Ultrazvokna obdelava mikroplošč v proteomiki po metodi »shotgun« – Navodila za uporabo
Proteomika po metodi »shotgun« temelji na učinkoviti in ponovljivi pripravi vzorcev, s katero se kompleksno biološko gradivo pretvori v peptide, pripravljene za analizo z LC-MS/MS. Ultrazvočni aparat za mikroplošče UIP400MTP podpira ta proces, saj omogoča standardizirano, vzporedno ultrazvočno obdelavo vzorcev majhnega volumna, s čimer laboratorijem pomaga izboljšati razbijanje, ekstrakcijo in ponovno raztapljanje v delovnih postopkih, ki temeljijo na mikroploščah. Ta aplikacijski opis prikazuje, kako je mogoče sonikator UIP400MTP vključiti v pripravo proteomskih vzorcev, pri čemer kot laboratorijsko preizkušen primer uporablja objavljen delovni tok z ekstracelularnimi veziklami iz študij PLA2G12A/Th17.
Ultrazvok mikroplošč za bolj ponovljivo proteomiko po metodi »shotgun«
Za raziskovalce na področju proteomike je ponovljiva priprava vzorcev ključnega pomena za pridobivanje visokokakovostnih podatkov LC-MS/MS. Ultrazvočni aparat za mikroplošče UIP400MTP omogoča standardizirano, vzporedno ultrazvočno obdelavo v delovnih postopkih, ki temeljijo na mikroploščah, ter v postopkih z majhnimi volumni in visoko zmogljivostjo.
To je še posebej koristno za laboratorije, ki se ukvarjajo z:
- Veliki sklopi vzorcev, ki zahtevajo enotno obdelavo v številnih luknjah
- Surovine z omejenim vnosom, pri katerih je treba izgubo vzorcev in spremenljivost zmanjšati na minimum
- Vzorci z visoko vsebnostjo lipidov, kot so ekstracelularne vezikle
- Kompleksni biološki preparati, ki zahtevajo učinkovito razgradnjo, ekstrakcijo ali ponovno raztapljanje
- Primerjalna proteomika s širokim spektrom, pri kateri je ključnega pomena ponovljivost v različnih pogojih in ponovitvah
Z vključitvijo ultrazvočne obdelave mikroplošč pred prebavo lahko raziskovalci izboljšajo pripravljenost vzorcev za:
- Ekstrakcija in ponovna raztopitev beljakovin
- Prebava s tripsinom/Lys-C
- Zbiranje podatkov z metodo Nano-LC/MS/MS
- Kvantitativna proteomska analiza v nadaljnjih fazah
Preberite, kako ultrazvok na mikroploščah pomaga zmanjšati variabilnost pri ročnem delu, izboljšati razgradnjo vzorcev ter pripraviti kompleksne biološke vzorce za zanesljivo analizo LC-MS/MS.
Ultrazvok na mikroploščah lahko prinaša naslednje prednosti:
- Osrednje zmogljivosti za proteomiko
- Raziskovalni laboratoriji za električna vozila
- Laboratoriji za imunologijo in celično biologijo
- Skupine za translacijsko raziskovanje
- Ekipe na področju življenjskih znanosti, ki prehajajo od priprave posameznih vzorcev k delovnim tokovom z večjo zmogljivostjo
The UIP400MTP is not an ultrasonic bath. It'a a high intensity cup horn for focused sonication. This powerful non-contact sonicator delivers a uniform sonication across all wells of your standard well-plate. You have precise control over amplitude, power, and pulsing. A built-in timer and temperature probe ensures consistent results. The UIP400MTP plate sonicator cools samples with water bath (external chiller optional).
The UIP400MTP is not an ultrasonic bath. It'a a high intensity cup horn for focused sonication. This powerful non-contact sonicator delivers a uniform sonication across all wells of your standard well-plate. You have precise control over amplitude, power, and pulsing. A built-in timer and temperature probe ensures consistent results. The UIP400MTP plate sonicator cools samples with water bath (external chiller optional).
Priprava vzorcev z visoko zmogljivostjo za analizo proteoma ekstracelularnih veziklov
Kaj je proteomika s tehnologijo Shotgun?
Proteomika po metodi »shotgun« je postala osrednja analitična strategija za karakterizacijo kompleksnih bioloških vzorcev, od lizatov celih celic in tkivnih ekstraktov do prečiščenih organelov, ekstracelularnih veziklov in kliničnih vzorcev z majhno količino izhodnega materiala. Njena glavna prednost je v povezavi med prebavo beljakovin, visokoločljivo tekočinsko kromatografijo s tandemsko masno spektrometrijo ter računalniškim sklepanjem o beljakovinah na podlagi peptidov. Vendar se kakovost končnega niza podatkov o proteomu določi že dolgo preden vzorec prispe do masnega spektrometra. Učinkovita razgradnja vzorca, solubilizacija beljakovin, odstranjevanje motilnih snovi, ponovljiva encimska prebava in zanesljivo pridobivanje peptidov so odločilni dejavniki za globino pokritosti in kvantitativno zanesljivost.
Za raziskovalce na področju proteomike in laboratorije za biološke znanosti, ki delajo z omejenimi ali dragocenimi vzorci, je priprava vzorcev pogosto ozko grlo.
Izziv ekstracelularnih veziklov v proteomiki
Ekstracelularne vezikle (EV) na primer predstavljajo posebej zahtevno skupino vzorcev. Gre za membransko omejene, z lipidi bogate delce v nanometrskem obsegu z relativno nizkim izkoristkom beljakovin in visokim tveganjem za prenos lipidov, soli, detergentov, serumskih beljakovin in drugih sestavin matriksa. Te lastnosti lahko vplivajo na učinkovitost prebave, kromatografsko zmogljivost, stabilnost pri elektrosprayu in identifikacijo peptidov. Postopek priprave za proteomiko EV mora zato biti dovolj močan, da razgradi strukture veziklov in raztopi beljakovinsko vsebino, hkrati pa mora ostati združljiv z nadaljnjo encimsko prebavo in analizo LC-MS/MS.
V tem kontekstu ultrazvočna obdelava, združljiva z mikroploščami, ponuja praktičen pristop za ponovljivo in vzporedno obdelavo vzorcev. Hielscherjevi modeli ultrazvočnih aparatov za mikroplošče UIP400MTP (400 W) in UIP550MTP (550 W) so zasnovani za ultrazvočno obdelavo vzorcev v večluknjastih ploščah in posodah z majhnim volumnom, kar omogoča delovne tokove z večjo zmogljivostjo kot pri običajnih ultrazvočnih aparatih z eno sondo. Za proteomske laboratorije je ta format privlačen, ker lahko zmanjša variabilnost pri ročnem delu, izboljša vzporedno obdelavo več vzorcev in se bolj naravno vključi v poteke priprave vzorcev na podlagi plošč.
Primer poteka dela
Nedavni proteomski postopek za analizo ekstracelularnih veziklov v biologiji Th17-celic, ki jih aktivira PLA2G12A, ponuja koristen, v laboratoriju preizkušen primer, kako je mogoče ultrazvočni aparat za mikroplošče UIP400MTP vključiti v pripravo vzorcev za proteomiko po metodi »shotgun«. V tej seriji študij so bili vzorci ekstracelularnih veziklov obdelani za proteomsko analizo z uporabo obdelave z metanolom, sonikacije z UIP400MTP, centrifugiranja, sušenja, prebave s tripsinom/Lys-C ter nano-tokovne LC-tandemske MS visoke ločljivosti. O isti biološki raziskavi je bilo najprej poročano v predtisku na bioRxiv, nato pa objavljeno v reviji »Cell Reports«, kjer je proteomska analiza pomagala opredeliti, kako PLA2G12A spreminja proteine v tovoru EV v okviru patogenih odzivov T-celic.
Sonicator: UIP400MTP ultrazvočni aparat za mikroplošče
Vnos: 5 µg ekvivalenta beljakovine EV
Prebava: Tripsin/Lys-C
Izpis: Nano-LC-MS/MS / DIA proteomika
Navodila korak za korakom: Priprava vzorcev iz električnih vozil s pomočjo naprave UIP400MTP za proteomiko metode »shotgun«
Ta delovni postopek opisuje metodo priprave vzorcev za »shotgun« proteomiko ekstracelularnih veziklov (EV) z minimalno količino vzorca, pri kateri se uporablja sonikator za mikroplošče UIP400MTP. Temelji na objavljenem delovnem postopku za proteomiko EV, v katerem so bili vzorci EV normalizirani, posušeni, obdelani z metanolom, sonificirani, prebavljeni s tripsinom/Lys-C, nakisani in analizirani z nano-LC-MS/MS.
Postopek je namenjen raziskovalcem na področju proteomike in laboratorijem za življenjske znanosti, ki pripravljajo eksocite (EV) ali druge biološke vzorce majhnega volumna, bogate z lipidi, za proteomiko po metodi »bottom-up shotgun«.
Pregled delovnega toka
| Odru | Namen | Ključni rezultat |
|---|---|---|
| Priprava električnega vozila | Izolacija, pranje in kvantifikacija vzorcev EV | Normalizirani vhodni EV |
| Sušenje vzorcev | Pred obdelavo s pomočjo topila odstranite tekočino | Posušen material EV |
| Obdelava z metanolom | Podpora razgradnji materiala iz eksocitov, bogatega z lipidi | Vzorec, navlažen z metanolom |
| Ultrazvočna obdelava z napravo UIP400MTP | Spodbujajte preoblikovanje, izločanje in homogenizacijo | Obdelan vzorec EV |
| prebava | Priprava peptidov iz beljakovin iz eksocitov | Peptidni hidrolizat s tripsinom/Lys-C |
| Analiza LC-MS/MS | Ločevanje, odkrivanje in kvantificiranje peptidov | Nabor podatkov o proteomiki |
| Analiza podatkov | Identificiranje in kvantificiranje peptidov in beljakovin | Rezultati na ravni beljakovin |
Protokol po korakih
| korak | Navodila | Ključni parametri |
|---|---|---|
| 1 | Pripravite prečiščene vzorce EV v skladu z uveljavljenim postopkom izolacije v laboratoriju. | Pred pripravo vzorca za proteomiko odstranite celice, ostanke in večje nečistote. |
| 2 | Ocenite vsebnost beljakovin EV, na primer z metodo BCA. | Vse vzorce normalizirajte tako, da imajo enak vnos beljakovinskega ekvivalenta. |
| 3 | Prenesite 5 µg ekvivalenta beljakovin EV v čiste PCR-epruvete ali združljive epruvete za majhne prostornine. | Kadar obstaja nevarnost izgube vzorca, uporabite epruvete z nizko vezljivostjo. |
| 4 | Vzorce EV popolnoma posušite. | Preprečite pregrevanje; preverite, da ni vidnih ostankov tekočine. |
| 5 | Vsakemu posušenemu vzorcu EV dodajte 25 µL metanola. | Poskrbite, da je posušen material popolnoma navlažen. |
| 6 | Vzorce obdelajte z ultrazvokom 3 minute z uporabo ultrazvočnega aparata za mikroplošče UIP400MTP. | Za vse vzorce uporabite enake nastavitve ultrazvoka in logiko razporeditve. |
| 7 | Vzorce, obdelane z ultrazvokom, centrifugirajte pri 19.000 × g 20 minut pri 4 °C. | Po centrifugiranju se izogibajte motenju morebitnih usedlin ali netopnih snovi. |
| 8 | Previdno odvzemite 20 µL supernatanta. | Pri vseh vzorcih uporabljajte enako tehniko pipetiranja. |
| 9 | Preostali vzorec popolnoma posušite. | Preidite neposredno na prebavo ali shranite le pod potrjenimi pogoji. |
| 10 | Dodajte 4 µL raztopine tripsina/Lys-C v koncentraciji 100 ng/µL v 50 mM raztopini amonijevega bikarbonata. | Pripravite svež encimski raztopino ali uporabite ustrezno shranjene alikvote. |
| 11 | Kratko obdelajte z ultrazvokom, da se posušena beljakovinska snov raztopi v razgradni raztopini. | Po ultrazvočni obdelavi zberite vso tekočino na dnu epruvete. |
| 12 | Pustite delovati 2 uri pri 37 °C ob pretresanju s hitrostjo 300 vrtljajev na minuto. | Pokrovčke tesno zaprite, da preprečite izhlapevanje. |
| 13 | Dodajte 1 µL 1,25-odstotne raztopine TFA, da se prebavni produkt zakisli. | Kislinjenje ustavi prebavo in pripravi peptide za LC-MS/MS. |
| 14 | Prenesite hidrolizat v viale ali plošče, ki so združljive z LC-MS. | Izogibajte se prenosu netopnih delcev. |
| 15 | Analizirajte z metodo nano-LC-MS/MS. | Uporabite enotno injekcijsko prostornino, LC-gradient in nastavitve zajemanja MS. |
| 16 | Surove podatke obdelajte z uporabo programske opreme za DIA, DDA ali ciljno proteomiko, kot je primerno. | Uporabite ustrezno bazo podatkov, specifičnost encimov, nastavitve modifikacij in pragove FDR. |
Zakaj ultrazvočno obdelavo mikroplošč?
Naprava UIP400MTP omogoča standardizirano, vzporedno ultrazvočno obdelavo vzorcev majhnega volumna. To je koristno, kadar so pomembni ponovljivost, majhna količina vzorca in zmogljivost obdelave več vzorcev hkrati.
Uporabite katero koli standardno mikroploščo! Priprava vzorcev z visoko zmogljivostjo z napravo UIP400MTP
V navedenem delovnem postopku za proteomiko EV so uporabili 5 µg beljakovinskega ekvivalenta EV kot izhodno snov, 25 µL metanola, 3-minutno ultrazvočno obdelavo z UIP400MTP, prebavo s tripsinom/Lys-C, zakisanje s TFA ter analizo z nano-LC-MS/MS.
Priporočeni postopki LC-MS/MS in analize podatkov
Po prebavi in zakisanju je mogoče vzorce analizirati z uporabo nano-tokovne reverzne fazne tekočinske kromatografije (LC), povezane z visokoločljivo tandemsko masno spektrometrijo. V objavljenem delovnem postopku so bili peptidi ločeni na nano-LC sistemu in analizirani z metodo pridobivanja podatkov, neodvisno od podatkov, na masnem spektrometru Orbitrap.
| Odru | Priporočilo | Namen |
|---|---|---|
| Vstavljanje vzorcev | Uporabite C18-past ali enakovredno napravo za nalaganje peptidov. | Koncentrira peptide in odstranjuje visoko polarne nečistote. |
| Ločevanje peptidov | Uporabite nano-pretokovno LC z obratno fazo. | Izboljša ločevanje peptidov in občutljivost MS. |
| Pridobitev podjetja MS | Uporabite DIA, DDA ali ciljno MS, odvisno od zasnove študije. | Ustvari spektralne podatke na ravni peptidov. |
| Iskanje v bazi podatkov | Uporabite referenčno bazo podatkov, ki je primerna za zadevno vrsto. | Omogoča identifikacijo peptidov in beljakovin. |
| FDR-nadzor | Uporabite pragove za stopnjo lažnih odkritij za peptide in beljakovine. | Vpliva na zanesljivost identifikacije. |
| Kvantifikacija | Izvozite tabele o vsebnosti peptidov, prekurzorjev in beljakovin. | Omogoča statistično primerjavo med skupinami. |
Seznam za preverjanje kakovosti
- Preverite, ali je vnos beljakovinskega ekvivalenta EV enak v vseh vzorcih.
- Uporabite naključne ali uravnotežene sheme obdelave vzorcev.
- Obseg metanola, čas ultrazvočne obdelave, čas sušenja in obseg razgradnje morajo biti vedno enaki.
- Spremljajte izkoristek peptidov in identifikacijo vseh beljakovin.
- Preverite stopnjo neuspešnega cepitve in porazdelitev dolžin peptidov.
- Preverite obliko kromatografskega vrha in ponovljivost retencijskega časa.
- Vključite prazna mesta za spremljanje prenosa.
- Za obsežnejše študije uporabite združene vzorce za nadzor kakovosti.
- Ocenite koeficient variacije za ponovitev.
- Uporabite metodo PCA ali sorodne metode za prepoznavanje vplivov serije ali izjemnih vzorcev.
Priporočila za vodenje zapisnikov
Pri objavi ali dokumentiranju tega delovnega postopka navedite količino vnesenega EV, format plošče, volumen metanola, amplitudo in čas ultrazvočne obdelave z napravo UIP400MTP, pogoje centrifugiranja, metodo sušenja, pufersko raztopino za prebavo, koncentracijo encima, čas prebave, pogoje zakisanja, platformo LC-MS/MS, način pridobivanja podatkov, različico programske opreme, bazo podatkov, prag FDR, metodo normalizacije ter statistični delovni postopek.
Vsi ultrazvočni aparati za mikroplošče podjetja Hielscher samodejno beležijo pomembne parametre procesa, kot so amplituda, trajanje ultrazvočne obdelave in temperatura, skupaj z datumom in uro, v obliki datoteke CSV na vgrajeni SD-kartici. Beleženje podatkov za ponovljivost in nadzor kakovosti še nikoli ni bilo lažje!
Pri proteomiki DIA uporabite enotne nastavitve zajemanja za vse vzorce in, če je mogoče, vključite združene vzorce za nadzor kakovosti. Spremljajte število prekurzorjev, stabilnost retencijskega časa in variabilnost med ponovitvami.
Ta delovni postopek je v laboratoriju preizkušen primer za proteomiko električnih vozil. Pri drugih vrstah vzorcev je treba pred razširitvijo na celotno študijo optimizirati količino vzorca, pogoje topila, čas ultrazvočne obdelave, volumen prebave ter strategijo vbrizgavanja za LC-MS/MS.
Podrobna analiza študije: Proteomika EV Shotgun v študiji PLA2G12A
Študija PLA2G12A ponuja konkreten primer uporabe UIP400MTP v delovnem postopku »shotgun« proteomike. Biološko vprašanje je bilo, kako izločena fosfolipaza PLA2G12A spreminja ekstracelularne vezikle, ki izvirajo iz celic Th17, in s tem vpliva na diferenciacijo patogenih T-celic. Avtorji so pokazali, da PLA2G12A deluje na membrane ekstracelularnih veziklov (EV) in pri tem proizvaja lizofosfolipide, vključno z 1-oleoil-lizofosfatidiletanolaminom, ter da signalizacija lizofosfatidne kisline prek LPA2 prispeva k diferenciaciji celic Th17. Poleg signalizacije prek lipidov so študije preučevale tudi vsebino EV, vključno z vsebnostjo RNA in beljakovin, zaradi česar je proteomika po metodi »shotgun« postala pomemben del strategije karakterizacije.
V delovnem postopku priprave EV so bile celice Th17 gojene v gojišču, ki je vsebovalo fetalno goveje serum, iz katerega so bili odstranjeni eksosomi. Supernatanti iz kulture so bili najprej centrifugirani za odstranitev celic, filtrirani skozi 0,22 µm filter, koncentrirani z ultrafiltracijo/ultracentrifugacijo, oprani, ponovno suspendirani v PBS in količinsko določeni z BCA-testom za beljakovine. Ta predhodna priprava EV je zagotovila, da se je v proteomski delovni tok lahko prenesla določena količina EV-materiala, enakovredna količini beljakovin.
Za proteomsko analizo po metodi »shotgun« so avtorji uporabili vzorce EV, ki so ustrezali 5 µg beljakovinskih ekvivalentov. Te vzorce so posušili v PCR-epruvetah in jim dodali 25 µL metanola. Nato so vzorce 3 minute obdelovali z ultrazvokom z uporabo ultrazvočnega aparata za mikroplošče UIP400MTP. Po sonikaciji so vzorce centrifugirali pri 4 °C 20 minut pri 19.000 × g. Po odstranitvi 20 µL supernatanta so vzorce centrifugirali do suhega. Beljakovine so nato z ultrazvokom raztopili v 4 µL raztopine tripsina/Lys-C v koncentraciji 100 ng/µL v 50 mM amonijevem bikarbonatu. Prebavo smo izvajali 2 uri pri 37 °C ob pretresanju s hitrostjo 300 rpm. Prebavni produkt smo nakisali z 1 µL 1,25-odstotne trifluoroocetne kisline in ga analizirali z nano-tokovno LC-tandemsko masno spektrometrijo visoke ločljivosti.
Ta delovni postopek izpostavlja več koristnih načel za proteomiko EV z majhnim vnosom. Prvič, vnos je bil normaliziran glede na beljakovinski ekvivalent, kar je pomembno pri primerjavi EV iz različnih genotipov ali obdelav. Drugič, pred sonikacijo je bil uporabljen metanol, ki je podprl razgradnjo in ekstrakcijo, hkrati pa se je izognil uporabi detergentnih sistemov, ki bi lahko otežili LC-MS/MS. Tretjič, korak sonikacije je bil kratek in standardiziran, kar omogoča vzporedno obdelavo vzorcev. Četrtič, prebava s tripsinom/Lys-C je bila izvedena v zelo majhnem volumnu, kar zmanjšuje razredčenje in omogoča izkoristek peptidov pri majhnih količinah vzorca. Nazadnje je neposreden prehod od prebave k zakisanju in LC-MS/MS zmanjšal nepotrebne korake pri ravnanju z vzorci.
Pri nadaljnji LC-MS/MS metodi je bila uporabljena ločitev z reverzno fazo z nano-pretokom, povezana z masnim spektrometrom Q-Exactive HF Orbitrap. Vzorci so bili zadržani na predkoloni C18, nato pa ločeni na analitični koloni z notranjim premerom 50 µm pri pretoku 200 nL/min in temperaturi 40 °C. Gradient je v 60 minutah prešel od nizke vsebnosti organskega topila do 35 % topila B, čemur je sledilo izpiranje z visoko vsebnostjo organskega topila in ponovno uravnoteženje. Pridobivanje MS-podatkov je potekalo v načinu pozitivnih ionov z uporabo podatkovno neodvisnega pridobivanja s kolizijsko disociacijo z višjo energijo. Surove datoteke DIA so bile analizirane z uporabo programa DIA-NN 1.8 s spektralno knjižnico, napovedano in silico.
Ekstrakcija beljakovin z visoko zmogljivostjo z 96-jamično ploščo sonicator UIP400MTP
Pogosto zastavljena vprašanja
Kdo ima največ koristi od ultrazvočne obdelave mikroplošč v proteomiki po metodi »shotgun«?
Ultrazvok za mikroplošče je še posebej uporaben za proteomske laboratorije, ki vzporedno obdelujejo več vzorcev, vključno s skupnimi laboratorijskimi zmogljivostmi, raziskovalnimi skupinami na področju proteomike, imunološkimi laboratoriji, skupinami za translacijsko raziskovanje ter laboratoriji za življenjske znanosti, ki prehajajo na delovne tokove LC-MS/MS z večjo zmogljivostjo. To je še posebej pomembno, kadar je ponovljivost med vzorci ključnega pomena.
Zakaj bi uporabili UIP400MTP namesto običajnega sondnega ultrazvočnika?
Običajni sondni ultrazvočni aparat običajno obdeluje vzorce po enega naenkrat, med posameznimi vzorci pa je potrebno skrbno čiščenje, da se zmanjša prenos snovi. Sonikatorja za mikroplošče, modela UIP400MTP in UIP550MTP, omogočata vzporedno sonikacijo v obliki mikroplošč ali majhnih volumnov, kar pomaga zmanjšati ročno ravnanje, izboljšati doslednost in poenostaviti pripravo več vzorcev hkrati. Omogočata tudi enostavno vključitev v avtomatizirane delovne tokove.
Kje se ultrazvok vključuje v delovni tok proteomike po metodi »shotgun«?
Ultrazvok se običajno uporablja v fazi predhodne priprave vzorcev pred encimsko prebavo. Lahko pripomore k razgradnji, ekstrakciji, homogenizaciji in ponovni raztopitvi pred encimsko prebavo s tripsinom, Lys-C ali mešanico tripsina in Lys-C.
Poleg tega se lahko ultrazvok uporabi tudi med prebavo, da se znatno pospeši encimska prebava beljakovin. Odkrijte možnosti visoko zmogljivega razgradnje beljakovin s pomočjo ultrazvoka za hiter proteomski delovni tok!
Ali je ultrazvočna obdelava mikroplošč koristna za proteomiko ekstracelularnih veziklov?
Da. Ekstracelularne vezikle so delci, bogati z lipidi in obdani z membrano, katerih obdelava na ponovljiv način lahko predstavlja izziv. V navedenih študijah o PLA2G12A so bili vzorci EV obdelani z metanolom, sonificirani z napravo UIP400MTP, posušeni, prebavljeni s tripsinom/Lys-C in analizirani z nano-LC/MS/MS.
Za katere vrste vzorcev je sonikacija na mikroploščah primerna?
Ultrazvok na mikroploščah je lahko koristen za celične lizate, frakcije organelov, imunoprecipitate, beljakovinske agregate, vzorce z visoko vsebnostjo membran, ekstracelularne vezikle in druge biološke preparate majhnega volumna. Za vsako vrsto vzorca je treba optimirati intenzivnost in trajanje ultrazvoka, pogoje topila, količino vzorca ter strategijo razgradnje.
Ali ultrazvok nadomesti encimsko razgradnjo?
Ne. Ultrazvok pomaga pri pripravi vzorca za prebavo, saj izboljša razgradnjo, ekstrakcijo ali ponovno raztapljanje. Proteolitična prebava je še vedno potrebna za pridobivanje peptidov za proteomiko po metodi »bottom-up shotgun«.
Preberite več o ultrazvočno pospešenem razgrajevanju beljakovin v proteomskih delovnih postopkih!
Ali je naprava UIP400MTP združljiva s proteomiko z majhnim vhodnim vzorcem?
Da, format mikroplošč je zelo primeren za delovne postopke z majhnimi količinami, pri katerih sta ohranjanje vzorcev in dosledna obdelava pomembna. V objavljenem delovnem postopku za EV je bila proteomska priprava izvedena z vhodno količino EV, ki je ustrezala 5 µg beljakovin.
Ali lahko ultrazvočna obdelava mikroplošč izboljša ponovljivost?
Ultrazvočni aparati Hielscher omogočajo ponovljivost z uporabo standardiziranih pogojev ultrazvočne obdelave pri več vzorcih. Vendar pa k splošni ponovljivosti proteomike prispevajo tudi drugi dejavniki, kot so izolacija celic ali eksocitov, normalizacija vhodnih vrednosti, učinkovitost prebave, stabilnost LC-MS/MS, obdelava podatkov in statistična analiza.
Ali ultrazvočna obdelava mikroplošč izboljša natančnost identifikacije beljakovin?
To lahko prispeva k izboljšanju globine identifikacije, kadar je razgradnja ali ponovna raztopitev vzorca omejevalni dejavnik. Učinek je odvisen od vrste vzorca, kemijskih lastnosti beljakovin, strategije čiščenja, pogojev prebave ter zmogljivosti metode LC-MS/MS.
Kaj je treba optimizirati, preden se delovni tok začne redno uporabljati?
Ključni parametri vključujejo vnos vzorca, sestavo pufra ali topila, format plošče, amplitudo in trajanje ultrazvoka, pogoje sušenja, volumen razgradnje, koncentracijo encimov, čas inkubacije ter količino injekcije za LC-MS/MS. Pred uporabo delovnega postopka pri celotnem sklopu poskusov se priporoča izvedba pilotnih testov.
Ali je ta delovni postopek mogoče uporabiti v proteomiki DIA?
Da. V navedenem EV-delovnem postopku je bil uporabljen postopek pridobivanja podatkov, neodvisen od podatkov, ki mu je sledila analiza DIA-NN. Ultrazvočna obdelava mikroplošč je del predhodnega postopka priprave vzorcev in jo je mogoče vključiti v metode DIA, DDA ali ciljno usmerjene proteomike.
Katere kazalnike za nadzor kakovosti je treba spremljati?
Priporočeni kazalniki za nadzor kakovosti vključujejo izkoristek peptidov, število identificiranih peptidov in beljakovinskih skupin, stopnjo neuspešnega cepitve, porazdelitev dolžin peptidov, obliko kromatografskih vrhov, stabilnost retencijskega časa, koeficient variacije pri ponovitvah, prenos in ločevanje bioloških skupin s pomočjo PCA ali sorodnih metod.
Kakšna je glavna prednost vključitve modelov ultrazvočnih naprav za mikroplošče UIP400MTP ali UIP550MTP v pripravo vzorcev za proteomiko?
Glavna prednost je standardizirana, vzporedna obdelava vzorcev majhnega obsega. To laboratorijem pomaga zmanjšati variabilnost, ki nastane pri ročnem delu, ter bolj dosledno pripraviti kompleksne biološke vzorce za prebavo, zajem podatkov z metodo LC-MS/MS in kvantitativno proteomsko analizo.
Ultrazvočne naprave za mikroplošče podjetja Hielscher je mogoče brez težav vključiti v avtomatizirane delovne tokove.
Literatura / Reference
- FactSheet UIP400MTP Multi-well Plate Sonicator – Non-Contact Sonicator – Hielscher Ultrasonics
- FactSheet UIP550MTP Multi-well Plate Sonicator – Non-Contact Sonicator – Hielscher Ultrasonics
- Mochizuki-Ono C., Taketomi Y., Irie A., Kano K. et al. (2026): PLA2G12A-driven extracellular vesicle-lipid signaling amplifies pathogenic T cell responses in inflammatory diseases. Cell Reports 45, 2026.
- Mochizuki, Chika; Taketomi, Yoshitaka; Irie, Atsushi; Kano, Kuniyuki; Nagasaki, Yuki; Miki, Yoshimi; Ono, Takashi; Nishito, Yasumasa; Nakajima, Takahiro; Tomabechi, Yuri; Hanada, Kazuharu; Shirouzu, Mikako; Watanabe, Takashi; Hata, Kousuke; Izumi, Yoshihiro; Bamba, Takeshi; Chun, Jerold; Kudo, Kai; Kotani, Ai; Murakami, Makoto (2024): Secreted phospholipase PLA2G12A-driven lysophospholipid signaling via lipolytic modification of extracellular vesicles facilitates pathogenic Th17 differentiation. BioRxiv 2024.
- Lischnig A., Bergqvist M., Ochiya T., Lässer C. (2023): Corrigendum for “Quantitative Proteomics Identifies Proteins Enriched in Large and Small Extracellular Vesicles”. Molecular & Cellular Proteomics, 22; 2023.
- Lauren E. Cruchley-Fuge, Martin R. Jones, Ossama Edbali, Gavin R. Lloyd, Ralf J. M. Weber, Andrew D. Southam, Mark R. Viant (2024): Automated extraction of adherent cell lines from 24-well and 96-well plates for multi-omics analysis using the Hielscher UIP400MTP sonicator and Beckman Coulter i7 liquid handling workstation. Metabomeeting 2024, University of Liverpool, 26-28th November 2024.
- Cosenza-Contreras M, Seredynska A, Vogele D, Pinter N, Brombacher E, Cueto RF, Dinh TJ, Bernhard P, Rogg M, Liu J, Willems P, Stael S, Huesgen PF, Kuehn EW, Kreutz C, Schell C, Schilling O. (2024): TermineR: Extracting information on endogenous proteolytic processing from shotgun proteomics data. Proteomics. 2024.
Hielscher Ultrasonics proizvaja visoko zmogljive ultrazvočne homogenizatorje iz laboratorij k industrijska velikost.



