استخلاص المصفوفة خارج الخلوية باستخدام جهاز المعالجة بالموجات فوق الصوتية UIP400MTP للصفائح ذات 96 بئرًا
غالبًا ما تتضمن الطرق التقليدية لاستخلاص المصفوفة خارج الخلوية (EM) خطوات متعددة لتفكيك مصفوفة الغشاء الحيوي. غير أن هذه التقنيات قد تستغرق وقتًا طويلًا ولا تعطي نتائج متسقة، مما يؤدي إلى تفاوت النتائج. ويسهّل جهاز المعالجة بالموجات فوق الصوتية UIP400MTP للصفائح ذات 96 بئرًا عملية استخلاص المصفوفة خارج الخلوية بدرجة كبيرة، إذ يتيح تفكيك الأغشية الحيوية بكفاءة عالية ودقة وتجانس ضمن أنظمة ذات معدل معالجة عينات مرتفع. يستخدم UIP400MTP موجات فوق صوتية مركّزة لتوليد تجويف مضبوط، مما يفكك مصفوفة الغشاء الحيوي بفعالية مع الحفاظ على حيوية الخلايا الموجودة داخل الغشاء الحيوي وسلامتها. ويعزز استخدام UIP400MTP قابلية تكرار نتائج الاختبارات اللاحقة ودقتها، مثل التحليلات الأيضية والبروتينية، واختبارات الحيوية، ودراسات الحساسية لمضادات الميكروبات. ومن خلال تبسيط استخلاص المصفوفة خارج الخلوية، يمكّن UIP400MTP الباحثين من الحصول على نتائج متسقة وعالية الجودة، مما يتيح فهمًا أعمق لديناميكيات الأغشية الحيوية وتفاعلاتها مع العوامل الخارجية.
استخلاص المصفوفة خارج الخلوية
تُعدّ المصفوفة خارج الخلوية (EM) مكوّنًا أساسيًا في الأغشية الحيوية التي تكوّنها الكائنات الحية الدقيقة مثل Candida albicans. وتتألف هذه المصفوفة من عديدات السكاريد والبروتينات والدهون وDNA خارج الخلايا، وتوفر السلامة البنيوية، وتتوسط الالتصاق بالأسطح، وتسهم بدرجة كبيرة في مقاومة مضادات الميكروبات. ويُعدّ استخلاص المصفوفة خارج الخلوية وتحليلها أمرًا ضروريًا لفهم بيولوجيا الأغشية الحيوية، وتوضيح آليات مقاومة الأدوية، وتحديد أهداف علاجية جديدة.
بروتوكول استخلاص المصفوفة خارج الخلوية (EM) من الأغشية الحيوية لـ Candida albicans باستخدام UIP400MTP
يركز هذا البروتوكول على استخلاص المصفوفة خارج الخلوية (EM) من الأغشية الحيوية لـ Candida albicans المتكوّنة في ظروف ساكنة. ويُدمج جهاز المعالجة بالموجات فوق الصوتية UIP400MTP ليحل محل خطوات الكشط التقليدية أو الخطوات القائمة على الإنزيمات، بهدف تحسين الكفاءة وقابلية تكرار النتائج.
المواد المطلوبة
تعليمات استخلاص المصفوفة خارج الخلوية خطوة بخطوة
- تكوين الغشاء الحيوي في ظروف ساكنة
لتكوين الأغشية الحيوية في ظروف ساكنة، لقّح آبار صفيحة ذات 96 بئرًا بـ C. albicans باستخدام وسط RPMI-1640. يجب أن يحتوي كل بئر على حجم موحّد من اللقاح (مثلًا، 200 µL لكل بئر).
احضن الصفيحة عند 37°C في ظروف ساكنة لمدة 24 ساعة للسماح بتكوّن الأغشية الحيوية على أسطح الآبار. - تحضير الغشاء الحيوي للاستخلاص
بعد الحضانة، اسحب الوسط المستعمل برفق من كل بئر وتخلّص منه دون الإخلال بالغشاء الحيوي.
اشطف كل بئر بعناية باستخدام PBS معقّم (مثلًا، 200 µL) لإزالة الخلايا ضعيفة الالتصاق والحطام العالق. كرّر هذه الخطوة مرتين.
أضف PBS جديدًا أو المحلول المنظّم للاستخلاص (مثلًا، 200 µL) إلى كل بئر استعدادًا للمعالجة بالموجات فوق الصوتية. - المعالجة بالموجات فوق الصوتية باستخدام UIP400MTP
ضع الصفيحة ذات 96 بئرًا التي تحتوي على PBS أو المحلول المنظّم للاستخلاص في حوض جهاز المعالجة بالموجات فوق الصوتية UIP400MTP. اتبع تعليمات الدليل لوضع الصفيحة متعددة الآبار بصورة صحيحة.
عالج بالموجات فوق الصوتية لمدة 5–6 دقائق بإعداد لطيف (سعة اهتزاز 60%، وضع نبضي)، مع ضمان التفكيك المتجانس لبنية الغشاء الحيوي وتحرير مكوّنات المصفوفة خارج الخلوية.
استخدم نظام التحكم في درجة الحرارة بجهاز المعالجة بالموجات فوق الصوتية UIP400MTP (مستشعر درجة الحرارة والإعدادات) لتجنب التسخين المفرط أو تلف العينات. - المعالجة براتنج التبادل الكاتيوني (CER)
انقل السائل المعالج بالموجات فوق الصوتية من كل بئر إلى صفيحة جديدة ذات 96 بئرًا.
أضف حجمًا يعادل الضعف من معلّق CER (المحضّر في PBS أو محلول منظّم) إلى كل بئر (مثلًا، حجم إجمالي قدره 400 µL لكل بئر).
أغلق الصفيحة بإحكام واحضنها على هزّاز صفائح أو جهاز تدوير بسرعة 400 rpm لمدة 3 ساعات للسماح بارتباط مكوّنات المصفوفة خارج الخلوية وعزلها. - الفصل والترشيح
أخضع الصفيحة للطرد المركزي عند 2,000 × g لمدة 10 دقائق لفصل الراتنج والخلايا عن السائل الفوقاني.
انقل بعناية السائل الفوقاني المحتوي على المصفوفة خارج الخلوية من كل بئر إلى صفيحة جديدة ذات 96 بئرًا.
رشّح السائل الفوقاني عبر مرشح بمقاس مسام 0.22 µm باستخدام نظام تشعّب تفريغ مخصّص للصفائح أو نظام مكافئ للحصول على مستخلص نقي من المصفوفة خارج الخلوية. - تحليل المصفوفة خارج الخلوية
استخدم تقنيات مثل UPLC-Q-TOF-MS لتوصيف المستقلبات دون استهداف مسبق، أو استخدم اختبارات محددة (مثل BCA للبروتينات، وأطقم القياس الكمي للدهون الثلاثية والكربوهيدرات) لتوصيف مكوّنات المصفوفة خارج الخلوية.
استخلاص المصفوفة خارج الخلوية بمعدل معالجة عينات مرتفع
أحدثت الكفاءة العالية لاستخلاص المصفوفة خارج الخلوية (EM) باستخدام جهاز المعالجة بالموجات فوق الصوتية UIP400MTP تحولًا جذريًا في تحضير العينات للاختبارات التي تتطلب تحليلًا دقيقًا لخصائص الأغشية الحيوية. يستخدم UIP400MTP الموجات فوق الصوتية لتفكيك مصفوفة الغشاء الحيوي بدقة وتجانس، مما يتيح تحرير مكوّنات المصفوفة خارج الخلوية بفعالية مع الحفاظ على حيوية الخلايا وسلامتها. ويعزز هذا النهج بدرجة كبيرة موثوقية الاختبارات، مثل اختبارات حيوية الأغشية الحيوية، والدراسات البروتينية والأيضية، وتقييمات الحساسية لمضادات الميكروبات.
في اختبارات استعادة خلايا الأغشية الحيوية، مثل عدّ وحدات تكوين المستعمرات (CFU)، يضمن استخلاص المصفوفة خارج الخلوية باستخدام UIP400MTP وصول الكواشف دون عوائق إلى الخلايا الموجودة داخل الأغشية الحيوية. وبالمثل، تستفيد التحليلات البروتينية والأيضية، مثل UPLC-Q-TOF-MS، من العزل عالي المردود للبروتينات والدهون والمستقلبات. ويدعم UIP400MTP أيضًا الاختبار الدقيق للحساسية لمضادات الميكروبات، مما يتيح التحديد الدقيق لقيم MIC وMBEC للأغشية الحيوية. علاوة على ذلك، يساعد الاستخلاص الفعال الذي يتيحه UIP400MTP في اختبارات نشاط الإنزيمات، والقياس الكمي للمكوّنات، والدراسات البنيوية، مما يوفر رؤى قيّمة بشأن دور المصفوفات خارج الخلوية في بنية الأغشية الحيوية والتصاقها وآليات مقاومتها.
تُحسّن طريقة الاستخلاص هذه، ذات معدل معالجة العينات المرتفع والنتائج القابلة للتكرار، تحضير المصفوفة خارج الخلوية، مما يضمن نتائج متفوقة في مجموعة من الاختبارات المتعلقة بالأغشية الحيوية.
استخلاص المصفوفة خارج الخلوية بمعدل معالجة عينات مرتفع باستخدام جهاز المعالجة بالموجات فوق الصوتية UIP400MTP للصفائح ذات 96 بئرًا
المراجع / المصادر
- FactSheet UIP400MTP Multi-well Plate Sonicator – Non-Contact Sonicator – Hielscher Ultrasonics
- Lauren E. Cruchley-Fuge, Martin R. Jones, Ossama Edbali, Gavin R. Lloyd, Ralf J. M. Weber, Andrew D. Southam, Mark R. Viant (2024): Automated extraction of adherent cell lines from 24-well and 96-well plates for multi-omics analysis using the Hielscher UIP400MTP sonicator and Beckman Coulter i7 liquid handling workstation. Metabomeeting 2024, University of Liverpool, 26-28th November 2024.
- Dreyer J., Ricci G., van den Berg J., Bhardwaj V., Funk J., Armstrong C., van Batenburg V., Sine C., VanInsberghe M.A., Marsman R., Mandemaker I.K., di Sanzo S., Costantini J., Manzo S.G., Biran A., Burny C., Völker-Albert M., Groth A., Spencer S.L., van Oudenaarden A., Mattiroli F. (2024): Acute multi-level response to defective de novo chromatin assembly in S-phase. Molecular Cell 2024.
- Mochizuki, Chika; Taketomi, Yoshitaka; Irie, Atsushi; Kano, Kuniyuki; Nagasaki, Yuki; Miki, Yoshimi; Ono, Takashi; Nishito, Yasumasa; Nakajima, Takahiro; Tomabechi, Yuri; Hanada, Kazuharu; Shirouzu, Mikako; Watanabe, Takashi; Hata, Kousuke; Izumi, Yoshihiro; Bamba, Takeshi; Chun, Jerold; Kudo, Kai; Kotani, Ai; Murakami, Makoto (2024): Secreted phospholipase PLA2G12A-driven lysophospholipid signaling via lipolytic modification of extracellular vesicles facilitates pathogenic Th17 differentiation. BioRxiv 2024.
- Cosenza-Contreras M, Seredynska A, Vogele D, Pinter N, Brombacher E, Cueto RF, Dinh TJ, Bernhard P, Rogg M, Liu J, Willems P, Stael S, Huesgen PF, Kuehn EW, Kreutz C, Schell C, Schilling O. (2024): TermineR: Extracting information on endogenous proteolytic processing from shotgun proteomics data. Proteomics. 2024.
- De Oliveira A, Cataneli Pereira V, Pinheiro L, Moraes Riboli DF, Benini Martins K, Ribeiro de Souza da Cunha MDL (2016): Antimicrobial Resistance Profile of Planktonic and Biofilm Cells of Staphylococcus aureus and Coagulase-Negative Staphylococci. International Journal of Molecular Sciences 17(9):1423; 2016.
- Martins KB, Ferreira AM, Pereira VC, Pinheiro L, Oliveira A, Cunha MLRS (2019): In vitro Effects of Antimicrobial Agents on Planktonic and Biofilm Forms of Staphylococcus saprophyticus Isolated From Patients With Urinary Tract Infections. Frontiers in Microbiology 2019.
الأسئلة الشائعة
ما وظيفة المصفوفة خارج الخلوية؟
توفر المصفوفة خارج الخلوية (EM أو ECM) دعمًا بنيويًا للخلايا، وتنظّم التواصل بين الخلايا، وتؤثر في سلوكها.
ما دور المصفوفة خارج الخلوية في الأنسجة؟
في الأنسجة، تعمل المصفوفة خارج الخلوية كسقالة تحافظ على السلامة البنيوية، وتعزز القدرة على تحمّل الإجهاد الميكانيكي، وتتوسط الإشارات الكيميائية الحيوية لتنظيم عمليات مثل النمو والتمايز والإصلاح.
ما الالتصاق بالمصفوفة خارج الخلوية؟
يشير الالتصاق بالمصفوفة خارج الخلوية إلى التفاعل بين الخلايا والمصفوفة خارج الخلوية، الذي تتوسطه أساسًا جزيئات الالتصاق الموجودة على سطح الخلية، مثل الإنتغرينات، مما يتيح تثبيت الخلايا ونقل الإشارات والهجرة.
لماذا تُستخلص المصفوفة خارج الخلوية لإجراء الاختبارات؟
تُستخلص المصفوفة خارج الخلوية لإجراء الاختبارات بهدف دراسة تركيبها، وفهم دورها في العمليات الخلوية، واستقصاء تأثيرها في تطور الأمراض، بما في ذلك تكوّن الأغشية الحيوية ومقاومة مضادات الميكروبات.
ما الإجراءات الشائعة لاستخلاص المصفوفة خارج الخلوية؟
تشمل إجراءات الاستخلاص الشائعة طرقًا فيزيائية مثل المعالجة بالموجات فوق الصوتية، ومعالجات كيميائية باستخدام المنظّفات أو الأملاح، والهضم الإنزيمي لعزل مكوّنات المصفوفة خارج الخلوية مع الحفاظ على سلامتها.
ما المصفوفة خارج الخلوية المنزوعة الخلايا (dECM)؟
تُستحصل المصفوفة خارج الخلوية المنزوعة الخلايا (dECM) بإزالة المواد الخلوية من الأنسجة مع الحفاظ على الخصائص البنيوية والكيميائية الحيوية للمصفوفة خارج الخلوية. وتُستخدم في الطب التجديدي كسقالة لهندسة الأنسجة وزراعة الخلايا.
اقرأ المزيد عن نزع الخلايا من المصفوفة خارج الخلوية بمساعدة الموجات فوق الصوتية!
تصنّع Hielscher Ultrasonics مجانسات بالموجات فوق الصوتية عالية الأداء، بأحجام تتراوح من الحجم المخبري إلى الحجم الصناعي.

