Plasmid priprava z ultrasonication
Ultrasonication je zanesljiva tehnika fragment plazmid DNK. Natančno kontrolirana amplituda, način utripanja in uravnavanje temperature so najpomembnejše značilnosti ultrazvočnega senzorja za nemoteče razdrobljenost plazmida. Poleg tega uporaba nekaterih sredstev pomaga zaščititi pred razgradnjami plazme. Hielscher Ultrasonics ponuja različne rešitve za nadzorovano razdrobljenost plazmida iz enojnih vial, hkratno sonication številnih vzorcev, kot tudi več-dobro plošč. Preberite več o uspešni ultrazvočni razdrobljenosti plazmida!

The UIP400MTP omogoča natančno nadzorovano ultrasonication več-dobro plošč. Ena od aplikacij UIP400MTP je razdrobljenost plazmidske DNK za pridobitev fragmentov posebej ciljno usmerjene dolžine.
Plasmid shearing z ultrasonication
Ko se vzorci DNK podvržejo ultrazvočnim valovom, ultrazvočno ustvarjene vibracije ustvarijo akustično kavitacijo v tekočini, ki s pomočjo mehanskih sil omejuje ali zlomi molekule DNK visoke molekulske mase. Sonication je najbolj razširjena metoda za presejalne poskuse DNA v razsutem stanju, vključno z aplikacijami, kot je Chromatin Immunoprecipitation (ChIP), za katere so majhne velikosti fragmentov absolutno ključnega pomena za pridobitev visoke ločljivosti. (prim. Tseng et al., 2012)
Plazmidna DNK (pDNA) je specifična oblika DNK, značilna je po obliki prstana in se nahaja v bakterijah in nekaterih evkariotih.
Supercoiled pDNA je želena oblika plazmidske DNK, saj kaže najboljše rezultate v procesih navzdol, kot so avtomatizirano zaporedje in transfekcija. Ultrasonication je primerna za fragment pDNA, vključno s supercoiled pDNA, uspešno.
Thompson et al. (2008) je pokazal, da je plazmidna sonikacija, za katero je znano, da fragmentira supercoiled DNK, učinkovit način za izboljšanje zaporedja phred20 dolžin branja do točke, da se bistveno ne razlikujejo od beckman Coulterove kontrolne predloge ali encimsko lineariziranih plazmidov.
- Natančno nadzorovati
- Razmnoževalni rezultati
- Nastavljivo na ciljne dolžine delcev DNK
- nadzor temperature
- Razčlenjene na katero koli velikost vzorca
Uporaba plazmid vektorjev
Plazmidi se pogosto uporabljajo kot orodje za kloniranje, prenos in manipulacijo genov. Kadar se plazmidi eksperimentalno uporabljajo v te namene, se imenujejo vektorji. DNA fragmenti ali geni se lahko vstavijo v plazmidski vektor in tako ustvarijo tako imenovani rekombinantni plazmid. Plazmidski vektorji se uporabljajo kot vozila za pogon rekombinantne DNK v gostiteljsko celico in so ključna sestavina molekularnega kloniranja.
“Nevirusni vektorji se obsežno proučujejo za njihovo morebitno uporabo pri genski terapiji za zdravljenje različnih zapletenih bolezni. Nevirusni vektorji ščitijo plazmidno DNK pred fizikalno, kemično in encimsko razgradnjajo in dostavili molekulo DNK na ciljno mesto. Na primer, kcationični liposomi, chitosan in drugi pozitivno nabojni nanodelci tvorijo komplekse s plazmidno DNK z elektrostatičnimi interakcijami. Vendar pa so lahko oblikovani kcationični liposomi/plazmidni DNA kompleksi razmeroma veliki (to je 300–400 nm) in heterogene narave, zaradi česar jih je težko uporabljati v farmacevtskih aplikacijah. Velike in heterogene plazmične DNK/liposome, plazmidno DNK/aerosole in plazmidske DNA/peptidne komplekse lahko zmanjšamo na manjše, homogene delce pa z ultrasonikacijo.” (Sarker et al., 2019)
Izmerjen primer za uporabo plazmidnih vektorjev je CRISPR–Cas9. Sistem CRISPR–Cas9 je običajno dostavljen celicam kot en velik plazmid ali več manjših plazmidov, ki kodirajo ciljno zaporedje, VODNIK CRISPR in Cas9.
Ultrazvočna priprava NANOdelcev, naloženih z DNA PLGA, z nanoprecipitacijo
Jo et al. (2020) je uporabil poli(mlečno-ko-glikolno kislino) (PLGA) za oblikovanje nosilca nanodelcev za dostavo modelov PLAZMID CRISPR–Cas9 v primarni kostni mozeg, pridobljene makrofage. Pri nanoprecipitaciji nanodelcev PLGA so uporabili PLGA z dvema različnima končnima skupinama (skupine estra in amina) s ciljem, da pozitivno nabite končne kape amina povečajo učinkovitost enkapsulacije in nalaganje zaradi interakcij z nabojem med njim in negativno nabito hrbtenico DNK. V 50 ml polipropilenske konične centrifuge cevi, 100 mg Pluronic F127 je bila raztopila v 20 ml avtoklaved DI vode z mešanjem vrtljajev, ki mu sledi 30 min nežne sonikacije z uporabo ultrazvočne kopeli (glej CupHorn). Dodana je bila samodejna magnetna mešalnica, raztopina pa je bila 30 min zmešana s 600 RPM, medtem ko so bile druge rešitve narejene. Plastična labware je bila uporabljena namesto steklene posode skozi celotno za zmanjšanje nespecifičnega adsorpcije DNK. Raztopine PLGA, raztopljene v DMF (44, 48 mg/ ml) in TIPS pentacenu, raztopljene v THF (0,667 mg/ml), so bile narejene ločeno. PLGA je bila v DMF 30 min pustila mirno moko, preden je bila sonica 30 min. (za celoten protokol glej Jo et al., 2020)
- Ekstrakcija DNK
- Enkapsulacija DNK
- Disperzija DNK, obložene z nanodelci
- Dostava plazmidnega DNK v celice
Plazmidska DNA zaščita med sonikacijo
DNK, vključno s plazmidi in super-prehlajenimi plazmidi, so zelo občutljiva razgradnja. Vse razpoložljive metode razdrobljenosti so znane po nekaterih slabostih. Ultrazvočna razdrobljenost DNK je ena izmed prednostnih metod, saj nadzorovana sonication v kombinaciji z zaščitnimi ukrepi omogoča zmanjšanje omejevanje- in toplotno- povzročijo števanje DNA sklopov.
Poleg nizkih nastavitev amplitude, načina utripanja in uravnavanja temperature med ultrazvočnim omejevanjem DNK je uporaba nekaterih sredstev pokazala pomemben zaščitni učinek pred razgradnjajo DNK. Na primer, različni polimeri, peptidi in lipidi ščitijo plazmidno DNK med ultrasonikacijo.

Stabilnost plazmidne DNK in plazmidnih dnk/IL nanokompleksov proti ultrazvočnemu stresu zmešnjave so preiskali s testom elektroforeze agaroze gela. Tako plazmidna DNK kot plazmidna DNK/IL nanokomplekse so bili izpostavljeni ultrazvočni skica stres za različne časovne točke. Plazmidna DNK je bila izpostavljena ultrazvočnim stresom 0, 10, 20, 30 in 40 minut. Vendar pa so bili plazmični DNK/IL nanokompleksi izpostavljeni ultrazvočnim stresom 0, 10, 20, 30, 40, 60, 90 in 120 minut.
(študija in slika: ©Sarker et al., 2019)
Sarker et al. (2019) je pokazal, da so bile v nanostrukturah plazmidske DNK / ionske tekočine (pDNA/IL) izpostavljene ultrazvočni omejevalni stres za 0, 10, 20, 30, 40, 60, 90, i 120 min i kompleksovano sa trgovinsko razpoložljivim kcationskim genom za dostava lipofektamina, procent fluorescentnih pozitivnih celica je 80%, 98%, 97%, 85%, 78%, 65%, 65 %, oziroma 50 %(glej spodnji grafikon). Odstotek fluorescentnih pozitivnih celic se je povečal, ko so bile nanostrukture 10 in 20 min podvržene ultrazvočnim stresom, nato pa so se počasi zniževali.

Vpliv ionske tekočine [Bmim][PF6] na dostava plazmidske DNK v celice COS7. Plazmid DNA/IL (ionska tekočina) nanokomplekse so bili izpostavljeni ultrazvočni strižen stres do 120 minut in zapleten z LA pred dostavo v celice COS7. Podatki kažejo povprečno število (%) celic GFP pozitivnih hela, preštetih v 10 različnih mikroskopskih poljih, poskus pa je bil izveden večkrat v treh različnih dneh. (Študija in grafikon: ©Sarker et al., 2019)

Plazmidno DNK je mogoče zaščititi z dodajanjem sredstva pred ultrazvočno razdrobljenost: razgradnja gole pDNA (A) in pDNA, oblikovane z 1,5 mM CaCl2 in 20 % (v/v) t-butanol (B)
Vzorci so bili sonicated s sondo 20W za do 120s, kot je navedeno na vrhu vsakega pasu. Lane H ustreza hyperladder I ™️ marker. Indicirano je OK in SC plazmid pasov.
(študija in slike: ©Wu et al., 2009)
Ultrazvočni pripravek iz lysata
Ultrazvočni celični lysis protokol
Začnite z obogatenim vzorcem celic, ki je bil pripravljen z metodo ločevanja celic (npr. ločitev imunomagnetičnih celic, razvrščanje celic s fluorescenco (FACS), centrifugacijo gradienta gostote, izoliranost celic z imunodensnostjo).
Vzorci celic morajo pokazati prostornino odbojnika za lyzo, ki je primerna za poskusni cilj in ultrazvočnikator tipa sonde.
Prednost imajo hipotonski odbojniki, saj krepijo ultrazvočno celično lyzo. Pomembno je, da se aditivi in koncentracija soli uporabljajo na ustrezen način.
Izberite napravo za ultrazvočno lizo: Za posredno sonikacijo vial priporočamo VialTweeter ali CupHorn. Za večplastne plošče je UIP400MTP idealen ultrazvočnitor. In klasična sonda tipa sonication, ultrazvočni homogenizer kot UP100H ali UP200Ht z mikro-konico so najbolj primerni.
Protokol za sondo tipa sonication: Ultrazvočno sondo v prostornino vzorca postavite v mikrocentrifugno cev in sonicirajte približno 10 sekund. Glede na VZOREC DNK se lahko sonication ponovi še enkrat ali dvakrat. Zahtevani ultrazvočni vnos energije (Ws/mL) je odvisen od viskoznosti vzorca in tipa DNK. Hlajenje preko ledene kopeli in pulzacijskega načina ultrazvočnega sistema pomaga preprečiti, da bi bil vzorec termo degradirana.
Po ultrazvočni lysis, vzorec centrifugiranje za ločevanje peletnih ostankov (ki vsebujejo neosedenih celic, jedrc in neoslanih organele)
Če vzorec ni takoj obdelan naprej, ga je mogoče shraniti na ustrezni temperaturi, da se ohrani njegova sposobnost preživetja.
Ultrasonicatorji za fragmentacijo DNK
Hielscher Ultrasonics ponuja različne ultrazvočno zasnovane platforme za DNA, RNK, in kromatin fragmentacijo. Te različne platforme vključujejo ultrazvočne sonde (sonotrodes), posredne raztopine za sonication za hkratno pripravo vzorca več cevi ali več-dobro plošč (npr. 96-dobro plošče, mikrotiter plošče), sonoreaktorji, in ultrazvočni cuphorns. Vse platforme za omejevanje DNK napajajo frekvenčni, visokozmogljivi ultrazvočni procesorji, ki so natančno pod nadzorom in prinašajo pomnilljive rezultate.
Ultrazvočni procesorji za vsako vzorčno številko in velikost
Z Multi-sample ultrasonicators Hielscher VialTweeter (za do 10 epruvete) in UIP400MTP (za mikroplate/ večplastne plošče) je enostavno mogoče zmanjšati čas obdelave vzorcev zaradi intenzivne in natančno nadzorovati ultrasonication, medtem ko pridobi želeno porazdelitev velikosti DNA fragmentov in donos. Ultrazvočna DNA fragmentacija naredi plazmid priprave korake učinkovite, zanesljive in skalatične. Protokole je mogoče lineano meriti od enega do številnih vzorcev z uporabo stalnih ultrazvočnih parametrov.
Ultrasonicatorji sonde z enim do petimi prsti so idealni za pripravo manjših števil vzorcev. Hielscherjev laboratorij ultrasonicatorji so na voljo z različnimi stopnjami moči, tako da lahko izberete idealen ultrazvočni motilec za vašo aplikacijo, povezano z DNK.

Ultrazvočna enota za pripravo več vzorcev VialTweeter omogoča hkratno sonikacijo do 10 vial. S priklopno napravo VialPress lahko do 4 dodatne cevi pritisnete na sprednjo stran za intenzivno sonication.
natančna kontrola procesov
Natančno nadzorovane nastavitve sonifikacije so ključnega pomena, saj izčrpna sonifikacija lahko uniči DNK, RNK in kromatin, vendar neustrezno ultrazvočno omejevanje ima predolgo DNK in kromatin fragmentov. Hielscher je digitalni ultrasonicators lahko enostavno nastavite na natančno sonication parameter. Posebne nastavitve sonication lahko shranite tudi kot programsko nastavitev za hitro ponovitev istega postopka.
Vsa sonication so samodejno protokolano in shranjena kot CSV datoteka na vgrajeni SD kartici. To omogoča natančno dokumentacijo izvedenih poskusov in omogoča enostavno revidiranje sonication teče.
Prek daljinskega upravljalnika brskalnika lahko vse digitalne ultrazvočne naprave upravljate in spremljate preko katerega koli standardnega brskalnika. Namestitev dodatne programske opreme ni potrebna, saj je LAN povezava zelo preprost plug-n-play nastavitev.
Najvišja uporabniška prijaznost med ultrazvočno pripravo DNK
Vsi Hielscher ultrasonicatorji so namenjeni za dostavo ultrazvoka z visokimi zmogljivostmi, hkrati pa so vedno zelo uporabniku prijazni in enostavni za delovanje. Vse nastavitve so dobro strukturirane v jasnem meniju, do katerega lahko enostavno dostopate prek barvnega zaslona na dotik ali daljinskega upravljalnika brskalnika. Pametna programska oprema s programibilnimi nastavitvami in samodejnim snemanjem podatkov zagotavlja optimalne nastavitve sonikacije za zanesljive in pomnilljive rezultate. Čist in enostaven za uporabo meni vmesnik spremeni Hielscher ultrasonicators v uporabniku prijazne in učinkovite naprave.
Spodnja tabela vam prikazuje približno zmogljivost obdelave naših laboratorijskih ultrazvočnihtorjev za celično lyzo in fragmentacijo DNK:
serija Volume | Pretok | Priporočena naprave |
---|---|---|
plošče z več dobro | N/a | UIP400MTP |
viale, majhen beaker | N/a | Ultrazvočni cuphorn |
do 10 vial | N/a | VialTweeter |
1 do 500ml | 10 do 200 ml / min | UP100H |
10 do 2000 ml | 20 do 400ml / min | UP200Ht, UP400St |
Kontaktiraj nas! / Vprašajte nas!
Literatura/reference
- Mark D. Thompson, Kelly G. Aukema, Dana M. O’Bryan, Stephen D. Rader, Brent W. Murray (2008): Plasmid sonication improves sequencing efficiency and quality in the Beckman Coulter CEQ system. BioTechniques 2008, 45:3, 327-329
- Fykse, Else; Olsen, Jaran; Skogan, Gunnar (2003): Application of sonication to release DNA from Bacillus cereus for quantitative detection by real-time PCR. Journal of microbiological methods 55, 2003. 1-10.
- Ming L. Wu; Sindélia S. Freitas; Gabriel A. Monteiro; Duarte M. F. Prazeres; José A. L. Santos (2009). Stabilization of naked and condensed plasmid DNA against degradation induced by ultrasounds and high-shear vortices. Biotechnology Applied Biochemistry 53(4), 2009.
- Sarker, Satya Ranjan; Ball, Andrew S.; Bhargava, Suresh Kumar; Soni., Sarvesh K. (2019): Evaluation of plasmid DNA stability against ultrasonic shear stress and its in vitro delivery efficiency using ionic liquid [Bmim][PF6]. RSC Advances 9, 2019. 29225-29231.
- Miguel Larguinho, Hugo M. Santos, Gonçalo Doria, H. Scholz, Pedro V. Baptista, José L. Capelo (2010): Development of a fast and efficient ultrasonic-based strategy for DNA fragmentation. Talanta, Volume 81, Issue 3, 2010. 881-886.
- Julie Ann Wyber; Julie Andrews; Antony D’Emanuele (1997): The Use of Sonication for the Efficient Delivery of Plasmid DNA into Cells. Pharmaceutical Research 14(6), 1997. 750–756.
Dejstva je treba vedeti
Kaj so plazmidi?
Plazmid je majhna krožna molekula DNK, ki je fizično ločena od kromosomske DNK in se samostojno replikira. Plazmidi so pogosto povezani z geni, ki prispevajo k preživetju organizma in vključujejo posebne prednosti, npr. Plazmidi se najpogosteje najdemo kot majhne krožne, dvojno nasedle molekule DNK v bakterijah; vendar pa so plazmidi včasih prisotni v arheji in evkariotičnih organizmih. Plazmidi so pomembna orodja v molekularni biologiji, genetiki, biokemiji in življenjski znanosti. Znani kot vektorji v genskem inženiringu, plazmidi se uporabljajo za repliciranje ali izražanje določenih genov. Ciljna sprememba vektorja se imenuje vektorska zasnova.
Analiza GFP v raziskavah celic
Green Fluorescent Protein (GFP) je vsestranski biološki označevalec za spremljanje fizioloških procesov, vizualizacijo lokalizacije beljakovin in odkrivanje transgenega izraza in vivo. GFP je lahko navdušen z lasersko linijo 488 nm in je optimalno zaznan pri 510 nm.

Hielscher Ultrasonics proizvaja visoko zmogljivost ultrazvočnih homogenizatorjev iz laboratorij do industrijske velikosti.