научная статья:
Achour, Oussama; Bridiau, Nicolas; Godhbani, Azza; Le Joubioux, Florian; Bordenave Juchereau, Stephanie; Sannier, Fredéric; Piot, Jean-Marie; Fruitier Arnaudin, Ingrid; Maugard, Thierry (2013): Получение низкомолекулярного гепарина (LMWH) с антикоагулянтной активностью с применением ультразвука. Carbohydrate Polymers 97; 2013. 684–689.
Хмель
Применение ультразвука:
Экстракция активных соединений / растительных экстрактов в воде и этаноле.
Рекомендуемый прибор:
UP400S
Экстракция активных соединений / растительных экстрактов в воде и этаноле.
Рекомендуемый прибор:
UP400S
Лактобациллы (лизис и выделение ДНК различных штаммов лактобацилл)
Применение ультразвука:
Штаммы Lactobacillus: L. pontis, L. sanfranciscensis, L. farciminis, L. panis, L. oris, L. vaginalis и L. reuteri, L. sp.
Процедура: для выделения ДНК из отдельных колоний был разработан протокол ультразвукового лизиса. Одну колонию (диаметром 2–3 mm) суспендировали в 100μl буфера для лизиса (20 mM EDTA, 10 mM Tris [pH 7,9], 1% Triton X-100, 500 mM гуанидин-HCl, 250 mM NaCl). Клетки лизировали обработкой ультразвуком в течение 1 мин с помощью ультразвукового аппарата зондового типа UP50H. После добавления 150μl холодного этанола (-20°C) смесь центрифугировали в спин-колонке набора QIAamp для тканей и в конце элюировали 60μl буфера (10 mM Tris [pH 7,5]).
Для быстрого и надёжного определения отдельных чистых культур ПЦР-анализ сочетали с процедурой быстрого выделения ДНК. Трудоёмкие процедуры ферментативного лизиса и различную чувствительность бактерий к лизоциму преодолевали обработкой клеток ультразвуком с последующей очисткой и концентрированием путём связывания ДНК с матрицей из диоксида кремния. Было установлено, что клеточного материала одной колонии достаточно для ПЦР.
Рекомендуемый прибор:
UP50H
Источник / научная статья:
Müller, M. R. A. (2000): Характеристика микробной экосистемы при ферментации зерновых с использованием молекулярно-биологических методов. Диссертация, Кёльнский университет, 2000.
Штаммы Lactobacillus: L. pontis, L. sanfranciscensis, L. farciminis, L. panis, L. oris, L. vaginalis и L. reuteri, L. sp.
Процедура: для выделения ДНК из отдельных колоний был разработан протокол ультразвукового лизиса. Одну колонию (диаметром 2–3 mm) суспендировали в 100μl буфера для лизиса (20 mM EDTA, 10 mM Tris [pH 7,9], 1% Triton X-100, 500 mM гуанидин-HCl, 250 mM NaCl). Клетки лизировали обработкой ультразвуком в течение 1 мин с помощью ультразвукового аппарата зондового типа UP50H. После добавления 150μl холодного этанола (-20°C) смесь центрифугировали в спин-колонке набора QIAamp для тканей и в конце элюировали 60μl буфера (10 mM Tris [pH 7,5]).
Для быстрого и надёжного определения отдельных чистых культур ПЦР-анализ сочетали с процедурой быстрого выделения ДНК. Трудоёмкие процедуры ферментативного лизиса и различную чувствительность бактерий к лизоциму преодолевали обработкой клеток ультразвуком с последующей очисткой и концентрированием путём связывания ДНК с матрицей из диоксида кремния. Было установлено, что клеточного материала одной колонии достаточно для ПЦР.
Рекомендуемый прибор:
UP50H
Источник / научная статья:
Müller, M. R. A. (2000): Характеристика микробной экосистемы при ферментации зерновых с использованием молекулярно-биологических методов. Диссертация, Кёльнский университет, 2000.
Лактобацилла ацидофильная, Гр+
Применение ультразвука:
Ультразвуковая инактивация Lactobacillus acidophilus Gr+ в молоке и соках.
Рекомендуемый прибор:
UIP500hd
Источник / научная статья:
Zenker, M.; Heinz, V.; Knorr, D. (2003): Применение термической обработки с содействием ультразвука для консервирования и сохранения качества жидких пищевых продуктов. J Food Prot 66/2003. с. 1642–1649.
Ультразвуковая инактивация Lactobacillus acidophilus Gr+ в молоке и соках.
Рекомендуемый прибор:
UIP500hd
Источник / научная статья:
Zenker, M.; Heinz, V.; Knorr, D. (2003): Применение термической обработки с содействием ультразвука для консервирования и сохранения качества жидких пищевых продуктов. J Food Prot 66/2003. с. 1642–1649.
Легионелла пневмофила, Гр+, в разбавленной среде
Применение ультразвука:
Ультразвуковая инактивация Legionella pneumophila Gr+ в разбавленной среде.
Рекомендуемый прибор:
UIP500hd
Источник / научная статья:
Dadjour, M. F.; Ogino, C.; Matsumura, S.; Nakamura, S.; Shimizu N. (2006): Дезинфекция Legionella pneumophila обработкой ультразвуком с TiO2. Water Res 40/2006. с.1137–1142.
Ультразвуковая инактивация Legionella pneumophila Gr+ в разбавленной среде.
Рекомендуемый прибор:
UIP500hd
Источник / научная статья:
Dadjour, M. F.; Ogino, C.; Matsumura, S.; Nakamura, S.; Shimizu N. (2006): Дезинфекция Legionella pneumophila обработкой ультразвуком с TiO2. Water Res 40/2006. с.1137–1142.
Лейконосток мезентероидес
Применение ультразвука:
Активность лизоцима лейкоцитов при миелоцитарном лейкозе: клеточную суспензию обрабатывали ультразвуком в течение 15 мин и исследовали образцы на активность лизоцима. Определяли концентрацию лизоцима в лейкоцитах в ug./10 клеток.
Рекомендуемый прибор:
UP50H
Активность лизоцима лейкоцитов при миелоцитарном лейкозе: клеточную суспензию обрабатывали ультразвуком в течение 15 мин и исследовали образцы на активность лизоцима. Определяли концентрацию лизоцима в лейкоцитах в ug./10 клеток.
Рекомендуемый прибор:
UP50H
Активность изоферментов лейкоцитов при миелоцитарном лейкозе
Применение ультразвука:
Подготовка образцов: клеточную суспензию обрабатывали ультразвуком и исследовали образцы на активность лизоцима. Определяли концентрацию лизоцима в лейкоцитах в ug/106.
Рекомендуемый прибор:
UP200St
Подготовка образцов: клеточную суспензию обрабатывали ультразвуком и исследовали образцы на активность лизоцима. Определяли концентрацию лизоцима в лейкоцитах в ug/106.
Рекомендуемый прибор:
UP200St
Липосомы
Применение ультразвука:
Формирование малых однослойных везикул (SUVs)
Нажмите здесь, чтобы узнать больше об ультразвуковом получении липосом!
Рекомендуемый прибор:
UP50H; 3 цикла по 5 мин; в ледяной бане.
Формирование малых однослойных везикул (SUVs)
Нажмите здесь, чтобы узнать больше об ультразвуковом получении липосом!
Рекомендуемый прибор:
UP50H; 3 цикла по 5 мин; в ледяной бане.
Малахитовый зелёный
Применение ультразвука:
Сонофотокаталитическое разложение малахитового зелёного (сильного бактерицидного вещества): только фотокаталитическое разложение протекает значительно быстрее, чем сонолитическое разложение; эффективность можно повысить, сочетая эти два процесса. Малахитовый зелёный, сильное бактерицидное вещество, обладает очень высокой экотоксичностью для морских бактерий, однако превращается в органические вещества с меньшей токсичностью или без токсичности.
Рекомендуемый прибор:
UP400S
Сонофотокаталитическое разложение малахитового зелёного (сильного бактерицидного вещества): только фотокаталитическое разложение протекает значительно быстрее, чем сонолитическое разложение; эффективность можно повысить, сочетая эти два процесса. Малахитовый зелёный, сильное бактерицидное вещество, обладает очень высокой экотоксичностью для морских бактерий, однако превращается в органические вещества с меньшей токсичностью или без токсичности.
Рекомендуемый прибор:
UP400S
Ацилирование мангиферина
Применение ультразвука:
Мангиферин (1,3,6,7-Tetrahydroxy-2-[3,4,5-trihydroxy-6-(hydroxymethyl)oxan-2-yl]xanthen-9-one; формула: C19H18O11) – полифенол со структурой C-гликозилксантона, встречающийся во многих видах растений. Мангиферин проявляет различные виды фармакологической активности. Региоселективное ацилирование мангиферина может очень эффективно катализироваться липазой при обработке ультразвуком. По сравнению с традиционными методами катализ с применением ультразвука отличается такими преимуществами, как более короткое время реакции и более высокий выход. Были установлены следующие оптимальные условия ультразвукового ацилирования мангиферина:
липаза: PCL, донор ацильной группы: винилацетат; растворитель реакции: DMSO, температура реакции: 45 degC, мощность ультразвука: 200W; соотношение субстратов: донор ацильной группы/мангиферин 6/1, загрузка фермента: 6 mg/ml
Выход региоселективного ацилирования достигал 84%.
Рекомендуемый прибор:
UP200St или UP200Ht
Источник / научная статья:
ср.: Wang, Z.; Wang, R.; Tian, J.; Zhao, B; Wei, X.F.; Su, Y.L.; Li, C.Y.; Cao, S.G.; Wang, L. (2010): Влияние ультразвука на катализируемое липазой региоселективное ацилирование мангиферина в неводных растворителях. J. Asian Nat Prod. Res. 12/1, 2010. 56–63.
Мангиферин (1,3,6,7-Tetrahydroxy-2-[3,4,5-trihydroxy-6-(hydroxymethyl)oxan-2-yl]xanthen-9-one; формула: C19H18O11) – полифенол со структурой C-гликозилксантона, встречающийся во многих видах растений. Мангиферин проявляет различные виды фармакологической активности. Региоселективное ацилирование мангиферина может очень эффективно катализироваться липазой при обработке ультразвуком. По сравнению с традиционными методами катализ с применением ультразвука отличается такими преимуществами, как более короткое время реакции и более высокий выход. Были установлены следующие оптимальные условия ультразвукового ацилирования мангиферина:
липаза: PCL, донор ацильной группы: винилацетат; растворитель реакции: DMSO, температура реакции: 45 degC, мощность ультразвука: 200W; соотношение субстратов: донор ацильной группы/мангиферин 6/1, загрузка фермента: 6 mg/ml
Выход региоселективного ацилирования достигал 84%.
Рекомендуемый прибор:
UP200St или UP200Ht
Источник / научная статья:
ср.: Wang, Z.; Wang, R.; Tian, J.; Zhao, B; Wei, X.F.; Su, Y.L.; Li, C.Y.; Cao, S.G.; Wang, L. (2010): Влияние ультразвука на катализируемое липазой региоселективное ацилирование мангиферина в неводных растворителях. J. Asian Nat Prod. Res. 12/1, 2010. 56–63.
Экстракция молекул
Применение ультразвука:
Протокол экстракции из гипса, rheolite, базальта, пепла edfell и обсидианового стекла:
Образец реголита или измельчённой горной породы массой 1g подвергают жидкостной экстракции под воздействием ультразвукового облучения для извлечения и солюбилизации целевых молекул. Для этого к 1g образца-аналога в стеклянной пробирке добавляли 3ml MeOH P80 и обрабатывали ультразвуком в течение 20 минут с помощью ультразвукового прибора зондового типа UP50H при установленной амплитуде 40%. Смесь оставляли на 10 минут, а мутный супернатант, образовавшийся над осевшим образцом-аналогом, декантировали в центрифужные пробирки объёмом 1,5 ml. Чтобы свести к минимуму потери экстрагированных компонентов вследствие адсорбции на поверхности гидрофобных полимерных центрифужных пробирок, пробирки предварительно блокировали 0,5% (w/v) BSA в 100 mM HEPES pH 7,4. Супернатанты осветляли центрифугированием при 17 000 G в течение 10 минут и хранили при 2 – 8°C в стеклянных флаконах до проведения иммуноанализа.
Рекомендуемый прибор:
UP50H
Источник / научная статья:
Rix, C.(2012): Обнаружение жизни на Марсе и чип маркеров жизни: анализы с использованием антител для обнаружения органических молекул в жидких экстрактах марсианских образцов. Диссертация, Крэнфилдский университет, 2012.
Протокол экстракции из гипса, rheolite, базальта, пепла edfell и обсидианового стекла:
Образец реголита или измельчённой горной породы массой 1g подвергают жидкостной экстракции под воздействием ультразвукового облучения для извлечения и солюбилизации целевых молекул. Для этого к 1g образца-аналога в стеклянной пробирке добавляли 3ml MeOH P80 и обрабатывали ультразвуком в течение 20 минут с помощью ультразвукового прибора зондового типа UP50H при установленной амплитуде 40%. Смесь оставляли на 10 минут, а мутный супернатант, образовавшийся над осевшим образцом-аналогом, декантировали в центрифужные пробирки объёмом 1,5 ml. Чтобы свести к минимуму потери экстрагированных компонентов вследствие адсорбции на поверхности гидрофобных полимерных центрифужных пробирок, пробирки предварительно блокировали 0,5% (w/v) BSA в 100 mM HEPES pH 7,4. Супернатанты осветляли центрифугированием при 17 000 G в течение 10 минут и хранили при 2 – 8°C в стеклянных флаконах до проведения иммуноанализа.
Рекомендуемый прибор:
UP50H
Источник / научная статья:
Rix, C.(2012): Обнаружение жизни на Марсе и чип маркеров жизни: анализы с использованием антител для обнаружения органических молекул в жидких экстрактах марсианских образцов. Диссертация, Крэнфилдский университет, 2012.
Осадки ткани печени мыши
Применение ультразвука:
Осадки промывали и обрабатывали ультразвуком в течение 5 мин с дополнительными 0,5 mL LB2, затем центрифугировали при 12 000 g ещё 20 мин и собирали две полученные фракции супернатанта. В конце осадки растворяли в 0,5 mL буфера, содержащего 40 mM основания Tris, 5 M мочевины, 2 M тиомочевины, 4% CHAPS, 100 mM DTT, 0,5% (v/v) biolyte 3-10 (LB3), обрабатывали ультразвуком и центрифугировали при 12 000 g в течение 20 мин.
Рекомендуемый прибор:
UP200S; в течение 5 мин.
Источник / научная статья:
Gazzana et al. (2009): Обновлённые данные о протеоме печени мыши.
Осадки промывали и обрабатывали ультразвуком в течение 5 мин с дополнительными 0,5 mL LB2, затем центрифугировали при 12 000 g ещё 20 мин и собирали две полученные фракции супернатанта. В конце осадки растворяли в 0,5 mL буфера, содержащего 40 mM основания Tris, 5 M мочевины, 2 M тиомочевины, 4% CHAPS, 100 mM DTT, 0,5% (v/v) biolyte 3-10 (LB3), обрабатывали ультразвуком и центрифугировали при 12 000 g в течение 20 мин.
Рекомендуемый прибор:
UP200S; в течение 5 мин.
Источник / научная статья:
Gazzana et al. (2009): Обновлённые данные о протеоме печени мыши.
Суспензия ткани печени мыши
Применение ультразвука:
Гомогенизация образца для получения клеточного лизата.
Рекомендуемый прибор:
UP200S; в течение 3 x 20 sec.
Источник / научная статья:
Gazzana et al. (2009): Обновлённые данные о протеоме печени мыши.
Гомогенизация образца для получения клеточного лизата.
Рекомендуемый прибор:
UP200S; в течение 3 x 20 sec.
Источник / научная статья:
Gazzana et al. (2009): Обновлённые данные о протеоме печени мыши.
Пенициллиум дигитатум
Применение ультразвука:
Ультразвуковая инактивация Penicillium digitatum (патогена растений) в питательной среде Сабуро.
Рекомендуемый прибор:
UP200St
Источник / научная статья:
López-Malo, A.; Palou, E.; Jiménez-Fernández, M.; Alzamora, S. M.; Guerrero, S. (2005): Многофакторная инактивация грибов с сочетанием термосоникации и антимикробных средств. J. Food Eng. 67/ 2005. с. 87–93.
Ультразвуковая инактивация Penicillium digitatum (патогена растений) в питательной среде Сабуро.
Рекомендуемый прибор:
UP200St
Источник / научная статья:
López-Malo, A.; Palou, E.; Jiménez-Fernández, M.; Alzamora, S. M.; Guerrero, S. (2005): Многофакторная инактивация грибов с сочетанием термосоникации и антимикробных средств. J. Food Eng. 67/ 2005. с. 87–93.
Фикоцианин из спирулины платенсис (артроспиры платенсис)
Применение ультразвука:
Экстракция фикоцианина из клеток Spirulina platensis (Arthrospira platensis).
Рекомендуемый прибор:
UP400S
Экстракция фикоцианина из клеток Spirulina platensis (Arthrospira platensis).
Рекомендуемый прибор:
UP400S
Растительные клетки и ткани
Применение ультразвука:
30% уплотнённых растительных клеток (W/V) с дистиллированной водой подвергают разрушению обработкой ультразвуком в течение 1–15 мин; разрушение растительной ткани: 1 g высушенной ткани, суспендированной в спирте, разрушают обработкой ультразвуком в течение примерно 5 мин.
Рекомендуемый прибор:
UP100H
30% уплотнённых растительных клеток (W/V) с дистиллированной водой подвергают разрушению обработкой ультразвуком в течение 1–15 мин; разрушение растительной ткани: 1 g высушенной ткани, суспендированной в спирте, разрушают обработкой ультразвуком в течение примерно 5 мин.
Рекомендуемый прибор:
UP100H
Тромбоциты
Применение ультразвука:
Подготовка лизата тромбоцитов: разрушение за 1–5 мин.
Рекомендуемый прибор:
UP200Ht
Подготовка лизата тромбоцитов: разрушение за 1–5 мин.
Рекомендуемый прибор:
UP200Ht
Плевротус туберрегиум
Применение ультразвука:
Экстракция полисахаридов из съедобного гриба Pleurotus tuberregium
Рекомендуемый прибор:
UP400S
Экстракция полисахаридов из съедобного гриба Pleurotus tuberregium
Рекомендуемый прибор:
UP400S
Сополимер молочной и гликолевой кислот (PLGA)
Применение ультразвука:
Получение сополимера молочной и гликолевой кислот (PLGA), загруженного бычьим сывороточным альбумином (BSA), обработкой ультразвуком за 40 sec.
Рекомендуемый прибор:
Dmini; в течение 40 sec.
Источник / научная статья:
Freitas et al. (2005): Проточное ультразвуковое эмульгирование в сочетании со статическим микросмешиванием для асептического получения микросфер методом экстракции растворителя.
Получение сополимера молочной и гликолевой кислот (PLGA), загруженного бычьим сывороточным альбумином (BSA), обработкой ультразвуком за 40 sec.
Рекомендуемый прибор:
Dmini; в течение 40 sec.
Источник / научная статья:
Freitas et al. (2005): Проточное ультразвуковое эмульгирование в сочетании со статическим микросмешиванием для асептического получения микросфер методом экстракции растворителя.
Полифенолы из яблок
Применение ультразвука:
Ультразвуковая экстракция полифенолов из яблока. Растворитель: водный. Увеличение выхода на 6%; интенсивность обработки ультразвуком: 20–75Ws/ml; температура процесса: нагрев до 80 degC.
Рекомендуемый прибор:
UIP2000hd
Источник / научная статья:
Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ультразвуковое извлечение и модификация пищевых ингредиентов. В: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ультразвуковые технологии для пищевой и биотехнологической переработки. New York: Springer, 2011. с. 345–368.
Ультразвуковая экстракция полифенолов из яблока. Растворитель: водный. Увеличение выхода на 6%; интенсивность обработки ультразвуком: 20–75Ws/ml; температура процесса: нагрев до 80 degC.
Рекомендуемый прибор:
UIP2000hd
Источник / научная статья:
Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ультразвуковое извлечение и модификация пищевых ингредиентов. В: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ультразвуковые технологии для пищевой и биотехнологической переработки. New York: Springer, 2011. с. 345–368.
Полифенолы из чёрного чая
Применение ультразвука:
Ультразвуковая экстракция полифенолов из чёрного чая. Растворитель: водный. Увеличение выхода на 6–18%; интенсивность обработки ультразвуком: 8–10Ws/ml; атмосферное давление, температура процесса: нагрев до 90 degC.
Рекомендуемый прибор:
UIP2000hd
Источник / научная статья:
Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ультразвуковое извлечение и модификация пищевых ингредиентов. В: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ультразвуковые технологии для пищевой и биотехнологической переработки. New York: Springer, 2011. с. 345–368.
Ультразвуковая экстракция полифенолов из чёрного чая. Растворитель: водный. Увеличение выхода на 6–18%; интенсивность обработки ультразвуком: 8–10Ws/ml; атмосферное давление, температура процесса: нагрев до 90 degC.
Рекомендуемый прибор:
UIP2000hd
Источник / научная статья:
Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ультразвуковое извлечение и модификация пищевых ингредиентов. В: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ультразвуковые технологии для пищевой и биотехнологической переработки. New York: Springer, 2011. с. 345–368.
Полифенолы из выжимок красного винограда
Применение ультразвука:
Ультразвуковая экстракция полифенолов из выжимок красного винограда. Растворитель: водный. Увеличение выхода на 11–35%; интенсивность обработки ультразвуком: 20–75Ws/ml; атмосферное давление.
Рекомендуемый прибор:
UIP2000hd
Источник / научная статья:
Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ультразвуковое извлечение и модификация пищевых ингредиентов. В: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ультразвуковые технологии для пищевой и биотехнологической переработки. New York: Springer, 2011. с. 345–368.
Ультразвуковая экстракция полифенолов из выжимок красного винограда. Растворитель: водный. Увеличение выхода на 11–35%; интенсивность обработки ультразвуком: 20–75Ws/ml; атмосферное давление.
Рекомендуемый прибор:
UIP2000hd
Источник / научная статья:
Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ультразвуковое извлечение и модификация пищевых ингредиентов. В: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ультразвуковые технологии для пищевой и биотехнологической переработки. New York: Springer, 2011. с. 345–368.
Полифенолы, аминокислота и кофеин из зелёного чая
Применение ультразвука:
Экстракция активных соединений из зелёного чая в воде
Рекомендуемый прибор:
UP400S
Экстракция активных соединений из зелёного чая в воде
Рекомендуемый прибор:
UP400S
Свинина: посол корейки в рассоле
Применение ультразвука:
Для посола с применением ультразвука свиную корейку (Longissimus dorsi) погружали в рассол хлорида натрия (40 g L−1) и обрабатывали при 5°C низкочастотным ультразвуком (20 kHz) низкой интенсивности (2–4 W/cm−2). Исследовали влияние посола с применением ультразвука на микроструктуру свиной ткани, денатурацию белков, водосвязывающую способность (WBC), водоудерживающую способность (WHC), коэффициент диффузии хлорида натрия (D) и профиль текстуры мяса (TPA). Результаты показали, что обработка ультразвуком вызывала благоприятные микроструктурные изменения в мясной ткани. Обработка ультразвуком улучшала водоудерживающую способность и текстурные свойства по сравнению как с образцами, подвергнутыми тумблированию, так и с образцами, посоленными в статических условиях. Однако эти положительные эффекты сильно зависели от интенсивности ультразвука. Более высокая интенсивность и/или более длительная обработка вызывали денатурацию белков. Модель с постоянным коэффициентом диффузии позволяла точно описывать кинетику диффузии NaCl при посоле. Обработка ультразвуком значительно усиливала диффузию соли по сравнению с образцами, посоленными в статических условиях, а коэффициент диффузии экспоненциально возрастал с увеличением интенсивности ультразвука.
Рекомендуемый прибор:
UP200Ht с сонотродом S26d40
Источник / научная статья:
Siro, I.; Ven, Cs.; Balla, Cs.; Jonas, G.; Zeke, I.; Friedrich, L. (2009): Применение технологии посола с использованием ультразвука для улучшения диффузии хлорида натрия в свинине. Журнал пищевой инженерии 91/2, 2009. 353–362.
Для посола с применением ультразвука свиную корейку (Longissimus dorsi) погружали в рассол хлорида натрия (40 g L−1) и обрабатывали при 5°C низкочастотным ультразвуком (20 kHz) низкой интенсивности (2–4 W/cm−2). Исследовали влияние посола с применением ультразвука на микроструктуру свиной ткани, денатурацию белков, водосвязывающую способность (WBC), водоудерживающую способность (WHC), коэффициент диффузии хлорида натрия (D) и профиль текстуры мяса (TPA). Результаты показали, что обработка ультразвуком вызывала благоприятные микроструктурные изменения в мясной ткани. Обработка ультразвуком улучшала водоудерживающую способность и текстурные свойства по сравнению как с образцами, подвергнутыми тумблированию, так и с образцами, посоленными в статических условиях. Однако эти положительные эффекты сильно зависели от интенсивности ультразвука. Более высокая интенсивность и/или более длительная обработка вызывали денатурацию белков. Модель с постоянным коэффициентом диффузии позволяла точно описывать кинетику диффузии NaCl при посоле. Обработка ультразвуком значительно усиливала диффузию соли по сравнению с образцами, посоленными в статических условиях, а коэффициент диффузии экспоненциально возрастал с увеличением интенсивности ультразвука.
Рекомендуемый прибор:
UP200Ht с сонотродом S26d40
Источник / научная статья:
Siro, I.; Ven, Cs.; Balla, Cs.; Jonas, G.; Zeke, I.; Friedrich, L. (2009): Применение технологии посола с использованием ультразвука для улучшения диффузии хлорида натрия в свинине. Журнал пищевой инженерии 91/2, 2009. 353–362.
Порфира йезоэнсис
Применение ультразвука:
Ультразвуковая деструкция полисахаридов из Porphyra yezoensis: 50mL раствора полисахаридов porphyra yezoensis с концентрацией 1,0 g/100mL (по сухой массе) обрабатывали ультразвуком в течение 4 ч с помощью UP400S.
Рекомендуемый прибор:
UP400S; импульсный ультразвук (циклы: 2 sec включён / 2 sec выключен) при 20°C.
Ультразвуковая деструкция полисахаридов из Porphyra yezoensis: 50mL раствора полисахаридов porphyra yezoensis с концентрацией 1,0 g/100mL (по сухой массе) обрабатывали ультразвуком в течение 4 ч с помощью UP400S.
Рекомендуемый прибор:
UP400S; импульсный ультразвук (циклы: 2 sec включён / 2 sec выключен) при 20°C.
Порошки
Применение ультразвука:
Измельчение, деагломерация и диспергирование до малого, относительно однородного размера частиц.
Рекомендуемый прибор:
UP200St
Измельчение, деагломерация и диспергирование до малого, относительно однородного размера частиц.
Рекомендуемый прибор:
UP200St
Кости крысы
Печень крысы
Применение ультразвука:
Разрушение и гомогенизация ткани с помощью UP400S.
Рекомендуемый прибор:
UP400S; 3 раза по 30 sec; на льду.
Источник / научная статья:
Oh et al. (2003): Ген ацетил-КоА-карбоксилазы регулируется в печени белком-1, связывающим стерольный регуляторный элемент. Journal of Biological Chemistry 2003.
Разрушение и гомогенизация ткани с помощью UP400S.
Рекомендуемый прибор:
UP400S; 3 раза по 30 sec; на льду.
Источник / научная статья:
Oh et al. (2003): Ген ацетил-КоА-карбоксилазы регулируется в печени белком-1, связывающим стерольный регуляторный элемент. Journal of Biological Chemistry 2003.
Кожа крысы
Раувольфия змеиная
Ребаудиозид A
Применение ультразвука:
Образцы сухих измельчённых листьев стевии массой 10g экстрагировали в 100mL воды при непрерывном перемешивании (с помощью магнитной мешалки). Значение pH регулировали с помощью 0,01 M фосфата натрия с pH 7. Образец помещали в стеклянный стакан объёмом 150 mL и обрабатывали ультразвуком с помощью ультразвукового аппарата зондового типа (UIP500hd, 20kHz, 500W). Кончик сонотрода погружали в суспензию листьев стевии примерно на 1,5 cm. Ультразвуковой прибор настраивали на выходную мощность 350W. Мягкая обработка ультразвуком при 350 W в течение 5–10 мин при постоянной температуре процесса 30°C обеспечивала выход ребаудиозида A 30–34g на 100g образца. После обработки ультразвуком экстракт центрифугировали и фильтровали через микропористую мембрану 0,45 μm; фильтрат отбирали для анализа общего содержания ребаудиозида A. Экстракционный выход общего содержания ребаудиозида A анализировали методом ВЭЖХ.
Экстракция с применением ультразвука без растворителя обеспечивала высокий выход ребаудиозида A по сравнению с традиционными методами экстракции, такими как тепловая экстракция или мацерация.
Рекомендуемый прибор:
UIP500hd
Образцы сухих измельчённых листьев стевии массой 10g экстрагировали в 100mL воды при непрерывном перемешивании (с помощью магнитной мешалки). Значение pH регулировали с помощью 0,01 M фосфата натрия с pH 7. Образец помещали в стеклянный стакан объёмом 150 mL и обрабатывали ультразвуком с помощью ультразвукового аппарата зондового типа (UIP500hd, 20kHz, 500W). Кончик сонотрода погружали в суспензию листьев стевии примерно на 1,5 cm. Ультразвуковой прибор настраивали на выходную мощность 350W. Мягкая обработка ультразвуком при 350 W в течение 5–10 мин при постоянной температуре процесса 30°C обеспечивала выход ребаудиозида A 30–34g на 100g образца. После обработки ультразвуком экстракт центрифугировали и фильтровали через микропористую мембрану 0,45 μm; фильтрат отбирали для анализа общего содержания ребаудиозида A. Экстракционный выход общего содержания ребаудиозида A анализировали методом ВЭЖХ.
Экстракция с применением ультразвука без растворителя обеспечивала высокий выход ребаудиозида A по сравнению с традиционными методами экстракции, такими как тепловая экстракция или мацерация.
Рекомендуемый прибор:
UIP500hd
Рисовый крахмал
Применение ультразвука:
Разрушение, выделение крахмала и разрыв нековалентных связей между белком и крахмалом в суспензии рисовой муки (33%) за 20–40 мин.
Рекомендуемый прибор:
UP500hd; 20–40 мин.
Разрушение, выделение крахмала и разрыв нековалентных связей между белком и крахмалом в суспензии рисовой муки (33%) за 20–40 мин.
Рекомендуемый прибор:
UP500hd; 20–40 мин.
Коловратки
Применение ультразвука:
Разрушение клеток мезозоопланктона: при обработке ультразвуком с четырьмя значениями расхода (200, 400, 520 и 800lh-1) и четырьмя значениями амплитуды (25, 50, 75 и 100%) была достигнута доля погибших организмов от 58 до 85%.
Рекомендуемый прибор:
UP2000 с проточной ячейкой
Источник / научная статья:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ультрафиолетовый свет, ультразвук и перекись водорода как средства обработки балластной воды – эксперименты с мезозоопланктоном в солоноватой воде с низкой солёностью. Journal of Marine Environmental Engineering, 8(1), 35–55.
Разрушение клеток мезозоопланктона: при обработке ультразвуком с четырьмя значениями расхода (200, 400, 520 и 800lh-1) и четырьмя значениями амплитуды (25, 50, 75 и 100%) была достигнута доля погибших организмов от 58 до 85%.
Рекомендуемый прибор:
UP2000 с проточной ячейкой
Источник / научная статья:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ультрафиолетовый свет, ультразвук и перекись водорода как средства обработки балластной воды – эксперименты с мезозоопланктоном в солоноватой воде с низкой солёностью. Journal of Marine Environmental Engineering, 8(1), 35–55.
С. фрагилис
Сахаромицес церевизие
Применение ультразвука:
Разрушение
Рекомендуемый прибор:
UP400S
Источник / научная статья:
Guerrero, S,; López-Malo, A.; Alzamora, S. M. (2001): Влияние ультразвука на выживаемость Saccharomyces cerevisiae: влияние температуры, pH и амплитуды. Innov. Food Sci. Emerg Technol. 2/2001. с. 31–39.
Разрушение
Рекомендуемый прибор:
UP400S
Источник / научная статья:
Guerrero, S,; López-Malo, A.; Alzamora, S. M. (2001): Влияние ультразвука на выживаемость Saccharomyces cerevisiae: влияние температуры, pH и амплитуды. Innov. Food Sci. Emerg Technol. 2/2001. с. 31–39.
Сахаромицес церевизие
Применение ультразвука:
Ультразвуковая инактивация Saccharomyces cerevisiae в питательной среде Сабуро и в солевом растворе.
Рекомендуемый прибор:
UP400S
Источник / научная статья:
Yap, A.; Jiranek, V.; Grbin, P.; Barnes, M.; Bates, D. (2007): Исследования применения ультразвука высокой мощности для очистки и дезинфекции бочек и досок. Austr. NZ Wine Indust. J. 22(3)/ 2007. с. 96–104.
Ультразвуковая инактивация Saccharomyces cerevisiae в питательной среде Сабуро и в солевом растворе.
Рекомендуемый прибор:
UP400S
Источник / научная статья:
Yap, A.; Jiranek, V.; Grbin, P.; Barnes, M.; Bates, D. (2007): Исследования применения ультразвука высокой мощности для очистки и дезинфекции бочек и досок. Austr. NZ Wine Indust. J. 22(3)/ 2007. с. 96–104.
Шафран, крокус посевной
Применение ультразвука:
Экстракция активных соединений (вкусоароматических и красящих веществ).
Нажмите здесь, чтобы узнать больше об экстракции из шафрана!
Рекомендуемый прибор:
UP50H
Источник / научная статья:
Kadkhodaee et al. (2007): Ультразвуковая экстракция активных соединений из шафрана. Acta Hortic. 739, 2007. 417–425.
Экстракция активных соединений (вкусоароматических и красящих веществ).
Нажмите здесь, чтобы узнать больше об экстракции из шафрана!
Рекомендуемый прибор:
UP50H
Источник / научная статья:
Kadkhodaee et al. (2007): Ультразвуковая экстракция активных соединений из шафрана. Acta Hortic. 739, 2007. 417–425.
Сальмонелла Зенфтенберг 775W, Гр-
Применение ультразвука:
Ультразвуковая инактивация Salmonella Senftenberg 775W Gr- в цитратно-фосфатном буфере Мак-Илвейна или питательном бульоне.
Рекомендуемый прибор:
UP100H
Источник / научная статья:
Álvarez, I.; Manas, P.; Virto, R.; Condón, S. (2006): Инактивация Salmonella Senftenberg 775W ультразвуковыми волнами под давлением при различных значениях активности воды. Int. J. Food Microbiol. 108/2006. с. 218–225.
Ультразвуковая инактивация Salmonella Senftenberg 775W Gr- в цитратно-фосфатном буфере Мак-Илвейна или питательном бульоне.
Рекомендуемый прибор:
UP100H
Источник / научная статья:
Álvarez, I.; Manas, P.; Virto, R.; Condón, S. (2006): Инактивация Salmonella Senftenberg 775W ультразвуковыми волнами под давлением при различных значениях активности воды. Int. J. Food Microbiol. 108/2006. с. 218–225.
Шалфей краснокорневищный Бунге
Применение ультразвука:
Экстракция биологически активных соединений: натриевой соли Danshensu и четырёх таншинонов (dihydrotanshione I, таншинона I, криптотаншинона и таншинона IIA).
Рекомендуемый прибор:
UP100H
Экстракция биологически активных соединений: натриевой соли Danshensu и четырёх таншинонов (dihydrotanshione I, таншинона I, криптотаншинона и таншинона IIA).
Рекомендуемый прибор:
UP100H
Шалфей лекарственный
Применение ультразвука:
Экстракция активных соединений из Salvia Officinalis (шалфея) менее чем за 2 ч.
Рекомендуемый прибор:
UP50H
Экстракция активных соединений из Salvia Officinalis (шалфея) менее чем за 2 ч.
Рекомендуемый прибор:
UP50H
Сыворотка
Печень и лёгкие овец с кистами и кровь с положительным результатом анализа (антигены эхинококка гранулёзус)
Применение ультразвука:
Печень и лёгкие овец с кистами и кровь с положительным результатом анализа (антигены Echinococcus granulosus у ягнят): затем образец обрабатывали ультразвуком в течение 2 × 15 sec на льду до исчезновения видимых интактных протосколексов.
Рекомендуемый прибор:
UP200S; 2 x 15 sec.
Источник / научная статья:
Tabar et al. (2009): Антительный ответ против антигенов гидатидной жидкости, протосколекса и целого тела Echinococcus granulosus у ягнят. Journal of Veterinary Research, том 10, выпуск 3; 2009. 283–288.
Печень и лёгкие овец с кистами и кровь с положительным результатом анализа (антигены Echinococcus granulosus у ягнят): затем образец обрабатывали ультразвуком в течение 2 × 15 sec на льду до исчезновения видимых интактных протосколексов.
Рекомендуемый прибор:
UP200S; 2 x 15 sec.
Источник / научная статья:
Tabar et al. (2009): Антительный ответ против антигенов гидатидной жидкости, протосколекса и целого тела Echinococcus granulosus у ягнят. Journal of Veterinary Research, том 10, выпуск 3; 2009. 283–288.
Триолеат сорбитана, этанол (в качестве растворителя) и порошок Bi-2212
Применение ультразвука:
Деагломерация суспензии, содержащей диспергатор Sorbitant Trioleate, этанол (в качестве растворителя) и порошок Bi-2212.
Рекомендуемый прибор:
UP200S; в течение 3 мин.
Источник / научная статья:
Mora et al. (2009): Изготовление сверхпроводящих покрытий на строительных керамических плитках.
Деагломерация суспензии, содержащей диспергатор Sorbitant Trioleate, этанол (в качестве растворителя) и порошок Bi-2212.
Рекомендуемый прибор:
UP200S; в течение 3 мин.
Источник / научная статья:
Mora et al. (2009): Изготовление сверхпроводящих покрытий на строительных керамических плитках.
Изофлавоны сои
Применение ультразвука:
Ультразвуковая экстракция изофлавонов сои в воде и растворителе. Повышение выхода при экстракции на величину до 15%.
Рекомендуемый прибор:
UP200St
Источник / научная статья:
Rostagno et al. (2003), цитируется в работе Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ультразвуковое извлечение и модификация пищевых ингредиентов. В: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ультразвуковые технологии для пищевой и биотехнологической переработки. New York: Springer, 2011. с. 345–368.
Ультразвуковая экстракция изофлавонов сои в воде и растворителе. Повышение выхода при экстракции на величину до 15%.
Рекомендуемый прибор:
UP200St
Источник / научная статья:
Rostagno et al. (2003), цитируется в работе Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ультразвуковое извлечение и модификация пищевых ингредиентов. В: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ультразвуковые технологии для пищевой и биотехнологической переработки. New York: Springer, 2011. с. 345–368.
Соевый белок
Применение ультразвука:
Ультразвуковая экстракция соевого белка в воде и щёлочи (гидроксиде натрия). Увеличение выхода на 53%. Установлено, что обработка ультразвуком в потоке эффективнее периодической экстракции (обработка ультразвуком в потоке обеспечивала выход на 23% выше, чем периодическая обработка ультразвуком).
Рекомендуемый прибор:
UIP1000hd для периодической обработки / обработки в стакане и с реактором с проточной ячейкой для обработки ультразвуком в потоке.
Источник / научная статья:
Moulton and Wang (1982), цитируется в работе Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ультразвуковое извлечение и модификация пищевых ингредиентов. В: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ультразвуковые технологии для пищевой и биотехнологической переработки. New York: Springer, 2011. с. 345–368.
Ультразвуковая экстракция соевого белка в воде и щёлочи (гидроксиде натрия). Увеличение выхода на 53%. Установлено, что обработка ультразвуком в потоке эффективнее периодической экстракции (обработка ультразвуком в потоке обеспечивала выход на 23% выше, чем периодическая обработка ультразвуком).
Рекомендуемый прибор:
UIP1000hd для периодической обработки / обработки в стакане и с реактором с проточной ячейкой для обработки ультразвуком в потоке.
Источник / научная статья:
Moulton and Wang (1982), цитируется в работе Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ультразвуковое извлечение и модификация пищевых ингредиентов. В: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ультразвуковые технологии для пищевой и биотехнологической переработки. New York: Springer, 2011. с. 345–368.
Головки сперматозоидов человека
Хвосты сперматозоидов человека
Стевия Ребо (Берт.)
Применение ультразвука:
Ультразвуковая экстракция гликозида стевиозида из образцов сухих листьев Stevia rebaudiana массой 10 g с четырьмя размерами частиц (0,315 mm, 2 mm, 6,3 mm и измельчённые сухие листья): образцы смешивали с различными растворителями – дистиллированной водой и смесями воды с этанолом (55% и 70%) – при различных соотношениях массы образца и объёма растворителя: 1/10, 1/8, 1/5 (w/v), затем подвергали воздействию ультразвука при комнатной температуре. Время обработки ультразвуком: < 5 мин.
Рекомендуемый прибор:
UP200St
Ультразвуковая экстракция гликозида стевиозида из образцов сухих листьев Stevia rebaudiana массой 10 g с четырьмя размерами частиц (0,315 mm, 2 mm, 6,3 mm и измельчённые сухие листья): образцы смешивали с различными растворителями – дистиллированной водой и смесями воды с этанолом (55% и 70%) – при различных соотношениях массы образца и объёма растворителя: 1/10, 1/8, 1/5 (w/v), затем подвергали воздействию ультразвука при комнатной температуре. Время обработки ультразвуком: < 5 мин.
Рекомендуемый прибор:
UP200St
Свяжитесь с нами! / Задайте нам вопрос!
Высокопроизводительные ультразвуковые аппараты для любых масштабов
Разрушители клеток и гомогенизаторы тканей Hielscher Ultrasonics доступны в любых размерах для любых объёмов. Независимо от того, нужно ли вам обрабатывать ультразвуком небольшие образцы, большое количество образцов, например в 96-луночных планшетах, средние объёмы или целые грузовики материала в час, в нашем ассортименте есть идеальный ультразвуковой аппарат для вашей задачи. Компактные ручные ультразвуковые гомогенизаторы оптимальны для лабораторных работ и исследований, а наша промышленная серия охватывает весь диапазон от 0,5kW до 16kW на один ультразвуковой процессор. Благодаря возможности объединения приборов в группы с помощью ультразвуковых аппаратов Hielscher можно обрабатывать практически любой объём. Прочность ультразвукового оборудования Hielscher позволяет работать круглосуточно, 24/7, при высоких нагрузках и в сложных условиях.
Современное интеллектуальное программное обеспечение обеспечивает высочайший уровень контроля процесса и удобства оператора. Все данные обработки ультразвуком автоматически записываются на встроенную SD-карту. Другие интеллектуальные функции включают предварительную настройку и сохранение параметров обработки ультразвуком, подключение к LAN и дистанционное управление через браузер.
В таблице ниже приведена ориентировочная производительность наших лабораторных ультразвуковых аппаратов для гомогенизации тканей и других задач подготовки образцов:
| Рекомендуемые приборы | Объём при периодической обработке | Расход |
|---|---|---|
| Ультразвуковой аппарат UIP400MTP для 96-луночных планшетов | многолуночные / микротитрационные планшеты | не применимо |
| Ультразвуковой CupHorn | CupHorn для флаконов или стакана | не применимо |
| GDmini2 | ультразвуковой микропроточный реактор | не применимо |
| VialTweeter | от 0,5 до 1,5mL | не применимо |
| UP100H | от 1 до 500mL | от 10 до 200mL/min |
| UP200Ht, UP200St | от 10 до 1000mL | от 20 до 200mL/min |
| UP400St | от 10 до 2000mL | от 20 до 400mL/min |
| Ультразвуковой ситовой вибратор | не применимо | не применимо |
Ультразвуковой аппарат UP200Ht с микронаконечником S26d2 диаметром 2mm для обработки небольших образцов ультразвуком