פרוטוקול לשימוש בסוניקטורים מרובי דגימות של Hielscher בחקר ביופילם ובאנליזה פרוטאומית
השימוש בסוניקטורים מרובי דגימות, כגון הסוניקטור למספר מבחנות VialTweeter והסוניקטור למיקרופלטות UIP400MTP, מייעל תהליכי עבודה במעבדה ליישומים בתפוקה גבוהה. שני המכשירים מאפשרים עיבוד אולטרסוני מדויק ואחיד של מספר דגימות, תוך מזעור השונות ושיפור השחזוריות. הדבר מועיל במיוחד בניסויים הדורשים ליזיס אחיד של דגימות, ניתוק ביופילם, מיצוי חלבונים או עיכול פרוטאוליטי, שבהם שיטות ידניות או שיטות לעיבוד דגימה יחידה יעילות פחות ומועדות לחוסר אחידות.
ייעול תהליכי עבודה באמצעות סוניקטורים מרובי דגימות
UIP400MTP, למשל, מאפשר טיפול אולטרסוני בו־זמני בבאריות של מיקרופלטה, ומבטיח ניתוק אחיד של ביופילמים או חומר תאי. במקביל, VialTweeter מאפשר ליזיס והומוגניזציה מדויקים של מספר דגימות במבחנות, ללא זיהום צולב. סוניקטורים אלה מקצרים משמעותית את זמני העיבוד, משפרים את שחזוריות הניסויים ושומרים על שלמות גבוהה של הדגימות, ובכך הופכים לכלים חיוניים במחקר במיקרוביולוגיה, בפרוטאומיקה ובביולוגיה מולקולרית.
להלן פרוטוקול מפורט המדגים את השימוש בדגמי הסוניקטורים מרובי הדגימות של Hielscher, הסוניקטור למספר מבחנות VialTweeter והסוניקטור למיקרופלטות UIP400MTP, במחקר העוסק ביצירת ביופילם של E. coli ובאנליזה פרוטאומית לאחר מכן.
סוניקטור לפלטות מרובות באריות UIP400MTP – הכנת דגימות אמינה בתפוקה גבוהה
פרוטוקול: יצירת ביופילם, ניתוקו ואנליזה פרוטאומית באמצעות סוניקטורים מרובי דגימות של Hielscher
1. הכנת תרבית חיידקים
- גדלו חיידקי E. coli (זן W3110) בטמפרטורה של 30°C, טמפרטורה המעודדת יצירת ביופילם של E. coli, במצע מרק טריפטון (TB) המכיל:
– 10 g/L טריפטון
– 5 g/L NaCl - הוסיפו אנטיביוטיקה לפי הצורך כדי להבטיח את שימור הפלסמיד.
- למחקרי מיקרוסקופיה ופעילות פרומוטורים, השתמשו בזן W3110 של E. coli המכיל בגןום גן מדווח של GFP משופר (eGFP), תחת בקרת הפרומוטור rplL.
- השתמשו בפלסמידים עם גן מדווח GFP עבור פרומוטורים שונים (למשל, csgA, csgD, fliA, fliC, flhD ) כדי למדוד את פעילות הפרומוטורים.
2. גידול ביופילם וניתוקו
- זרעו 1.5 mL של תרבית חיידקים מדוללת בכל בארית בפלטה בת 12 באריות (פלטות CellStar בנות 12 באריות, Greiner Bio-One).
- הדגירו כדי לאפשר יצירת ביופילם.
- הסירו בזהירות את התרבית הפלנקטונית (שאינה צמודה למשטח).
– שטפו כל בארית ב־500 µL של PBS.
– נתקו תאים צמודים באמצעות סוניקציה של הפלטה בת 12 הבאריות בסוניקטור למיקרופלטות UIP400MTP. המכשיר UIP400MTP מבטיח ניתוק אחיד באמצעות העברת אנרגיה אולטרסונית עקבית לכל הבאריות.
– הגדרות סוניקציה: אמפליטודה של 60%, מצב מחזורי: 60 sec הפעלה / 30 sec הפסקה.
3. איסוף תאים וליזיס
- צנטריפגו את תאי הביופילם שנותקו ב־4,500 g במשך 5 דקות.
- שטפו את התאים שבמשקע ב־PBS.
- הרחיפו מחדש את התאים ב־100 µL של נתרן לאורויל סרקוזינט (SLS) בריכוז 2% והדגירו ב־95°C במשך 15 דקות.
- בצעו סוניקציה באמצעות הסוניקטור למספר מבחנות VialTweeter כדי להבטיח ליזיס מלא של התאים.
– הגדרות סוניקציה: אמפליטודה של 100%, 50 s הפעלה / 10 s הפסקה, למשך זמן פעולה כולל של 10 min; שמרו את הדגימות על קרח.
4. חיזור ואלקילציה
- הוסיפו 5 mM של Tris(2-carboxyethyl)phosphine (TCEP) לחיזור קשרים דיסולפידיים והדגירו ב־95°C במשך 15 דקות.
- בצעו אלקילציה של החלבונים באמצעות יודואצטאמיד בריכוז 10 mM במשך 30 דקות ב־25°C.
5. כימות חלבונים ועיכול
- צנטריפגו את הליזטים לסילוק שברי תאים.
- כמתו את תכולת החלבון הכוללת באמצעות Pierce BCA Protein Assay Kit.
- עכלו 50 µg של חלבון כולל באמצעות 1 µg טריפסין בתמיסה המכילה 2% SLS ו־100 mM אמוניום ביקרבונט.
- הדגירו את תגובת העיכול למשך הלילה ב־30°C.
6. טיהור פפטידים
- השקיעו את ה־SLS באמצעות הוספת חומצה טריפלואורואצטית (TFA) בריכוז 1.5%, ולאחר מכן צנטריפגו.
- טהרו את הפפטידים באמצעות עמודות מיקרוספין C18.
- ייבשו את הפפטידים המטוהרים והרחיפו אותם מחדש ב־0.1% TFA.
7. כרומטוגרפיה נוזלית–ספקטרומטריית מסה (LC-MS/MS)
- נתחו את הפפטידים באמצעות ספקטרומטר מסה Q-Exactive Plus המצומד למערכת Ultimate 3000 RSLC nano.
- הפרידו את הפפטידים באמצעות עמודת HPLC בפאזה הפוכה (75 µm × 42 cm) הממולאת בשרף C18 (2.4 µm).
- הפעילו גרדיאנט מ־2% עד 35% של ממס B (אצטוניטריל עם 0.15% חומצה פורמית) במשך 140 דקות.
- אספו נתונים באמצעות סריקות MS ברזולוציה גבוהה, ולאחריהן סריקות MS/MS בטנדם של 10 היונים בעלי העוצמה הגבוהה ביותר.
8. ניתוח נתונים
- עבדו את נתוני ה־LC-MS הגולמיים באמצעות תוכנת Progenesis.
- ייצאו קובצי .mgf ונתחו אותם באמצעות MASCOT.
- בצעו כימות פפטידים באמצעות SafeQuant לבקרת איכות ולתיקון בגין גילויים כוזבים.
- בצעו את כל הניסויים בשתי חזרות או בשלוש חזרות כדי להבטיח שחזוריות.
סוניקטורים מרובי דגימות להכנת דגימות בתפוקה גבוהה
דגמי הסוניקטורים מרובי הדגימות VialTweeter ו־UIP400MTP משפרים משמעותית את הדיוק והיעילות של תהליכי עבודה ניסויים, במיוחד בחקר ביופילמים ובפרוטאומיקה. יכולתם לעבד מספר דגימות באופן אחיד מבטיחה תפוקה גבוהה בלי לפגוע באיכות הנתונים. יתרונות אלה, בשילוב תהליכי העבודה היעילים שתוארו לעיל, הופכים את הסוניקטורים מרובי הדגימות של Hielscher לכלים חיוניים למחקר ביולוגי מודרני.
- יעילות גבוהה
- טכנולוגיה מהמתקדמות ביותר
- אמינות ועמידות
- בקרת תהליך מדויקת וניתנת לכוונון
- עיבוד במנות ובקו הייצור
- לכל נפח
- תוכנה חכמה
- תכונות חכמות (למשל, אפשרות לתכנות, רישום נתונים, שליטה מרחוק)
- הפעלה קלה ובטוחה
- תחזוקה מועטה
- CIP (ניקוי במקום)
תכנון, ייצור וייעוץ – איכות תוצרת גרמניה
המכשירים האולטרסוניים של Hielscher ידועים בתקני האיכות והתכנון הגבוהים ביותר שלהם. עמידות וקלות הפעלה מאפשרות שילוב חלק של המכשירים האולטרסוניים שלנו במתקנים תעשייתיים. המכשירים האולטרסוניים של Hielscher מתמודדים בקלות עם תנאים קשים וסביבות תובעניות.
Hielscher Ultrasonics היא חברה בעלת הסמכת ISO ושמה דגש מיוחד על מכשירים אולטרסוניים בעלי ביצועים גבוהים, המשלבים טכנולוגיה מהמתקדמות ביותר וידידותיות למשתמש. כמובן, המכשירים האולטרסוניים של Hielscher תואמים לדרישות CE ועומדים בדרישות UL, CSA ו־RoHs.
ספרות / מקורות / דפי מידע
- Download PDF "Protocol using Hielscher Multi-Sample Sonicators in Biofilm and Proteomic Analysis" – Hielscher Ultrasonics
- FactSheet UIP400MTP – High-throughput Sonicator for Multiwell-Plates
- FactSheet VialTweeter – Simultaneous sonication of closed vials
- Shirley J.D., Nauta K.M., Carlson E.E. (2022): Live-Cell Profiling of Penicillin-Binding Protein Inhibitors in Escherichia coli MG1655. ACS Infectious Diseases Jul 8;8(7); 2022. 1241-1252.
- Teteneva N.A., Mart’yanov S.V., Esteban-López M., Kahnt J., Glatter T,. Netrusov A.I., Plakunov V.K., Sourjik V. (2020): Multiple drug-induced stress responses inhibit formation of Escherichia coli biofilms. Applied Environmental Microbiology 2020: 86:e01113-20.
- Lauren E. Cruchley-Fuge, Martin R. Jones, Ossama Edbali, Gavin R. Lloyd, Ralf J. M. Weber, Andrew D. Southam, Mark R. Viant (2024): Automated extraction of adherent cell lines from 24-well and 96-well plates for multi-omics analysis using the Hielscher UIP400MTP sonicator and Beckman Coulter i7 liquid handling workstation. Metabomeeting 2024, University of Liverpool, 26-28th November 2024.
- De Oliveira A, Cataneli Pereira V, Pinheiro L, Moraes Riboli DF, Benini Martins K, Ribeiro de Souza da Cunha MDL (2016): Antimicrobial Resistance Profile of Planktonic and Biofilm Cells of Staphylococcus aureus and Coagulase-Negative Staphylococci. International Journal of Molecular Sciences 17(9):1423; 2016.
- Martins KB, Ferreira AM, Pereira VC, Pinheiro L, Oliveira A, Cunha MLRS (2019): In vitro Effects of Antimicrobial Agents on Planktonic and Biofilm Forms of Staphylococcus saprophyticus Isolated From Patients With Urinary Tract Infections. Frontiers in Microbiology 2019.
שאלות נפוצות
מהו ביופילם?
ביופילם הוא קהילה מאורגנת של מיקרואורגניזמים המשובצים במטריצה חוץ־תאית (ECM) שהם מייצרים בעצמם ונצמדים למשטחים. הוא מספק הגנה מפני עקות סביבתיות, אנטיביוטיקה ומערכת החיסון, ובכך תורם לזיהומים מתמשכים ולהצטברות ביולוגית על משטחים.
מהו ניתוק ביופילם?
ניתוק ביופילם הוא התהליך שבו תאים מיקרוביאליים או צברי תאים נפרדים ממבנה הביופילם, באופן פעיל (באמצעות פירוק אנזימטי או חישת מניין) או באופן סביל (עקב כוחות גזירה, הידלדלות חומרי הזנה או פירוק מכני). הדבר מקל על פיזור הביופילם ועל התיישבות על משטחים חדשים.
מהם חלבונים הקשורים לביופילם?
חלבונים הקשורים לביופילם (BAPs) הם חלבונים הנמצאים על פני השטח של מיקרואורגניזמים או מופרשים מהם, וממלאים תפקידי מפתח ביצירת ביופילם, ביציבותו ובהיצמדותו. אלה כוללים אדהזינים, אנזימים חוץ־תאיים וחלבונים מבניים כגון סיבי curli ב־E. coli או BapA ב־Staphylococcus aureus.
מהי ECM בביופילמים?
המטריצה החוץ־תאית (ECM) בביופילמים היא רשת מורכבת של רב־סוכרים, חלבונים, DNA חוץ־תאי (eDNA) וליפידים העוטפים תאים מיקרוביאליים. היא מקנה שלמות מבנית, מתווכת היצמדות, שומרת על לחות ומגבירה את עמידות הביופילם לחומרים אנטימיקרוביאליים ולמנגנוני ההגנה של המאכסן.
מהו תפקידם של סיבי curli?
סיבי curli הם סיבוני עמילואיד חוץ־תאיים המיוצרים על ידי Escherichia coli וחיידקים קרובים, וממלאים תפקיד מכריע ביצירת ביופילם, בהיצמדות למשטחים ובהתיישבות במאכסן. הם תורמים לשלמות הביופילם, מגבירים עמידות לעקות סביבתיות ומסייעים באינטראקציות עם רקמות המאכסן במהלך זיהום. בנוסף, סיבי curli מעורבים בקידום הפעלתה של מערכת החיסון ונקשרו להתמדה של חיידקים ולפתוגניות שלהם.
Hielscher Ultrasonics מייצרת הומוגנייזרים אולטרסוניים בעלי ביצועים גבוהים בגדלים שבין גודל מעבדתי לבין גודל תעשייתי.
