Ersätt cellskrapning med ultraljudsapparaten UIP400MTP för hög provgenomströmning
Lossning och extraktion av adherenta cellinjer från flerbrunnsplattor för multiomikanalys är en daglig uppgift i laboratorier. Cellossning med hög provgenomströmning med hjälp av ultraljudsapparaten UIP400MTP för flerbrunnsplattor ersätter manuell cellskrapning och ger högre utbyten av RNA, totala lipider och totala polära metaboliter. En ny metod integrerar ultraljudsapparaten Hielscher UIP400MTP med vätskehanteringsstationen Beckman Coulter i7, vilket möjliggör reproducerbar och effektiv bearbetning av celler med hög provgenomströmning för extraktion av RNA, metaboliter och lipider. Den presenterade metoden överträffar traditionella manuella cellskrapningsmetoder genom att uppnå överlägsen reproducerbarhet och överlägset utbyte för olika celltyper och försöksbetingelser.
Effektivisera cellossningen med ultraljudsapparaten UIP400MTP för mikroplattor
Adherenta cellodlingssystem spelar en avgörande roll inom toxikologisk och biomedicinsk forskning. I detta sammanhang tog Cruchley-Fuge et al. (2024) sig an en betydande utmaning inom PrecisionTox-projektet, som fokuserade på att använda omiktekniker för bedömning av kemiska faror. Projektet syftade till analys med hög provgenomströmning av tusentals prover som behandlats med olika kemikalier. För att tillgodose detta behov utvecklade forskarna ett automatiserat arbetsflöde som kombinerar ultraljudsapparaten UIP400MTP med etablerade tvåfasextraktionsprotokoll för analys med vätskekromatografi–masspektrometri (LC-MS). Deras studie utvärderar effektiviteten hos ultraljudsapparaten UIP400MTP för flerbrunnsplattor vid lossning av adherenta celler jämfört med manuell skrapning och andra traditionella metoder.
Effektivisering av multiomik: automatiserad extraktion av adherenta celler med UIP400MTP
Laura Cruchley-Fuges forskargrupp vid University of Birmingham använde tre humana cellinjer: HepG2 (levercancerceller), HepaRG (differentierade hepatocytliknande celler) och H295R (binjurecancerceller). Dessa celler odlades i 24- och 96-brunnsplattor och exponerades för testkemikalier såsom aflatoxin B1 och forskolin.
Försöksupplägg:
- Fas 1: Optimering av effektinställningarna för ultraljudsapparaten UIP400MTP och jämförelse med manuell cellskrapning och ultraljudsvattenbad. HepG2-celler användes för att utvärdera utbytet av RNA, metaboliter och lipider.
- Fas 2: Integrering av UIP400MTP i ett arbetsflöde för tvåfasextraktion med Beckman Coulter i7-systemet. Valideringen genomfördes med HepaRG- och H295R-celler.
Arbetsflöde för extraktion: Arbetsflödet omfattade kemikalieexponering i flerbrunnsplattor, cellossning med UIP400MTP och tvåfasextraktion med Bligh & Dyer-metoden (B&D). LC-MS-analys utfördes med en Thermo Scientific Orbitrap Exploris 120 för lipofila och polära föreningar. B&D-metoden, en guldstandard för lipidkvantifiering, omfattar en extraktion i två steg med metanol, kloroform och vatten, följt av lipidkvantifiering i kloroformfasen.
Ultraljudsapparaten UIP400MTP för mikroplattor underlättar lossning av adherenta cellinjer från flerbrunnsplattor och petriskålar
Resultat:
- Fas 1: Optimala betingelser för ultraljudsbehandling identifierades vid 60% effekt.
UIP400MTP gav det högsta RNA-utbytet med exceptionell reproducerbarhet jämfört med manuell skrapning och ultraljudsbad.
Utbytet av polära metaboliter var likvärdigt mellan metoderna, medan lipidutbytet var markant överlägset med UIP400MTP. - Fas 2: Validering med HepaRG- och H295R-celler visade hög reproducerbarhet i lipidomik- och metabolomikdata, vilket framgick av tätt grupperade PCA-poäng.
Behandlingar med aflatoxin B1 och forskolin kunde effektivt särskiljas från kontrollerna, vilket understryker metodens känslighet och tillförlitlighet.
Ultraljudsapparaten UIP400MTP för mikroplattor för cellossning med hög provgenomströmning
”Ultraljudsapparaten Hielscher UIP400MTP erbjuder ett högkvalitativt och reproducerbart alternativ till den manuella cellskrapningens ”guldstandard”, vilket ger högre utbyten av RNA, totala lipider och totala polära metaboliter.” (Cruchley-Fuge et al., 2024)
Cruchley-Fuge et al. lyfter fram fördelarna med ultraljudsapparaten UIP400MTP för bearbetning av adherenta celler. Genom att ersätta manuell skrapning förbättrar denna metod reproducerbarheten, provgenomströmningen och utbytet, vilket gör den till ett ovärderligt verktyg för storskaliga studier som PrecisionTox. Integreringen av UIP400MTP i automatiserade arbetsflöden minskar inte bara variationen utan effektiviserar också arbetsintensiva processer, vilket möjliggör insamling av högkvalitativa multiomikdata.
Arbetet av Cruchley-Fuge et al. (2024) underlättar och effektiviserar bearbetningen av adherenta cellodlingar för multiomikanalys. Integreringen av ultraljudsapparaten UIP400MTP med automatiserade arbetsflöden säkerställer enhetlig och effektiv provberedning, vilket gör den idealisk för toxikologisk forskning med hög provgenomströmning.
Konstruktion, tillverkning och rådgivning – kvalitet tillverkad i Tyskland
Hielschers ultraljudsapparater är välkända för sina högsta kvalitets- och konstruktionsstandarder. Robusthet och enkel användning gör det möjligt att smidigt integrera våra ultraljudsapparater i industrianläggningar. Hielschers ultraljudsapparater klarar enkelt tuffa förhållanden och krävande miljöer.
Hielscher Ultrasonics är ett ISO-certifierat företag och lägger särskild vikt vid högpresterande ultraljudsapparater med den senaste tekniken och hög användarvänlighet. Hielschers ultraljudsapparater är naturligtvis CE-kompatibla och uppfyller kraven i UL, CSA och RoHs.
Litteratur / referenser
- FactSheet UIP400MTP Multi-well Plate Sonicator – Non-Contact Sonicator – Hielscher Ultrasonics
- Lauren E. Cruchley-Fuge, Martin R. Jones, Ossama Edbali, Gavin R. Lloyd, Ralf J. M. Weber, Andrew D. Southam, Mark R. Viant (2024): Automated extraction of adherent cell lines from 24-well and 96-well plates for multi-omics analysis using the Hielscher UIP400MTP sonicator and Beckman Coulter i7 liquid handling workstation. Metabomeeting 2024, University of Liverpool, 26-28th November 2024.
- Dreyer J., Ricci G., van den Berg J., Bhardwaj V., Funk J., Armstrong C., van Batenburg V., Sine C., VanInsberghe M.A., Marsman R., Mandemaker I.K., di Sanzo S., Costantini J., Manzo S.G., Biran A., Burny C., Völker-Albert M., Groth A., Spencer S.L., van Oudenaarden A., Mattiroli F. (2024): Acute multi-level response to defective de novo chromatin assembly in S-phase. Molecular Cell 2024.
- Mochizuki, Chika; Taketomi, Yoshitaka; Irie, Atsushi; Kano, Kuniyuki; Nagasaki, Yuki; Miki, Yoshimi; Ono, Takashi; Nishito, Yasumasa; Nakajima, Takahiro; Tomabechi, Yuri; Hanada, Kazuharu; Shirouzu, Mikako; Watanabe, Takashi; Hata, Kousuke; Izumi, Yoshihiro; Bamba, Takeshi; Chun, Jerold; Kudo, Kai; Kotani, Ai; Murakami, Makoto (2024): Secreted phospholipase PLA2G12A-driven lysophospholipid signaling via lipolytic modification of extracellular vesicles facilitates pathogenic Th17 differentiation. BioRxiv 2024.
- Cosenza-Contreras M, Seredynska A, Vogele D, Pinter N, Brombacher E, Cueto RF, Dinh TJ, Bernhard P, Rogg M, Liu J, Willems P, Stael S, Huesgen PF, Kuehn EW, Kreutz C, Schell C, Schilling O. (2024): TermineR: Extracting information on endogenous proteolytic processing from shotgun proteomics data. Proteomics. 2024.
- De Oliveira A, Cataneli Pereira V, Pinheiro L, Moraes Riboli DF, Benini Martins K, Ribeiro de Souza da Cunha MDL (2016): Antimicrobial Resistance Profile of Planktonic and Biofilm Cells of Staphylococcus aureus and Coagulase-Negative Staphylococci. International Journal of Molecular Sciences 17(9):1423; 2016.
- Martins KB, Ferreira AM, Pereira VC, Pinheiro L, Oliveira A, Cunha MLRS (2019): In vitro Effects of Antimicrobial Agents on Planktonic and Biofilm Forms of Staphylococcus saprophyticus Isolated From Patients With Urinary Tract Infections. Frontiers in Microbiology 2019.
Vanliga frågor
Vad är cellossning?
Cellossning inom forskning avser processen att separera adherenta celler från ytan på ett odlingskärl eller ett substrat. Detta görs vanligtvis för att skörda celler för efterföljande tillämpningar såsom analys, subkultivering eller kryokonservering. Lossning kan åstadkommas med enzymatiska metoder (t.ex. trypsin), kemiska medel (t.ex. EDTA), mekaniska metoder (t.ex. skrapning) eller fysikaliska tekniker som ultraljudsbehandling, beroende på celltyp och forskningskrav.
Hur lossar man adherenta celler?
Lossning av adherenta celler med ultraljudsbehandling innebär att fokuserade ultraljudsvågor används för att bryta cellernas vidhäftning till ytan i en kontrollerad miljö. Ultraljudsapparaten UIP400MTP för mikroplattor åstadkommer detta genom att generera lokala mekaniska vibrationer som bryter bindningarna mellan cellerna och odlingsytan. De viktigaste stegen är:
- Förberedelse: Celler odlas i flerbrunnsplattor och kan exponeras för specifika kemikalier som en del av försöksupplägget.
- Ultraljudsbehandling: Ultraljudsapparaten UIP400MTP programmeras med optimerade inställningar (t.ex. 60% effekt) för att säkerställa effektiv lossning utan att skada cellerna eller äventyra biomolekylernas integritet.
- Temperaturkontroll: Apparaten upprätthåller en stabil temperatur för att förhindra värmeinducerad nedbrytning av celler eller molekyler under processen.
- Efter lossning: Lossade celler genomgår efterföljande extraktionsprotokoll, såsom Bligh & Dyers tvåfasmetod, för utvinning av RNA, lipider och metaboliter.
Denna metod är överlägsen manuell skrapning tack vare sin automatisering, reproducerbarhet och förmåga att effektivt bearbeta prover med hög provgenomströmning.
Vad är cellossning utan skador?
Cellossning utan skador avser processen att separera adherenta celler från deras substrat utan att äventyra cellernas viabilitet, integritet eller funktion. Detta uppnås med skonsamma metoder såsom kontrollerad ultraljudsbehandling eller enzymfria lösningar.
Att undvika att cellerna förstörs är avgörande för att bevara deras strukturella och molekylära egenskaper, vilka är nödvändiga för tillförlitliga efterföljande tillämpningar som multiomikanalys, funktionella analyser eller terapeutisk användning. Skadade celler kan frisätta intracellulärt innehåll, vilket potentiellt kan förvränga försöksresultaten eller försämra provkvaliteten.
Vad är fördelen med enzymfri cellossning?
Enzymfri cellossning erbjuder flera fördelar, däribland att bevara cellytans proteiner och receptorer, bibehålla cellernas viabilitet och undvika potentiella enzymatiska skador på biomolekyler. Detta tillvägagångssätt är särskilt fördelaktigt för känsliga efterföljande tillämpningar, såsom flödescytometri, proteomik eller funktionella analyser, där enzymatiska förändringar skulle kunna försämra datakvaliteten eller påverka försöksresultaten negativt. Dessutom är enzymfria metoder ofta mer reproducerbara och kan anpassas till arbetsflöden med hög provgenomströmning.
Hielscher Ultrasonics tillverkar högpresterande ultraljudshomogenisatorer från laboratorieformat till industriell storlek.

