Буферные растворы, приготовленные с помощью ультразвука
Буферы для лизиса могут быть эффективно и быстро приготовлены с помощью ультразвуковых гомогенизаторов тканей. Поскольку ультразвуковые аппараты являются инструментом мечты для смешивания, растворения и диспергирования, они позволяют надежно и удобно готовить буферы для лизиса.
Ультразвуковая подготовка лизисных буферов
Ультразвуковые гомогенизаторы тканей являются распространенным инструментом для разрушения клеток, лизиса и экстракции, поэтому доступны в большинстве лабораторий. Вторичным применением ультразвуковых аппаратов зондового типа является получение лизисных буферов.
Буфер для лизиса — это раствор, используемый для вскрытия (лизирования) клеток и высвобождения их содержимого для последующего анализа. Конкретный состав буфера для лизиса может варьироваться в зависимости от типа лизируемых клеток и последующего применения. Тем не менее, типичный буфер для лизиса содержит такие компоненты, как детергенты, соли и ингибиторы протеазы. Буферные соли (например, Tris-HCl) и ионные соли (например, NaCl) обычно используются для регулирования pH и осмолярности лизата.
Чтобы сделать буфер для лизиса, компоненты смешивают вместе в соответствующих концентрациях и pH. Смесь обычно перемешивают или встряхивают до тех пор, пока компоненты не растворятся и раствор не станет однородным.
Ультразвуковая гомогенизация — это метод, который может быть использован для создания хорошего буфера для лизиса за счет улучшения смешивания и растворения компонентов. В этом методе используются ультразвуковые волны – в норме в диапазоне от 20 до 30 кГц – В смесь наносятся кавитационные пузырьки, которые схлопываются и генерируют интенсивную локальную энергию, что приводит к механическому сдвигу и смешиванию компонентов.
Процесс ультразвуковой гомогенизации может помочь разбить любые комки или агрегаты компонентов и обеспечить равномерное перемешивание раствора. Следовательно, такой улучшенный буфер для лизиса может привести к более эффективному разрушению клеток и увеличению выхода экстрагированного материала. Кроме того, ультразвуковая гомогенизация может сократить время, необходимое для создания буфера для лизиса, по сравнению с традиционными методами перемешивания или встряхивания.
В целом, ультразвуковая гомогенизация является мощным инструментом для повышения качества и эффективности приготовления лизисного буфера.
Протокол подготовки буфера для ультразвукового лизиса
Это общий протокол изготовления буфера для лизиса с помощью ультразвукового аппарата зондового типа:
Материалы:
- Моющие средства по выбору (например, Triton X-100, SDS, CHAPS)
- Соль (соли) по выбору (например, NaCl, KCl)
- Ингибиторы протеазы (например, PMSF, апротинин, лейпептин)
- ультразвуковой аппарат
- Мешалка
- Деионизированная вода
- pH-метр или рН-полоски
Пошаговая инструкция:
- Определите состав буфера для лизиса в зависимости от клеток или тканей, которые вы будете лизировать, и последующих применений, для которых вы будете использовать лизат. Приготовьте исходные растворы моющих средств, солей и ингибиторов протеазы в нужных концентрациях.
- Добавьте исходные растворы моющих средств, солей и ингибиторов протеазы в стакан или колбу.
- Добавьте деионизированную воду, чтобы довести объем до нужного количества буфера.
- Смешайте компоненты с помощью мешалки для того, чтобы получить раствор для предварительного смешивания.
- Измерьте pH буфера с помощью pH-метра или полосок для измерения pH и при необходимости отрегулируйте pH с помощью небольшого количества кислоты или основания.
- Ультразвуковой аппарат зондового типа используется для гомогенизации раствора предварительного смешивания, чтобы получить высокооднородный раствор. Поэтому обрабатывайте раствор ультразвуком в течение нескольких секунд, пока раствор полностью не перемешается и любые комки или агрегаты не будут разрушены. Продолжительность и мощность ультразвуковой обработки могут быть оптимизированы в зависимости от используемого буфера для лизиса и ультразвука.
- После ультразвукового исследования повторно измерьте pH буфера и при необходимости отрегулируйте.
- Отфильтруйте буфер через фильтр 0,2 микрона, чтобы удалить любой мусор или агрегаты, которые могли образоваться во время ультразвуковой обработки.
- Теперь буфер для лизиса готов к использованию.
Примечание: Точный состав и pH буфера для лизиса могут варьироваться в зависимости от лизируемых клеток или тканей и последующих применений. Приведенный выше протокол является общим руководством и, возможно, потребуется оптимизировать его для конкретных приложений.
Ультразвуковые гомогенизаторы обычно используются для разрушения клеток и экстракции внутриклеточных молекул. Поэтому во многих приложениях для лизиса используется зондовая ультразвук не только для приготовления буфера для лизиса, но и для механического разрушения и экстракции клеток.
Это делает ультразвуковые тканевые гомогенизаторы универсальным инструментом для лабораторий и объясняет широкое использование ультразвуковых аппаратов в микробиологии, биотехнологии и медико-биологических науках.
Ультразвуковые лабораторные гомогенизаторы
Hielscher Ultrasonics производит и поставляет ультразвуковые гомогенизаторы и зонды (сонотроды) с различной мощностью и объемом образца. Это позволяет нам предложить Вам наиболее подходящий ультразвуковой дестабилизатор для Вашей пробоподготовки. Мы ориентируемся на высочайшее качество, высочайший комфорт пользователя и надежные результаты ультразвуковой обработки. Все цифровые ультразвуковые аппараты оснащены интеллектуальным программным обеспечением, программированием и предварительной настройкой протоколов ультразвуковой обработки, дистанционным управлением через браузер, контролем температуры, освещением образцов, а также автоматической записью данных на встроенную SD-карту.
Проектирование, производство и консалтинг – Качество «Сделано в Германии»
Ультразвуковые аппараты Hielscher хорошо известны своими высочайшими стандартами качества и дизайна. Надежность и простота в эксплуатации позволяют без проблем интегрировать наши ультразвуковые аппараты в промышленные объекты. Ультразвуковые аппараты Hielscher легко справляются с суровыми условиями и требовательными условиями окружающей среды.
Hielscher Ultrasonics является компанией, сертифицированной по стандарту ISO, и уделяет особое внимание высокопроизводительным ультразвуковым аппаратам, отличающимся самыми современными технологиями и удобством в использовании. Конечно, ультразвуковые аппараты Hielscher соответствуют требованиям CE и соответствуют требованиям UL, CSA и RoHs.
В таблице ниже представлен обзор наших различных лабораторных ультразвуковых аппаратов:
VialTweeter на UP200St | 200 Вт | 26 кГц | ультразвуковая обработка небольших флаконов, например, Eppendorf 1,5 мл |
UP50H | 50 Вт | 30 кГц | Портативный или стационарный лабораторный гомогенизатор |
УП100Ч | 100 Вт | 30 кГц | Портативный или стационарный лабораторный гомогенизатор |
УП200Хт | 200 Вт | 26 кГц | Портативный или стационарный лабораторный гомогенизатор |
УП200Ст | 200 Вт | 26 кГц | Лабораторный гомогенизатор на стойке |
УП400Ст | 400 Вт | 24 кГц | Лабораторный гомогенизатор на стойке |
СоноСтеп | 200 Вт | 26 кГц | Комбинирование лабораторных реакторов, ультразвуковое исследование, насос, мешалка и сосуд |
ГДмини2 | 200 Вт | 26 кГц | Проточная ячейка без загрязнения |
горн | 200 Вт | 26 кГц | Интенсивная ультразвуковая ванна для флаконов и мензурок |
UIP400MTP | 400 Вт | 24 кГц | Ультразвуковая система для многолуночных планшетов / микротитровальных планшетов |
Свяжитесь с нами! / Спросите нас!
Литература / Литература
- Fernandes, Luz; Santos, Hugo; Nunes-Miranda, J.; Lodeiro, Carlos; Capelo, Jose (2011): Ultrasonic Enhanced Applications in Proteomics Workflows: single probe versus multiprobe. Journal of Integrated OMICS 1, 2011.
- Priego-Capote, Feliciano; Castro, María (2004): Analytical uses of ultrasound – I. Sample preparation. TrAC Trends in Analytical Chemistry 23, 2004. 644-653.
- Welna, Maja; Szymczycha-Madeja, Anna; Pohl, Pawel (2011): Quality of the Trace Element Analysis: Sample Preparation Steps. In: Wide Spectra of Quality Control; InTechOpen 2011.
- Nico Böhmer, Andreas Dautel, Thomas Eisele, Lutz Fischer (2012): Recombinant expression, purification and characterisation of the native glutamate racemase from Lactobacillus plantarum NC8. Protein Expr Purif. 2013 Mar;88(1):54-60.
- Brandy Verhalen, Stefan Ernst, Michael Börsch, Stephan Wilkens (2012): Dynamic Ligand-induced Conformational Rearrangements in P-glycoprotein as Probed by Fluorescence Resonance Energy Transfer Spectroscopy. J Biol Chem. 2012 Jan 6;287(2): 1112-27.
- Claudia Lindemann, Nataliya Lupilova, Alexandra Müller, Bettina Warscheid, Helmut E. Meyer, Katja Kuhlmann, Martin Eisenacher, Lars I. Leichert (2013): Redox Proteomics Uncovers Peroxynitrite-Sensitive Proteins that Help Escherichia coli to Overcome Nitrosative Stress. J Biol Chem. 2013 Jul 5; 288(27): 19698–19714.
- Elahe Motevaseli, Mahdieh Shirzad, Seyed Mohammad Akrami, Azam-Sadat Mousavi, Akbar Mirsalehian, Mohammad Hossein Modarressi (2013): Normal and tumour cervical cells respond differently to vaginal lactobacilli, independent of pH and lactate. ed Microbiol. 2013 Jul; 62(Pt 7):1065-1072.