Vervang het afschrapen van cellen door de sonicator UIP400MTP met hoge verwerkingscapaciteit
Het losmaken en extraheren van adherente cellijnen uit platen met meerdere wells voor multi-omicsanalyse is een dagelijkse taak in laboratoria. Het losmaken van cellen met hoge verwerkingscapaciteit met de sonicator UIP400MTP voor platen met meerdere wells vervangt het handmatig afschrapen van cellen en leidt tot hogere opbrengsten aan RNA, totale lipiden en totale polaire metabolieten. Een nieuwe methode integreert de sonicator Hielscher UIP400MTP met het werkstation Beckman Coulter i7 voor vloeistofverwerking, waardoor cellen met hoge verwerkingscapaciteit, reproduceerbaar en efficiënt kunnen worden verwerkt voor de extractie van RNA, metabolieten en lipiden. De gepresenteerde methode overtreft traditionele methoden voor het handmatig afschrapen van cellen door een superieure reproduceerbaarheid en opbrengst te bereiken bij uiteenlopende celtypen en experimentele omstandigheden.
Stroomlijn het losmaken van cellen met de sonicator UIP400MTP voor microplaten
Adherente celkweeksystemen spelen een cruciale rol in toxicologisch en biomedisch onderzoek. Binnen deze context pakten Cruchley-Fuge et al. (2024) een belangrijke uitdaging aan in het project PrecisionTox, dat zich richt op het gebruik van omicstechnologieën voor de beoordeling van chemische gevaren. Het project beoogde de analyse van duizenden monsters die met uiteenlopende chemicaliën waren behandeld, met een hoge verwerkingscapaciteit. Om aan deze behoefte te voldoen, ontwikkelden de onderzoekers een geautomatiseerde workflow die de sonicator UIP400MTP combineert met gevestigde bifasische extractieprotocollen voor analyse met vloeistofchromatografie-massaspectrometrie (LC-MS). Hun studie evalueert de effectiviteit van de sonicator UIP400MTP voor platen met meerdere wells bij het losmaken van adherente cellen in vergelijking met handmatig afschrapen en andere traditionele methoden.
Multi-omics stroomlijnen: geautomatiseerde extractie van adherente cellen met de UIP400MTP
Het onderzoeksteam van Laura Cruchley-Fuge van de University of Birmingham gebruikte drie menselijke cellijnen: HepG2 (leverkankercellen), HepaRG (gedifferentieerde hepatocytachtige cellen) en H295R (bijnierkankercellen). Deze cellen werden gekweekt in platen met 24 en 96 wells en blootgesteld aan testchemicaliën zoals aflatoxine B1 en forskoline.
Experimentele opzet:
- Fase 1: Optimalisatie van de vermogensinstellingen van de sonicator UIP400MTP en vergelijking met het handmatig afschrapen van cellen en ultrasone waterbaden. Cellen van de lijn HepG2 werden gebruikt om de terugwinning van RNA, metabolieten en lipiden te evalueren.
- Fase 2: Integratie van de UIP400MTP in een bifasische extractieworkflow met het Beckman Coulter i7-systeem. De validatie werd uitgevoerd met HepaRG- en H295R-cellen.
Extractieworkflow: De workflow omvatte blootstelling aan chemicaliën in platen met meerdere wells, het losmaken van cellen met de UIP400MTP en bifasische extractie volgens de methode van Bligh & Dyer (B&D). Analyse met LC-MS werd uitgevoerd met een Thermo Scientific Orbitrap Exploris 120 voor lipofiele en polaire verbindingen. De methode van B&D, een gouden standaard voor lipidenkwantificatie, omvat een extractie in twee stappen met methanol, chloroform en water, gevolgd door lipidenkwantificatie in de chloroformfase.
De sonicator UIP400MTP voor microplaten vergemakkelijkt het losmaken van adherente cellijnen uit platen met meerdere wells en petrischalen
Resultaten:
- Fase 1: Optimale sonicatieomstandigheden werden vastgesteld bij 60% vermogen.
De UIP400MTP leverde de hoogste RNA-terugwinning op, met een uitzonderlijke reproduceerbaarheid in vergelijking met handmatig afschrapen en ultrasone baden.
De terugwinning van polaire metabolieten was consistent tussen de methoden, terwijl de terugwinning van lipiden duidelijk superieur was met de UIP400MTP. - Fase 2: Validatie met HepaRG- en H295R-cellen toonde een hoge reproduceerbaarheid van lipidomics- en metabolomicsgegevens aan, zoals bleek uit de dicht bij elkaar geclusterde PCA-scores.
Behandelingen met aflatoxine B1 en forskoline werden effectief onderscheiden van de controles, wat de gevoeligheid en betrouwbaarheid van de methode onderstreept.
Sonicator UIP400MTP voor microplaten voor het losmaken van cellen met hoge verwerkingscapaciteit
“Het sonicatieapparaat Hielscher UIP400MTP biedt een hoogwaardige en reproduceerbare alternatieve aanpak voor de ‘gouden standaard’ van het handmatig afschrapen van cellen, wat leidt tot hogere opbrengsten aan RNA, totale lipiden en totale polaire metabolieten.” (Cruchley-Fuge et al., 2024)
Cruchley-Fuge et al. benadrukken de voordelen van de sonicator UIP400MTP voor het verwerken van adherente cellen. Door handmatig afschrapen te vervangen, verbetert deze methode de reproduceerbaarheid, verwerkingscapaciteit en opbrengst, waardoor het een hulpmiddel van onschatbare waarde is voor grootschalige studies zoals PrecisionTox. De integratie van de UIP400MTP in geautomatiseerde workflows vermindert niet alleen de variabiliteit, maar stroomlijnt ook arbeidsintensieve processen, waardoor hoogwaardige multi-omicsgegevens kunnen worden verkregen.
Het werk van Cruchley-Fuge et al. (2024) vergemakkelijkt en stroomlijnt het verwerken van adherente celculturen voor multi-omicsanalyse. De integratie van de sonicator UIP400MTP met geautomatiseerde workflows zorgt voor een consistente en efficiënte monstervoorbereiding, waardoor deze bij uitstek geschikt is voor toxicologisch onderzoek met hoge verwerkingscapaciteit.
Ontwerp, productie en advies – kwaliteit uit Duitsland
De ultrasone apparaten van Hielscher staan bekend om hun hoogste kwaliteits- en ontwerpstandaarden. Robuustheid en eenvoudige bediening maken een soepele integratie van onze ultrasone apparaten in industriële installaties mogelijk. Ultrasone apparaten van Hielscher kunnen zware omstandigheden en veeleisende omgevingen gemakkelijk aan.
Hielscher Ultrasonics is een ISO-gecertificeerd bedrijf en legt bijzondere nadruk op sonicators met hoge prestaties met de modernste technologie en gebruiksvriendelijkheid. Uiteraard voldoen ultrasone apparaten van Hielscher aan de CE-voorschriften en aan de eisen van UL, CSA en RoHs.
Literatuur / referenties
- FactSheet UIP400MTP Multi-well Plate Sonicator – Non-Contact Sonicator – Hielscher Ultrasonics
- Lauren E. Cruchley-Fuge, Martin R. Jones, Ossama Edbali, Gavin R. Lloyd, Ralf J. M. Weber, Andrew D. Southam, Mark R. Viant (2024): Automated extraction of adherent cell lines from 24-well and 96-well plates for multi-omics analysis using the Hielscher UIP400MTP sonicator and Beckman Coulter i7 liquid handling workstation. Metabomeeting 2024, University of Liverpool, 26-28th November 2024.
- Dreyer J., Ricci G., van den Berg J., Bhardwaj V., Funk J., Armstrong C., van Batenburg V., Sine C., VanInsberghe M.A., Marsman R., Mandemaker I.K., di Sanzo S., Costantini J., Manzo S.G., Biran A., Burny C., Völker-Albert M., Groth A., Spencer S.L., van Oudenaarden A., Mattiroli F. (2024): Acute multi-level response to defective de novo chromatin assembly in S-phase. Molecular Cell 2024.
- Mochizuki, Chika; Taketomi, Yoshitaka; Irie, Atsushi; Kano, Kuniyuki; Nagasaki, Yuki; Miki, Yoshimi; Ono, Takashi; Nishito, Yasumasa; Nakajima, Takahiro; Tomabechi, Yuri; Hanada, Kazuharu; Shirouzu, Mikako; Watanabe, Takashi; Hata, Kousuke; Izumi, Yoshihiro; Bamba, Takeshi; Chun, Jerold; Kudo, Kai; Kotani, Ai; Murakami, Makoto (2024): Secreted phospholipase PLA2G12A-driven lysophospholipid signaling via lipolytic modification of extracellular vesicles facilitates pathogenic Th17 differentiation. BioRxiv 2024.
- Cosenza-Contreras M, Seredynska A, Vogele D, Pinter N, Brombacher E, Cueto RF, Dinh TJ, Bernhard P, Rogg M, Liu J, Willems P, Stael S, Huesgen PF, Kuehn EW, Kreutz C, Schell C, Schilling O. (2024): TermineR: Extracting information on endogenous proteolytic processing from shotgun proteomics data. Proteomics. 2024.
- De Oliveira A, Cataneli Pereira V, Pinheiro L, Moraes Riboli DF, Benini Martins K, Ribeiro de Souza da Cunha MDL (2016): Antimicrobial Resistance Profile of Planktonic and Biofilm Cells of Staphylococcus aureus and Coagulase-Negative Staphylococci. International Journal of Molecular Sciences 17(9):1423; 2016.
- Martins KB, Ferreira AM, Pereira VC, Pinheiro L, Oliveira A, Cunha MLRS (2019): In vitro Effects of Antimicrobial Agents on Planktonic and Biofilm Forms of Staphylococcus saprophyticus Isolated From Patients With Urinary Tract Infections. Frontiers in Microbiology 2019.
Veelgestelde vragen
Wat is het losmaken van cellen?
Het losmaken van cellen in onderzoek verwijst naar het proces waarbij adherente cellen worden gescheiden van het oppervlak van een kweekvat of substraat. Dit wordt doorgaans gedaan om cellen te oogsten voor vervolgtoepassingen zoals analyse, subcultivering of cryopreservatie. Het losmaken kan worden bereikt met enzymatische methoden (bijv. trypsine), chemische middelen (bijv. EDTA), mechanische methoden (bijv. afschrapen) of fysische technieken zoals sonicatie, afhankelijk van het celtype en de onderzoeksvereisten.
Hoe maakt u adherente cellen los?
Bij het losmaken van adherente cellen met sonicatie worden gerichte ultrasone golven toegepast om de hechting tussen cellen en het oppervlak in een gecontroleerde omgeving te verbreken. De sonicator UIP400MTP voor microplaten bereikt dit specifiek door plaatselijke mechanische trillingen op te wekken die de verbindingen tussen de cellen en het kweekoppervlak verbreken. De belangrijkste stappen zijn:
- Voorbereiding: Cellen worden gekweekt in platen met meerdere wells en kunnen als onderdeel van de experimentele opzet aan specifieke chemicaliën worden blootgesteld.
- Sonicatie: De sonicator UIP400MTP wordt geprogrammeerd met geoptimaliseerde instellingen (bijv. 60% vermogen) om effectief losmaken te garanderen zonder de cellen te beschadigen of de integriteit van biomoleculen aan te tasten.
- Temperatuurregeling: Het apparaat houdt de temperatuur stabiel om door warmte veroorzaakte cellulaire of moleculaire afbraak tijdens het proces te voorkomen.
- Na het losmaken: Losgemaakte cellen worden onderworpen aan verdere extractieprotocollen, zoals de bifasische Bligh & Dyer-methode, voor de terugwinning van RNA, lipiden en metabolieten.
Deze methode is superieur aan handmatig afschrapen dankzij de automatisering, reproduceerbaarheid en het vermogen om monsters efficiënt met hoge verwerkingscapaciteit te verwerken.
Wat is het losmaken van cellen zonder beschadiging?
Het losmaken van cellen zonder beschadiging verwijst naar het proces waarbij adherente cellen worden gescheiden van hun substraat zonder de levensvatbaarheid, integriteit of functionaliteit van de cellen aan te tasten. Dit wordt bereikt met milde methoden zoals gecontroleerde sonicatie of enzymvrije oplossingen.
Het voorkomen van celvernietiging is cruciaal voor het behoud van de structurele en moleculaire eigenschappen van de cellen, die essentieel zijn voor nauwkeurige vervolgtoepassingen zoals multi-omicsanalyse, functionele assays of therapeutisch gebruik. Beschadigde cellen kunnen intracellulaire inhoud vrijgeven, wat experimentele resultaten mogelijk vertekent of de monsterkwaliteit aantast.
Wat is het voordeel van enzymvrij losmaken van cellen?
Enzymvrij losmaken van cellen biedt verschillende voordelen, waaronder het behoud van celoppervlakte-eiwitten en receptoren, het behoud van de levensvatbaarheid van cellen en het voorkomen van mogelijke enzymatische schade aan biomoleculen. Deze aanpak is bijzonder gunstig voor gevoelige vervolgtoepassingen, zoals flowcytometrie, proteomics of functionele assays, waarbij enzymatische veranderingen de gegevenskwaliteit of experimentele resultaten zouden kunnen aantasten. Bovendien zijn enzymvrije methoden vaak beter reproduceerbaar en kunnen ze worden aangepast voor workflows met hoge verwerkingscapaciteit.
Hielscher Ultrasonics produceert ultrasone homogenisatoren met hoge prestaties van laboratoriumformaat tot industrieel formaat.

