Ultraljudsbehandling för celllys: celldisruption och extraktion
Celllys med ultraljud är en provberedningsteknik som används i stor utsträckning i moderna biotekniska laboratorier. Dess främsta syfte är att bryta sönder cellmembran eller hela celler för att frigöra intracellulära komponenter såsom proteiner, nukleinsyror eller organeller. I det dagliga laboratoriearbetet innebär detta att ultraljudsbehandling är en standardmetod för kontrollerad celldisruption och effektiv extraktion av biomolekyler. Den främsta fördelen med sonikatorer ligger i deras förmåga att exakt reglera kritiska processparametrar, däribland ultraljudsintensitet, pulsering och temperaturkontroll. Denna kontroll gör det möjligt för forskare att uppnå tillförlitlig lys samtidigt som termiska eller mekaniska skador på känsliga biomolekyler minimeras, vilket ger en skonsam men mycket effektiv extraktionsprocess.
Celllys med sonikatorer
Celllys med ultraljud utnyttjar akustisk kavitation för att bryta sönder cellmembran och frigöra intracellulära molekyler. Hielscher Ultrasonics erbjuder både den klassiska sondsonikatorn och sonikatorer för flera prover för steril bearbetning: VialTweeter för flera provrör och vialer samt sonikatorn UIP400MTP för plattor med 96 brunnar för standardmikroplattor.
Hielscher Ultrasonics levererar kraftfulla kontaktfria sonikatorer för provberedning och klinisk analys. Sonikatorn UIP400MTP för flerbrunnsplattor, VialTweeter, CupHorn och flödessonikatorn GDmini2 bearbetar proverna under sterila förhållanden.
Ultraljudshomogenisatorer för celllys och extraktion
| Typ av ultraljudsapparat | Huvudsakligt användningsområde | Provvolym | Typiskt användningsfall | Fördelar | Exempel på modeller |
|---|---|---|---|---|---|
| Sondsonikatorer | Ultraljudsbehandling av enskilda prover | 0,1 mL till ~1000 mL | Celllys, proteinextraktion, DNA/RNA-fragmentering | Exakt energikontroll; olika sonotroder; optimala för små till medelstora prover | UP100H, UP200St, UP400St |
| VialTweeter / CupHorn | Parallell bearbetning av flera förslutna vialer | 8–10 vialer (~1–20 mL vardera) | Standardiserad lys av flera cellsuspensioner | Jämn ultraljudsbehandling; undviker korskontaminering; reproducerbara resultat | VialTweeter, CupHorn |
| Sonikator för plattor med 96 brunnar | Ultraljudsbehandling av flerbrunns- och mikrotiterplattor | Mikroplattformat | Screening med hög provgenomströmning, proteomik, cellanalyser | Samtidig, jämn ultraljudsbehandling i alla brunnar; idealisk för arbetsflöden med flera prover | UIP400MTP |
| Flödescellsreaktorer | Kontinuerlig ultraljudsbehandling för större volymer | >1 L, skalbar | Celldisruption i industriell skala, extraktproduktion | Kontinuerlig bearbetning; skalbar; fullständig processkontroll (amplitud, tryck, temperatur) | UIP1000hdT, UIP2000hdT + flödescell |
| System för steril / indirekt ultraljudsbehandling | Kontamineringsfri provbearbetning | Beroende på vial/provrör/mikroplatta | Känsliga prover, sterila miljöer, verksamheter som omfattas av myndighetskrav | Ingen sondkontakt; undviker överföring av provrester; minimalt rengöringsarbete | VialTweeter, CupHorn, UIP400MTP |
Fördelar med att använda ultraljudsbehandling för celllys
Jämfört med andra metoder för celllys och extraktion har celllys med ultraljud flera fördelar:
- Snabbhet: Celllys och extraktion med ultraljud är en snabb metod som kan bryta upp celler på bara några sekunder. Detta är mycket snabbare än andra metoder såsom homogenisering, frysning och upptining eller kulmalning.
- Effektivitet: Celllys och extraktion med ultraljud kan användas för att behandla små, stora eller flera prover samtidigt, vilket gör metoden effektivare än andra metoder som kräver individuell bearbetning av små prover.
- Kemikaliefri: Celllys och extraktion med ultraljud är en icke-invasiv metod som inte kräver användning av starka kemikalier eller enzymer. Detta gör den idealisk för tillämpningar där cellinnehållets integritet måste bevaras. Oönskad kontaminering av prover kan undvikas.
- Högt utbyte: Celllys och extraktion med ultraljud kan ge ett högt utbyte av cellinnehåll, däribland DNA, RNA och proteiner. Detta beror på att de högfrekventa ljudvågorna bryter upp cellväggarna och frigör innehållet i den omgivande lösningen.
- Temperaturkontroll: Avancerade ultraljudsbehandlare möjliggör exakt temperaturreglering av provet. Hielschers digitala ultraljudsbehandlare är utrustade med en anslutningsbar temperatursensor och programvara för temperaturövervakning.
- Reproducerbar: Protokoll för ultraljudsbaserad celllys kan enkelt reproduceras och även anpassas till olika större eller mindre provvolymer genom enkel linjär uppskalning.
- Mångsidig: Ultraljudsbaserad celllys och extraktion kan användas för extraktion från ett brett spektrum av celltyper, inklusive bakterier, jäst, svampar samt växt- och däggdjursceller. Metoden kan också användas för att extrahera olika typer av molekyler, inklusive proteiner, DNA, RNA och lipider.
- Samtidig beredning av ett stort antal prover: Hielscher Ultrasonics erbjuder flera lösningar för att bekvämt bearbeta ett stort antal prover under exakt samma processförhållanden. Detta gör provberedningssteget med lys och extraktion mycket effektivt och tidsbesparande.
- Lätt att använda: Utrustning för ultraljudsbaserad celllys och extraktion är lätt att använda och kräver minimal utbildning. Utrustningen är också ekonomisk eftersom den utgör en engångsinvestering utan behov av återkommande inköp av engångsartiklar. Detta gör den attraktiv för ett brett spektrum av forskare och laboratorier.
Sammantaget är ultraljudsbaserad celllys och extraktion en snabb, effektiv, exakt reglerbar och mångsidig metod för att extrahera cellinnehåll. Dess fördelar jämfört med alternativa metoder gör den till ett attraktivt val för ett brett spektrum av forsknings- och industritillämpningar.
Funktionsprincip för ultraljudsbaserad celllys
Ultraljudsbaserad celllys och extraktion använder högfrekventa ljudvågor för att sönderdela celler och extrahera deras innehåll. Ljudvågorna skapar tryckförändringar i den omgivande vätskan, vilket får små bubblor att bildas och kollapsa i en process som kallas kavitation. Dessa bubblor genererar lokala, mycket intensiva mekaniska krafter som kan bryta upp celler och frigöra deras innehåll i den omgivande lösningen.
Celllys med en ultraljudsbehandlare omfattar vanligen följande steg:
- Provet placeras i ett rör eller en behållare med en flytande buffert.
- En ultraljudssond förs in i provet och högfrekventa ljudvågor på cirka 20–30 kHz appliceras.
- Ultraljudsvågorna orsakar oscillation och kavitation i den omgivande vätskan och genererar lokala krafter som bryter upp celler och frigör deras innehåll.
- Provet centrifugeras eller filtreras för att avlägsna eventuella cellrester, och det extraherade innehållet samlas upp för efterföljande analys.
Nackdelar med vanliga lysmetoder
Under ditt arbete i laboratorier har du kanske redan upplevt besväret med celllys enligt traditionella mekaniska eller kemiska lysprotokoll.
- Mekanisk lys: Mekaniska lysmetoder, såsom malning med mortel och mortelstöt eller homogenisering med en Frenchpress, kulkvarn eller ett rotor–statorsystem, saknar ofta möjligheter till exakt reglering och justering. Detta innebär att malning och finfördelning snabbt kan generera värme och skjuvkrafter som kan skada provet och denaturera proteiner. Metoderna kan också vara tidskrävande och kräva stora mängder utgångsmaterial.
- Kemisk lys: Kemiska lysmetoder, såsom detergentbaserad lys, kan skada provet genom att bryta upp lipiddubbelskiktet och denaturera proteiner. De kan också kräva flera steg och kan lämna kvar föroreningar som stör efterföljande tillämpningar. Att hitta den optimala detergentdoseringen är en ytterligare utmaning.
- Frys–tiningscykler: Frys–tiningscykler kan få cellmembran att brista, men upprepade cykler kan också orsaka proteindenaturering och proteinnedbrytning. Denna metod kan också kräva flera cykler, vilket kan vara tidskrävande och ofta leder till lägre utbyten.
- Enzymatisk lys: Enzymatiska lysmetoder kan vara specifika för vissa celltyper och kräva flera steg, vilket gör dem tidskrävande. De genererar också avfall och kräver noggrann optimering för att undvika nedbrytning av provet. Kit för enzymatisk lys är ofta dyra. Om ditt nuvarande förfarande för enzymatisk lys ger otillräckliga resultat kan ultraljudsbehandling användas som en synergistisk metod för att intensifiera cellsönderdelningen.
Till skillnad från konventionella mekaniska och kemiska metoder för celllys är ultraljudsbehandling ett mycket effektivt och tillförlitligt verktyg för cellsönderdelning som ger fullständig kontroll över ultraljudsparametrarna. Detta säkerställer hög selektivitet vid frisättning av material och hög produktrenhet. [cf. Balasundaram et al., 2009]
Metoden är lämplig för alla celltyper och kan enkelt tillämpas i liten och stor skala – alltid under kontrollerade förhållanden. Ultraljudsapparater är lätta att rengöra. En ultraljudshomogenisator har alltid funktioner för rengöring på plats (CIP) och sterilisering på plats (SIP). Sonotroden består av ett massivt titanhorn som kan torkas av eller spolas med vatten eller lösningsmedel (beroende på processmediet). Tack vare ultraljudsapparaternas robusthet är underhållsbehovet nästan försumbart.
Ultraljudslys och cellsönderdelning
I allmänhet tar lys av prover i laboratoriet mellan 15 sekunder och 2 minuter. Eftersom ultraljudsbehandlingens intensitet är mycket lätt att justera genom inställning av amplitud och behandlingstid samt genom val av rätt utrustning, är det möjligt att sönderdela cellmembran mycket skonsamt eller mycket abrupt, beroende på cellstrukturen och syftet med lysen (t.ex. kräver DNA-extraktion skonsammare ultraljudsbehandling, medan fullständig proteinextraktion ur bakterier kräver en intensivare ultraljudsbehandling). Temperaturen under processen kan övervakas med en integrerad temperatursensor och kan enkelt regleras genom kylning (isbad eller flödesceller med kylmantlar) eller genom ultraljudsbehandling i pulsläge. Vid ultraljudsbehandling i pulsläge möjliggör korta ultraljudspulser på 1–15 sekunder värmeavledning och kylning under de längre mellanliggande pauserna.
Alla ultraljudsdrivna processer är fullständigt reproducerbara och linjärt skalbara.
VialTweeter är en ultraljudshomogenisator för samtidig, enhetlig och snabb steril beredning av ett stort antal prover.
- Beredning av cellsuspensionen: Cellpelletar måste suspenderas fullständigt i en buffertlösning genom homogenisering (välj en buffertlösning som är kompatibel med den efterföljande analysen, t.ex. en specifik kromatografimetod). Tillsätt lysozymer och/eller andra tillsatser vid behov (de måste också vara kompatibla med separations-/reningsmetoderna). Blanda/homogenisera lösningen försiktigt under mild ultraljudsbehandling tills fullständig suspendering har uppnåtts.
Läs mer om synergierna mellan lysozymer och ultraljudsbehandling! - Ultraljudslys: Placera provet i ett isbad. För cellsönderdelning, ultraljudsbehandla suspensionen i pulser på 60–90 sekunder (använd ultraljudsapparatens pulsläge).
- Separation: Centrifugera lysatet (t.ex. 10 min. vid 10 000 x g; vid 4degC). Separera försiktigt supernatanten från cellpelleten. Supernatanten är det totala celllysatet. Efter filtrering av supernatanten erhålls en klarad vätska med det lösliga cellproteinet.
De vanligaste tillämpningarna för ultraljudsapparater inom biologi och bioteknik är:
- Beredning av cellextrakt
- Sönderdelning av jäst, bakterier, växtceller, mjuk eller hård cellvävnad, nukleinsyramaterial
- Proteinextraktion
- Beredning och isolering av enzymer
- Produktion av antigener
- DNA-extraktion och/eller riktad fragmentering
- Beredning av liposomer
Ultraljudets många tillämpningar sträcker sig över områdena bioteknik, bioteknisk ingenjörsvetenskap, mikrobiologi, molekylärbiologi, biokemi, immunologi, bakteriologi, virologi, proteomik, genetik, fysiologi, cellbiologi, hematologi och botanik.
Lys: Nedbrytning av cellstrukturer
Celler skyddas av ett semipermeabelt plasmamembran som består av ett fosfolipiddubbelskikt (även protein-lipiddubbelskikt; bildat av hydrofoba lipider och hydrofila fosformolekyler med inbäddade proteinmolekyler) och skapar en barriär mellan cellens inre (cytoplasman) och den extracellulära miljön. Växtceller och prokaryota celler omges av en cellvägg. På grund av sin cellulosacellvägg med flera tjocka skikt är växtceller svårare att lysera än djurceller. Cellens inre, såsom organeller, cellkärna och mitokondrier, stabiliseras av cytoskelettet.
Syftet med att lysera cellerna är att extrahera och separera organeller, proteiner, DNA, mRNA eller andra biomolekyler.
Konventionella metoder för celllys och deras nackdelar
Det finns flera metoder för att lysera celler, vilka kan delas in i mekaniska och kemiska metoder. Dessa omfattar användning av detergenter eller lösningsmedel, applicering av högt tryck eller användning av en kulkvarn eller en Frenchpress. Den mest problematiska nackdelen med dessa metoder är svårigheten att styra och justera processparametrarna och därmed deras verkan.
Tabellen nedan visar de huvudsakliga nackdelarna med vanliga lysmetoder:
Förfarande vid lys
Lys är en känslig process. Under lysen förstörs cellmembranets skydd, men inaktivering, denaturering och nedbrytning av de extraherade proteinerna till följd av en ofysiologisk miljö (avvikelse från pH-värdet) måste förhindras. Därför utförs lys i allmänhet i en buffertlösning. De flesta svårigheterna uppstår vid okontrollerad cellsönderdelning som leder till att allt intracellulärt material frisätts utan selektivitet och/eller att målprodukten denatureras.
Vanliga frågor om ultraljudsbehandling och celllys
- Kan man lysera celler med ultraljudsbehandling? Ja, ultraljudsbehandling lyserar effektivt celler med hjälp av högfrekventa ultraljudsvågor som inducerar kavitation, ett fenomen där små ångbubblor bildas och kollapsar våldsamt i cellsuspensionen. De mekaniska krafter som uppstår bryter sönder cellmembranen och underlättar frisättningen av intracellulära komponenter till vätskan.
- Hur använder man en ultraljudsapparat för celllys? Att använda en ultraljudsapparat för celllys innebär att sänka ned ultraljudssonden i en cellsuspension och justera parametrar som amplitud och pulslängd. Processen bör övervakas noggrant för att optimera cellsönderdelningen samtidigt som proteindenaturering och enzyminaktivering minimeras.
- Vilken princip ligger bakom ultraljudsbehandling för celllys? Ultraljudsbehandling bygger på principen om akustisk kavitation. Ultraljudsenergi överförs till vätskemediet och orsakar snabba tryckvariationer som leder till att mikrobubblor bildas och imploderar. Dessa implosioner genererar intensiva skjuvkrafter och lokalt höga temperaturer, vilket bryter sönder cellstrukturer och förbättrar lysatets homogenitet.
- Hur lång tid tar ultraljudsbehandling för celllys? Tiden för ultraljudsbehandling vid celllys kan variera avsevärt beroende på faktorer som celltyp, celltäthet, ultraljudsapparatens effekt och det specifika protokoll som används. Typiska förfaranden kan ta från flera sekunder till några minuter och utförs ofta i cykler för att hantera värmeutvecklingen och säkerställa en jämn cellsönderdelning.
- Vad är syftet med ultraljudsbehandling vid proteinextraktion? Vid proteinextraktion används ultraljudsbehandling för att effektivt bryta sönder cellmembran och solubilisera proteiner. Denna metod är särskilt användbar för att frigöra proteiner från cellens inre kompartment, vilket gör den avgörande för beredning av lysat från vilka proteiner ska renas eller analyseras.
- Varför används ultraljudsbehandling för extraktion? Ultraljudsbehandling föredras för extraktion tack vare sin snabba verkan och förmåga att tillföra riktad energi, som bryter ned cellstrukturer för att frigöra bioaktiva molekyler utan användning av kraftiga kemiska behandlingar, vilket bevarar de extraherade föreningarnas funktionella integritet.
- Stör sonikering protein–proteininteraktioner? Sonikering kan effektivt bryta sönder cellmembran, men kan också störa protein–proteininteraktioner. Graden av störning beror på sonikeringens intensitet och exponeringstiden och kan leda till denaturering eller dissociation av proteinkomplex, vilket kan påverka efterföljande analytiska eller funktionella studier.
- Kan sonikering användas för att lysera E. coli? Hielschers sonikatorer är särskilt effektiva för att lysera bakterieceller som E. coli, vilka har robusta cellväggar. Tekniken erbjuder en fysikalisk metod för att med skjuvkrafter bryta sönder cellväggen och membranet, vilket gör den till en föredragen metod för att bereda bakterielysat i laboratorier för molekylärbiologi och biokemi.
- Vilka processer följer efter sonikeringssteget?
Efterföljande steg efter ultraljudslys omfattar vanligtvis fraktionering av lysatet, riktad isolering av organeller och ytterligare proteinextraktion eller rening.
Det behandlade lysatet separeras sedan och förbereds för analytiska eller funktionella tillämpningar, såsom högupplöst proteomik, transkriptomik eller receptorbindningsstudier.
Litteratur/Referenser
- Balasundaram, B.; Harrison, S.; Bracewell, D. G. (2009): Advances in product release strategies and impact on bioprocess design. Trends in Biotechnology 27/8, 2009. pp. 477-485.
- Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ultrasonic Recovery and Modification of Food ingredients. In: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ultrasound Technologies for Food and Bioprocessing. New York: Springer, 2011. pp. 345-368.
- Nico Böhmer, Andreas Dautel, Thomas Eisele, Lutz Fischer (2012): Recombinant expression, purification and characterisation of the native glutamate racemase from Lactobacillus plantarum NC8. Protein Expr Purif. 2013 Mar;88(1):54-60.
- Brandy Verhalen, Stefan Ernst, Michael Börsch, Stephan Wilkens (2012): Dynamic Ligand-induced Conformational Rearrangements in P-glycoprotein as Probed by Fluorescence Resonance Energy Transfer Spectroscopy. J Biol Chem. 2012 Jan 6;287(2): 1112-27.
- Claudia Lindemann, Nataliya Lupilova, Alexandra Müller, Bettina Warscheid, Helmut E. Meyer, Katja Kuhlmann, Martin Eisenacher, Lars I. Leichert (2013): Redox Proteomics Uncovers Peroxynitrite-Sensitive Proteins that Help Escherichia coli to Overcome Nitrosative Stress. J Biol Chem. 2013 Jul 5; 288(27): 19698–19714.
- Elahe Motevaseli, Mahdieh Shirzad, Seyed Mohammad Akrami, Azam-Sadat Mousavi, Akbar Mirsalehian, Mohammad Hossein Modarressi (2013): Normal and tumour cervical cells respond differently to vaginal lactobacilli, independent of pH and lactate. ed Microbiol. 2013 Jul; 62(Pt 7):1065-1072.


